Summary

Organoid Kaynaklı Epitel Tek Katmanlı: Bağırsak Bariyer Fonksiyonu için Klinik Olarak İlgili Bir In Vitro Model

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

Burada, bağırsak bariyer fonksiyonunu, geçirgenliğini ve taşınmasını incelemek için insan organoid türevi bağırsak epitel monokatmanlarının hazırlanmasını açıklıyoruz. Organoidler dış uyaranlara karşı orijinal epitel dokusu yanıtını temsil ettiğinden, bu modeller hücre hatlarının genişletilebilirliğinin avantajlarını ve birincil dokunun alaka düzeyini ve karmaşıklığını birleştirir.

Abstract

Geçmişte, intestinal epitel model sistemleri transforme hücre hatları ve primer doku ile sınırlıydı. Bu model sistemler, birincisi orijinal doku fizyolojisini sadık bir şekilde temsil etmediğinden ve ikincisinin mevcudiyeti sınırlı olduğundan, doğal sınırlamalara sahiptir. Bu nedenle, uygulamaları temel ve ilaç geliştirme araştırmalarını engellemektedir. Yetişkin kök hücre bazlı organoidler (bundan böyle organoidler olarak anılacaktır), türetildikleri normal veya hastalıklı epitel dokusunun minyatürleridir. Farklı gastrointestinal (GI) sistem bölgelerinden çok verimli bir şekilde kurulabilirler, uzun süreli genişletilebilirliğe sahiptirler ve in vitro tedavilere doku ve hastaya özgü yanıtları simüle ederler. Burada, intestinal organoid kaynaklı epitel monokatmanlarının oluşumu, epitel bariyer bütünlüğünü, geçirgenliği ve transportunu, antimikrobiyal protein sekresyonunu ve histolojiyi ölçme yöntemleri ile birlikte gösterilmiştir. Ayrıca, bağırsak organoidinden türetilmiş tek katmanlar, çoğalan kök ve transit yükseltici hücrelerin yanı sıra anahtar farklılaşmış epitel hücreleri ile zenginleştirilebilir. Bu nedenle, bileşiklerin hedef hücreler üzerindeki etkilerini ve etki biçimlerini incelemek için uyarlanabilecek bir model sistemi temsil ederler. Organoid kültürler teknik olarak hücre hatlarından daha zorlu olsalar da, bir kez kurulduktan sonra, in vivo epitel karmaşıklığını ve hastalar arası heterojenliği gerçekten temsil ettikleri için ilaç geliştirmenin sonraki aşamalarındaki başarısızlıkları azaltabilirler.

Introduction

Bağırsak epiteli, bağırsakların luminal içeriği ile altta yatan doku arasında fiziksel bir bariyer görevi görür. Bu bariyer, bitişik hücreler arasında güçlü hücreler arası bağlantılar kuran sıkı kavşaklarla bağlanan esas olarak emici enterositlerin tek bir epitel tabakasını içerir. Bu hücreler, bağırsağın apikal (lümen) ve bazolateral taraflarını ayıran polarize bir epitel astarı oluştururken, aynı zamanda sindirilmiş besinlerin ve metabolitlerin parasellüler taşınmasını düzenler. Enterositlere ek olarak, kadeh, paneth ve enteroendokrin hücreler gibi diğer önemli epitel hücreleri de sırasıyla mukus, antimikrobiyal peptitler ve hormonlar üreterek bağırsak homeostazına katkıda bulunur. Bağırsak epiteli, lösin bakımından zengin tekrar içeren G-proteini eşleşmiş reseptör 5-pozitif (LGR5 +) kök hücrelerinin, yukarı doğru göç eden ve diğer hücre tiplerine farklılaşan geçiş-yükseltici (TA) hücreler üreten bağırsak kriptlerinin dibinde bölünmesiyle sürekli olarak yenilenir1. İntestinal epitel homeostazının gıda alerjenlerine, tıbbi bileşiklere ve mikrobiyal patojenlere maruz kalma gibi genetik ve çevresel faktörlerle bozulması, bağırsak bariyer fonksiyonunun bozulmasına yol açar. Bu koşullar, inflamatuar bağırsak hastalığı (IBD), çölyak hastalığı ve ilaca bağlı GI toksisitesi 2 dahil olmak üzere çeşitli bağırsak hastalıklarına nedenolur.

