Summary

En reproducerbar intensivvårdsavdelningsorienterad endotoxinmodell hos råttor

Published: February 20, 2021
doi:

Summary

Här presenterar vi en reproducerbar intensivvårdsavdelningsorienterad endotoxinmodell hos råttor.

Abstract

Sepsis och septisk chock är fortfarande den vanligaste dödsorsaken på intensivvårdsavdelningar. Trots betydande förbättringar i sepsishanteringen varierar dödligheten fortfarande mellan 20 och 30%. Nya behandlingsmetoder för att minska sepsisrelaterad multiorgansvikt och död är brådskande. Robusta djurmodeller möjliggör en eller flera behandlingsmetoder samt för att testa deras effekt på fysiologiska och molekylära parametrar. I denna artikel presenteras en enkel djurmodell.

För det första induceras generell anestesi hos djur antingen med användning av flyktig eller genom intraperitoneal anestesi. Efter placering av en intravenös kateter (svansven), trakeostomi och införande av en intraarteriell kateter (svansartär) startas mekanisk ventilation. Baslinjevärden för genomsnittligt arteriellt blodtryck, arteriell syremättnad i blodet och hjärtfrekvens registreras.

Injektionen av lipopolysackarider (1 milligram/kg kroppsvikt) upplöst i fosfatbuffrad saltlösning inducerar ett starkt och reproducerbart inflammatoriskt svar via den avgiftsliknande receptorn 4. Vätskekorrigeringar samt applicering av noradrenalin utförs baserat på väletablerade protokoll.

Djurmodellen som presenteras i denna artikel är lätt att lära sig och starkt inriktad på klinisk sepsisbehandling på en intensivvårdsavdelning med sedering, mekanisk ventilation, kontinuerlig blodtrycksövervakning och repetitiv blodprovtagning. Modellen är också tillförlitlig, vilket möjliggör reproducerbara data med ett begränsat antal djur i enlighet med 3R-principerna (minska, ersätta, förfina) för djurförsök. Medan djurförsök i sepsisforskning inte lätt kan ersättas, möjliggör repetitiva mätningar en minskning av djur och att hålla septiska djur bedövade minskar lidandet.

Introduction

Sepsis och dess allvarligare form, septisk chock, är syndrom på grund av en infektion, vilket resulterar i en överskridande inflammatorisk reaktion med frisättning av cytokiner, vilket leder till fysiologiska och biokemiska förändringar med ett undertryckt immunförsvar och dödliga resultat 1,2. Denna obalanserade inflammatoriska reaktion resulterar i organdysfunktion och organsvikt i olika vitala organ som lunga, njure och lever. Med 37%3 är sepsis en av de vanligaste orsakerna till att en patient läggs in på en intensivvårdsavdelning (ICU). Dödligheten i sepsis varierar för närvarande runt 20-30%4. Tidig och effektiv antibiotikabehandling är av yttersta vikt5. Vätske- och vasopressoråterupplivning måste installeras tidigt, förutom det är behandlingen rent stödjande6.

Sepsis definieras som en beprövad eller misstänkt infektion med bakterier, svampar, virus eller parasiter, som åtföljs av organdysfunktion. Septiska chockkriterier uppfylls när en ytterligare kardiovaskulär kollaps som inte svarar på vätskebehandling ensam, och en laktatnivå på mer än 2 millimol / liter är närvarande2. Sepsisrelaterad organsvikt kan förekomma i vilket organ som helst, men är mycket vanligt i hjärt-kärlsystemet, hjärnan, njuren, levern och lungan. De flesta patienter som lider av sepsis kräver endotrakeal intubation för att säkra patientens luftvägar, för att skydda mot aspiration och för att applicera positiv änddeventilation med en hög fraktion av inspirerat syre för att förhindra eller övervinna hypoxi. För att tolerera ett trakealrör och mekanisk ventilation kräver patienter vanligtvis sedering.

Endotoxiner, såsom lipopolysackarider (LPS) som en komponent i membranet hos gramnegativa bakterier inducerar en stark inflammatorisk reaktion via den avgiftsliknande receptorn (TLR) 47. Aktivering av en definierad väg säkerställer en stabil inflammatorisk reaktion. Cytokiner som cytokin inducerat neutrofilt kemoattractant protein 1 (CINC-1), monocytkemoattractant protein 1 (MCP-1) och interleukin 6 (IL-6) är kända som prognostiska faktorer för svårighetsgrad och resultat i denna modell8. Intravenös LPS-applikation har framgångsrikt använts för att studera olika aspekter av sepsis hos råttor 8,9.

Behandling av sepsis är fortfarande en utmaning, särskilt på grund av bristen på prediktiva djurmodeller. Om endotelemi med aktivering av systemisk inflammation är en adekvat modell för utveckling av farmakologiska terapier kan diskuteras. Men med den välkända LPS-inducerade TLR 4-vägen kan viktig kunskap erhållas.

Protocol

Alla experiment som presenteras i detta protokoll godkändes av veterinärmyndigheterna i kantonen Zürich, Schweiz (godkännandenummer 134/2014 och ZH088/19). Dessutom var alla steg som utfördes i detta experiment i enlighet med riktlinjerna för djurförsök från Swiss Academy of Medial Sciences (SAMS) och riktlinjerna från Federation of European Laboratory Animal Science Associations (FELASA). 1. Anestesiinduktion och djurövervakning Håll manliga Wistar-råttor med en vikt av…

Representative Results

Systemet som presenteras möjliggör endotoxemi hos hemodynamiskt stabila djur som rapporterats tidigare9. Medan det genomsnittliga arteriella trycket förblir stabilt hos djur med och utan LPS-stimulering utvecklar LPS-behandlade djur egenskaper hos sepsis, såsom ett negativt basöverskott och en stark inflammatorisk reaktion mätt med plasmacytokiner (6 timmar efter applicering) såsom CINC-1 (867 ng /ml), MCP-1 (5027 ng/ml) och IL-6 (867 ng/ml)8, F…

Discussion

Protokollet som beskrivs här möjliggör en mycket reproducerbar, men ändå enkel att lära sig sepsismodell, som kan anpassas efter forskningsfrågan. Väsentliga in vivo-data som hänvisar till organfunktion som hjärtfrekvens, blodtryck och perifer arteriell syremättnad kan samlas in kontinuerligt, och blodprovtagning kan utföras repetitivt under hela experimentet. Dessutom kan modifieringar med avseende på vätskeersättningsprotokoll och vasopressorstöd installeras. Med tanke på djurens hemodynamiska stabilit…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Beatrice Beck-Schimmer (MD) och Erik Schadde (MD) för deras kritiska granskning och deras värdefulla bidrag till detta manuskript.

Materials

2-0 silk sutures Ethicon, Sommerville, NJ K833 Standard surgical
26 intravenous catheter Becton Dickinson, Franklin Lakes, NJ 391349 Standard anesthesia equipment
6-0 LOOK black braided silk Surgical Specalities Corporation, Wyomissing, PA SP114 Standard surgical
Alaris Syringe Pump Bencton Dickinson
Betadine Mundipharma, Basel, Switzerland 7.68034E+12 GTIN-number
Curved fine tips microforceps World precision instruments (WPI), Sarasota, FL 504513 Facilitates vascular preparation
Fine tips microforceps World precision instruments (WPI), Sarasota, FL 501976 Tips need to be polished regularly
Infinity Delta XL Anesthesia monitoring Draeger, Lübeck, Germany
Isoflurane, 250 mL bottles Attane, Piramal, Mumbai, India LDNI 22098 Standard vet. equipment
Ketamine (Ketalar) Pfitzer, New York, NY
Lipopolysaccharide (LPS) from Escherichia coli, serotype 055:B5 Sigma, Buchs, Switzerland
Q-tips small Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany EH11.1 Standard surgical
Ringerfundin Bbraun, Melsungen, Germany
Tec-3 Isofluorane Vaporizer Ohmeda, GE-Healthcare, Chicago, IL not available anymore Standard vet. equipment
Xylazine (Xylazin Streuli) Streuli AG, Uznach, Switzerland