Bağırsak epiteli ile ilgili çalışmalar, membran ekleri, çip üzerindeki organlar, Ussing odaları ve bağırsak halkaları gibi çeşitli in vitro platform sistemleri kullanılarak gerçekleştirilir. Bu platformlar, membranın hem apikal hem de bazolateral taraflarına erişimi olan, dönüştürülmüş hücre hatlarını veya birincil dokuyu model olarak kullanan polarize epitel monokatmanları oluşturmak için uygundur. Kolorektal (adeno) karsinom hücre hatları Caco-2, T84 ve HT-29 gibi dönüştürülmüş hücre hatları, polarize bağırsak enterositlerine veya mukus üreten hücrelere bir dereceye kadar farklılaşabilse de, birkaç hücre tipi eksik olduğundan ve çeşitli reseptörler ve taşıyıcılar anormal bir şekilde ifade edildiğinden in vivo epiteli temsil etmezler3 . Ek olarak, hücre hatları tek bir donörden türetildiğinden, hastalar arası heterojenliği temsil etmezler ve karmaşıklığın ve fizyolojik ilginin azalmasından muzdariptirler. Ussing odalarında ve bağırsak halkaları olarak kullanılan birincil dokular in vivo durumu daha iyi temsil etse de, sınırlı kullanılabilirlikleri, kısa süreli canlılıkları ve genişletilebilirlik eksikliği, onları yüksek verimli (HT) çalışmalar için bir ortam olarak uygun hale getirmemektedir.

Organoidler bağırsak, böbrek, karaciğer, pankreas ve akciğer gibi farklı organlardan kurulan in vitro epitel kültürleridir. Uzun vadeli, stabil genişleyen ve genetik ve fenotipik stabiliteye sahip oldukları kanıtlanmıştır ve bu nedenle orijinal organın epitelinin temsili biyolojik minyatürleridir ve dış uyaranlara sadık tepkiler verirler 4,5,6,7,8,9. Organoidler, heterojen hastaya özgü yanıtları temsil eden normal, hastalıklı, iltihaplı veya kanserli dokudan rezeke edilmiş veya biyopsi yapılmış 10,11,12,13,14,15,16 etkili bir şekilde kurulur. Bu yazıda organoid kültürlerden türetilen intestinal epitel monokatmanlarının nasıl oluşturulacağı gösterilmektedir. Tek katmanlı maddeler ince bağırsakların yanı sıra kolonik ve rektal organoid kültürlerden de başarıyla kurulmuştur. Bu model, epitel hücrelerinin ilaçlara taşınmasını ve geçirgenliğini ve epitel üzerindeki toksikolojik etkilerini incelemek için bir fırsat yaratır. Dahası, model, bağışıklık hücreleri ve bakterilerle birlikte kültürün bağırsak epiteli ile etkileşimlerini incelemesine izin verir17,18,19. Ayrıca, bu model tedavilere verilen yanıtları hastaya özgü bir şekilde incelemek ve epitel bariyer odaklı terapötiklerin bir sonraki dalgasını aramak için tarama çabalarını başlatmak için kullanılabilir. Böyle bir yaklaşım kliniğe genişletilebilir ve kişiselleştirilmiş tedavilere giden yolu açabilir.

Bu protokoldeki epitel monokatmanları insan normal bağırsak organoidlerinden hazırlanmış olsa da, protokol diğer organoid modeller için uygulanabilir ve optimize edilebilir. Epitelyal organoid monokatmanlar, kök hücre proliferasyonunu desteklemek ve bağırsak kript hücresel kompozisyonunu temsil etmek için Wnt içeren intestinal organoid genişleme ortamında kültürlenir. Bağırsak organoidleri, Wnt, Notch ve epidermal büyüme faktörü (EGF) yollarını modüle ederek enterositler, Paneth, kadeh ve enteroendokrin hücreler gibi farklı bağırsak epitel kaderlerine sahip olacak şekilde zenginleştirilebilir. Burada, genleşme ortamında tek katmanların kurulmasından sonra, daha önce tarif edildiği gibi daha farklılaşmış bağırsak epitel hücrelerine doğru yönlendirilirler20,21,22,23,24,25. Tarama amacıyla, ilgilenilen bileşiğin etki şekline, hedef hücrelerine ve deneysel koşullara bağlı olarak, tek katmanlar, bileşiğin etkilerini ilgili fonksiyonel okumalarla ölçmek için tercih edilen hücresel bileşime doğru yönlendirilebilir.

Protocol

1. Kültür için reaktiflerin hazırlanması NOT: Bir biyogüvenlik kabini içindeki tüm adımları uygulayın ve hücre kültürleriyle çalışmak için standart yönergeleri izleyin. Ultraviyole ışık, biyogüvenlik kabinini çalıştırmadan önce 10 dakika boyunca kullanılır. Kullanım öncesi ve sonrasında, biyogüvenlik kabininin yüzeyi% 70 etanol içine batırılmış bir kağıt mendil ile temizlenir. Üç boyutlu hücre dışı matris (ECM) damlalarının oluşumunu kolaylaşt?…

Representative Results

Şekil 1A, bağırsak organoidlerinin bir kriyovyalden çözüldükten sonra temsili bir parlak alan görüntüsünü göstermektedir. Optimal iyileşmeyi sağlamak için organoidleri yüksek yoğunlukta çözmek önemlidir. Organoidler, yaklaşık 10 μL’lik ECM kubbelerinde 24 veya 6 delikli plakalar halinde kaplanır (Şekil 1B). Çoğu normal bağırsak organoidinin kistik morfolojisi vardır. Çözülme işleminden kurtulduktan sonra, organoidler daha büy?…

Discussion

Bu protokol, bağırsak organoidlerinin genel manipülasyonunu ve bakımını ve ayrıca bu organoidlerden türetilen epitel monokatmanlarının hazırlanmasını ve olası uygulamalarını açıklar. Bugüne kadar, monokatmanlar, normal, daha önce ve aktif olarak iltihaplı bağırsak dokusundan türetilen duodenum, ileum ve kolon organoidlerinin farklı bölgelerinden başarıyla hazırlanmıştır (yayınlanmamış veriler). Hasta kaynaklı organoid monokatmanların uygulanması, bariyer fonksiyonunun hastalığa ve …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Hollanda LSH sektörünün Topsector Life Sciences & Health – Topconsortium voor Kennis en Innovatie Health ~ Holland (LSH-TKI) kamu-özel sektör ortaklıkları (PPP) ödeneği tarafından desteklenmektedir LSHM16021 Proje numarası ile Hubrecht Organoid Teknolojisine (HUB) toksikoloji modellemesi için yeni bir araç olarak Organoidler ve Hastalık Modelleme ve Toksikoloji departmanına HUB iç finansmanı. Sabine Middendorp (Pediatrik Gastroenteroloji Bölümü, Wilhelmina Çocuk Hastanesi, UMC, Utrecht) ve Hugo R. de Jonge ve Marcel J.C. Bijvelds (Gastroenteroloji ve Hepatoloji Bölümü, Erasmus MC, Rotterdam) laboratuvarlarına, membran eklerinde tek katmanlı tabakalar kurmak için ilk teknik desteği sağladıkları için teşekkür ederiz.