Referências

  1. Hotchkiss, R. S., Karl, I. E. The pathophysiology and treatment of sepsis. New England Journal of Medicine. 348 (2), 138-150 (2003).
  2. Singer, M., et al. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3). Journal of the American Medical Association. 315 (8), 801-810 (2016).
  3. Vincent, J. L., et al. Assessment of the worldwide burden of critical illness: the intensive care over nations (ICON) audit. Lancet Respiratory Medicine. 2 (5), 380-386 (2014).
  4. Fleischmann, C., et al. Assessment of Global Incidence and Mortality of Hospital-treated Sepsis. Current Estimates and Limitations. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (3), 259-272 (2016).
  5. Kumar, A., et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Critical Care Medicine. 34 (6), 1589-1596 (2006).
  6. Gotts, J. E., Matthay, M. A. Sepsis: pathophysiology and clinical management. British Medical Journal. 353, (2016).
  7. Akira, S., Takeda, K. Toll-like receptor signalling. Nature Reviews Immunology. 4 (7), 499-511 (2004).
  8. Urner, M., et al. Insight into the beneficial immunomodulatory mechanism of the sevoflurane metabolite hexafluoro-2-propanol in a rat model of endotoxaemia. Clinical and Experimental Immunology. 181 (3), 468-479 (2015).
  9. Beck-Schimmer, B., et al. Which Anesthesia Regimen Is Best to Reduce Morbidity and Mortality in Lung Surgery?: A Multicenter Randomized Controlled Trial. Anesthesiology. 125 (2), 313-321 (2016).
  10. Deitch, E. A. Animal models of sepsis and shock: a review and lessons learned. Shock. 9 (1), 1-11 (1998).
  11. Buras, J. A., Holzmann, B., Sitkovsky, M. Animal models of sepsis: setting the stage. Nature Reviews Drug Discovery. 4 (10), 854-865 (2005).
  12. Perretti, M., Duncan, G. S., Flower, R. J., Peers, S. H. Serum corticosterone, interleukin-1 and tumour necrosis factor in rat experimental endotoxaemia: comparison between Lewis and Wistar strains. British Journal of Pharmacology. 110 (2), 868-874 (1993).
  13. Marechal, X., et al. Endothelial glycocalyx damage during endotoxemia coincides with microcirculatory dysfunction and vascular oxidative stress. Shock. 29 (5), 572-576 (2008).
  14. Thiemermann, C., Ruetten, H., Wu, C. C., Vane, J. R. The multiple organ dysfunction syndrome caused by endotoxin in the rat: attenuation of liver dysfunction by inhibitors of nitric oxide synthase. British Journal of Pharmacology. 116 (7), 2845-2851 (1995).
  15. Osuchowski, M. F., et al. Minimum quality threshold in pre-clinical sepsis studies (MQTiPSS): an international expert consensus initiative for improvement of animal modeling in sepsis. Intensive Care Medicine Experimental. 6 (1), 26 (2018).
  16. Fink, M. P., Heard, S. O. Laboratory models of sepsis and septic shock. Journal of Surgical Research. 49 (2), 186-196 (1990).
  17. Buras, J. A., Holzmann, B., Sitkovsky, M. Animal models of sepsis: Setting the stage. Nature Reviews Drug Discovery. 4 (10), 854-865 (2005).
  18. Balls, M. The principles of humane experimental technique: timeless insights and unheeded warnings. Altex-Alternatives to Animal Experimentation. 27 (2), 144-148 (2010).
check_url/pt/62024?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Heil, J., Schläpfer, M. A Reproducible Intensive Care Unit-Oriented Endotoxin Model in Rats. J. Vis. Exp. (168), e62024, doi:10.3791/62024 (2021).

View Video