Materials

100% ethanol Fisher Emergo 10644795
1250, 300, and 20 µL low-retention filter-tips Greiner bio-one 732-1432 / 732-1434 / 732-2383
15 mL conical tubes Greiner bio-one 188271
24-well cell culture plates Greiner bio-one 662160
24-well HTS Fluoroblok Transwell plate (light-tight) Corning 351156 Plates require REMS AutoSampler for TEER measurements
24-well HTS Transwell plates (Table 1) Corning 3378
24-well plate with Transwell inserts Corning 3470 membrane inserts
40 µm cell strainer PluriSelect 43-50040-01
50 mL conical tubes Greiner bio-one 227261
6-well cell culture plates Greiner bio-one 657160
96-well black plate transparent bottom Greiner bio-one 655090
96-well fast thermal cycling plates Life Technologies Europe BV 4346907
96-well HTS Fluoroblok Transwell plate Corning 351162
96-well HTS Transwell plates (Table 1) Corning 7369
96-well transparent culture plate Greiner bio-one 655180
A83-01 Bio-Techne Ltd 2939
Accutase Cell Dissociation Reagent Life Technologies Europe BV A11105-01
Advanced DMEM/F-12 Life Technologies Europe BV 12634028
B27 supplement Life Technologies Europe BV 17504001
Cell culture microscope (light / optical microscope) Leica
CellTiter-Glo Promega G9683
Centrifuge Eppendorf
CO2 incubator PHCBI
DAPT Sigma-Aldrich D5942
DEPC treated H2O Life Technologies Europe BV 750024
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) with Ca2+ and Mg2+ Life Technologies Europe BV 14040091
DPBS, powder, no calcium, no magnesium Life Technologies Europe BV 21600069
EnzChek Lysozyme Assay Kit Life Technologies Europe BV E22013
EVOM2 meter with STX electrode WTI
Gastrin Bio-Techne Ltd 3006
Glass pipettes Volac
GlutaMAX Life Technologies Europe BV 35050038
hEGF Peprotech AF-100-15
HEPES Life Technologies Europe BV 15630056
Human Noggin Peprotech 120-10C
Human Rspo3 Bio-Techne Ltd 3500-RS/CF
IWP-2 Miltenyi Biotec 130-105-335
Ki67 primary antibody Sanbio BSH-7302-100
Ki67 secondary antibody Agilent K400111-2
Kova International Glasstic Slide with Counting grids Fisher Emergo 10298483
Laminar flow hood Thermo scientific
Lucifer Yellow CH dilithium salt Sigma-Aldrich L0259
Matrigel, Growth Factor Reduced (GFR) Corning 356231 extracellular matrix (ECM)
MicroAmp Fast 8-Tube Strip, 0.1 mL Life Technologies Europe BV 4358293
MicroAmp Optical 8-Cap Strips Life Technologies Europe BV 4323032
Microcentrifuge tubes Eppendorf 0030 120 086
Micropipettes (1000, 200, and 20 µL) Gilson
Microtome Leica
MUC2 primary antibody Santa Cruz Biotechnology sc-15334
MUC2 secondary antibody VWR VWRKS/DPVR-HRP
Multichannel pipette (200 µL) Gilson
N-acetylcysteine Sigma-Aldrich A9165
NGS Wnt U-Protein Express N001-0.5mg
Nicotinamide Sigma-Aldrich N0636
Oligonucleotide ALPI1/Forward Custom-made GGAGTTATCCTGCTCCCCAC
Oligonucleotide ALPI1/Reverse Custom-made CTAGGAGGTGAAGGTCCAACG
Oligonucleotide LGR5/Forward Custom-made ACACGTACCCACAGAAGCTC
Oligonucleotide LGR5/Reverse Custom-made GGAATGCAGGCCACTGAAAC
Oligonucleotide MUC2/Forward Custom-made AGGATCTGAAGAAGTGTGTCACTG
Oligonucleotide MUC2/Reverse Custom-made TAATGGAACAGATGTTGAAGTGCT
Oligonucleotide TBP/Forward Custom-made ACGCCGAATATAATCCCAAGCG
Oligonucleotide TBP/Reverse Custom-made AAATCAGTGCCGTGGTTCGTG
Optical adhesive covers Life Technologies Europe BV 4311971
PD0325901 Stemcell Technologies 72184
Penicillin/streptomycin Life Technologies Europe BV 15140122
Plate shaker Panasonic
PowerUp SYBR Green Master Mix Fisher Emergo A25776
Primocin InvivoGen ANT-PM-2 antimicrobial formulation for primary cells
Qubit RNA HS Assay Kit Life Technologies Europe BV Q32852
Reagent reservoir for multichannel pipet Sigma-Aldrich CLS4870
REMS AutoSampler with 24-probe or 96C-probe WTI
Richard-Allan Scientific Alcian Blue/PAS Special Stain Kit Thermo scientific 87023
RNase-Free DNase Set Qiagen 79254
RNeasy Mini Kit Qiagen 74106
SB202190 Sigma-Aldrich S7076
Serological pipettes Greiner bio-one 606180 / 607180 / 760180
Serological pipettor (Pipet-Aid) Drummond
Single edge razor blade GEM Scientific
Superscript 1st strand system for RT-PCR Life Technologies Europe BV 11904018
Tecan Spark 10M plate reader Tecan
Trypan Blue Solution, 0.4% Life Technologies Europe BV 15250-061
TrypLE Express Enzyme (1x) Life Technologies Europe BV 12605-010 Cell dissociation reagent
Water bath Grant
Y27632 (ROCK inhibitor) AbMole M1817

Referências

  1. Haegebarth, A., Clevers, H. Wnt signaling, lgr5, and stem cells in the intestine and skin. The American Journal of Pathology. 174 (3), 715-721 (2009).
  2. Schoultz, I., Keita, &. #. 1. 9. 7. ;. V. The intestinal barrier and current techniques for the assessment of gut permeability. Cells. 9 (8), 1909 (2020).
  3. Martínez-Maqueda, D., Miralles, B., Recio, I., Verhoeckx, K. HT29 Cell Line. The Impact of Food Bio-Actives on Gut Health: In Vitro and Ex Vivo Models. , 113-124 (2015).
  4. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  5. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology. 141 (5), 1762-1772 (2011).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5(+) liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 11 (2), 179-194 (2013).
  7. Sachs, N., et al. Long-term expanding human airway organoids for disease modeling. The EMBO Journal. 38 (4), 1-20 (2019).
  8. Karthaus, W. R., et al. Identification of multipotent luminal progenitor cells in human prostate organoid cultures. Cell. 159 (1), 163-175 (2014).
  9. Boj, S. F., et al. Organoid models of human and mouse ductal pancreatic cancer. Cell. 160 (1-2), 324-338 (2015).
  10. Sachs, N., et al. A living biobank of breast cancer organoids captures disease heterogeneity. Cell. 172 (1-2), 373-386 (2018).
  11. Vlachogiannis, G., et al. Patient-derived organoids model treatment response of metastatic gastrointestinal cancers. Science. 359 (6378), 920-926 (2018).
  12. Van De Wetering, M., et al. Prospective derivation of a living organoid biobank of colorectal cancer patients. Cell. 161 (4), 933-945 (2015).
  13. Driehuis, E., et al. Pancreatic cancer organoids recapitulate disease and allow personalized drug screening. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (52), 26580-26590 (2019).
  14. Tiriac, H., et al. Organoid profiling identifies common responders to chemotherapy in pancreatic cancer. Cancer Discovery. 8 (9), 1112-1129 (2018).
  15. d’Aldebert, E., et al. Characterization of human colon organoids from inflammatory bowel disease patients. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 363 (2020).
  16. Dotti, I., et al. Alterations in the epithelial stem cell compartment could contribute to permanent changes in the mucosa of patients with ulcerative colitis. Gut. 66 (12), 2069-2079 (2017).
  17. VanDussen, K. L., et al. Development of an enhanced human gastrointestinal epithelial culture system to facilitate patient-based assays. Gut. 64 (6), 911-920 (2015).
  18. Noel, G., et al. A primary human macrophage-enteroid co-culture model to investigate mucosal gut physiology and host-pathogen interactions. Scientific Reports. 7, 45270 (2017).
  19. Bartfeld, S., et al. In vitro expansion of human gastric epithelial stem cells and their responses to bacterial infection. Gastroenterology. 148 (1), 126-136 (2015).
  20. van Es, J. H., et al. Wnt signalling induces maturation of Paneth cells in intestinal crypts. Nature Cell Biology. 7 (4), 381-386 (2005).
  21. van Es, J. H., et al. Dll1 marks early secretory progenitors in gut crypts that can revert to stem cells upon tissue damage. Nature Cell Biology. 14 (10), 1099-1104 (2012).
  22. de Lau, W. B. M., Snel, B., Clevers, H. C. The R-spondin protein family. Genome Biology. 13 (3), 1-10 (2012).
  23. Basak, O., Beumer, J., Wiebrands, K., Seno, H., van Oudenaarden, A., Clevers, H. Induced quiescence of Lgr5+ stem cells in intestinal organoids enables differentiation of hormone-producing enteroendocrine cells. Cell Stem Cell. 20 (2), 177-190 (2017).
  24. Beumer, J., et al. Enteroendocrine cells switch hormone expression along the crypt-to-villus BMP signalling gradient. Nature Cell Biology. 20 (8), 909-916 (2018).
  25. Yin, X., Farin, H. F., van Es, J. H., Clevers, H., Langer, R., Karp, J. M. Niche-independent high-purity cultures of Lgr5+ intestinal stem cells and their progeny. Nature Methods. 11 (1), 106-112 (2014).
  26. Boj, S. F., et al. Forskolin-induced swelling in intestinal organoids: An in vitro assay for assessing drug response in cystic fibrosis patients. Journal of Visualized Experiments. (120), (2017).
  27. Miao, Y., et al. Next-generation surrogate Wnts support organoid growth and deconvolute Frizzled pleiotropy in vivo. Cell Stem Cell. 27 (5), 840-851 (2020).
  28. Srinivasan, B., et al. TEER measurement techniques for in vitro barrier model systems. Journal of Laboratory Automation. 20 (2), 107-126 (2015).
  29. Blume, L. -. F., Denker, M., Gieseler, F., Kunze, T. Temperature corrected transepithelial electrical resistance (TEER) measurement to quantify rapid changes in paracellular permeability. Die Pharmazie. 65 (1), 19-24 (2010).
  30. Lea, T., Verhoeckx, K., et al. Caco-2 cell line. The Impact of Food Bio-Actives on Gut Health: In Vitro and Ex Vivo Models. , 103-111 (2015).
  31. Heo, I., et al. Modelling Cryptosporidium infection in human small intestinal and lung organoids. Nature Microbiology. 3 (7), 814-823 (2018).
  32. Watanabe, K., et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 25 (6), 681-686 (2007).
check_url/pt/62074?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
van Dooremalen, W. T. M., Derksen, M., Roos, J. L., Higuera Barón, C., Verissimo, C. S., Vries, R. G. J., Boj, S. F., Pourfarzad, F. Organoid-Derived Epithelial Monolayer: A Clinically Relevant In Vitro Model for Intestinal Barrier Function. J. Vis. Exp. (173), e62074, doi:10.3791/62074 (2021).

View Video