Summary

Elektriska och magnetiska fältenheter för stimulering av biologiska vävnader

Published: May 15, 2021
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver steg-för-steg-processen för att bygga både elektriska och magnetiska stimulatorer som används för att stimulera biologiska vävnader. Protokollet innehåller en riktlinje för att simulera beräknings elektriska och magnetiska fält och tillverkning av stimulatorenheter.

Abstract

Elektriska fält (EFs) och magnetfält (MFs) har använts i stor utsträckning av vävnadsteknik för att förbättra celldynamiken som spridning, migrering, differentiering, morfologi och molekylär syntes. Variabler som stimuli styrka och stimuleringstider måste dock beaktas när man stimulerar antingen celler, vävnader eller byggnadsställningar. Med tanke på att EU och MFs varierar beroende på cellulärt svar är det fortfarande oklart hur man bygger enheter som genererar adekvata biofysiska stimuli för att stimulera biologiska prover. I själva verket finns det brist på bevis för beräkningen och fördelningen när biofysiska stimuli tillämpas. Detta protokoll är inriktat på konstruktion och tillverkning av produkter för att generera EU-fonder och MFs och implementering av en beräkningsmetodik för att förutsäga biofysisk stimulifördelning inom och utanför biologiska prover. EF-enheten bestod av två parallella elektroder av rostfritt stål som ligger högst upp och längst ner i biologiska kulturer. Elektroder var anslutna till en oscillator för att generera spänningar (50, 100, 150 och 200 Vp-p) vid 60 kHz. MF-enheten bestod av en spole, som strömförseddes med en transformator för att generera en ström (1 A) och spänning (6 V) vid 60 Hz. Ett polymethylmetylmetakrylatstöd byggdes för att lokalisera de biologiska kulturerna i mitten av spolen. Beräkningssimuleringen belyses den homogena fördelningen av EU och MFs inom och utanför biologiska vävnader. Denna beräkningsmodell är ett lovande verktyg som kan ändra parametrar som spänningar, frekvenser, vävnadsmorfologier, brunnsplattatyper, elektroder och spolestorlek för att uppskatta EU och MFs för att uppnå ett cellulärt svar.

Introduction

EU och MFs har visat sig ändra celldynamiken, stimulera spridning och öka syntesen av de viktigaste molekylerna i samband med den extracellulära matrisen avvävnader 1. Dessa biofysiska stimuli kan appliceras på olika sätt med hjälp av specifika inställningar och enheter. När det gäller anordningar för att generera EU-medel använder stimulatorer för direktkoppling elektroder som är i kontakt med biologiska prover in vitro eller implanteras direkt i vävnader hos patienter och djur in vivo2. Det finns dock fortfarande begränsningar och brister som inkluderar otillräcklig biokompatibilitet av elektroderna i kontakt, förändringar i pH- och molekylära syrenivåer1. Tvärtom genererar indirekta kopplingsanordningar EU-filer mellan två elektroder, som placeras parallellt med biologiska prover3, vilket möjliggör en icke-invasiv alternativ teknik för att stimulera biologiska prover och undvika direktkontakt mellan vävnader och elektroder. Denna typ av enhet kan extrapoleras till framtida kliniska applikationer för att utföra förfaranden med minimal invasion till patienten. När det gäller enheter som genererar MFs skapar induktiva kopplingstimulatorer en tidsvarierande elektrisk ström, som strömmar genom en spole som ligger runtcellkulturer 4,5. Slutligen finns det kombinerade enheter, som använder EU och statiska MFs för att generera övergående elektromagnetiska fält1. Med tanke på att det finns olika konfigurationer för att stimulera biologiska prover är det nödvändigt att överväga variabler som spänning och frekvens när biofysiska stimuli appliceras. Spänning är en viktig variabel, eftersom den påverkar beteendet hos biologiska vävnader; till exempel har det visat sig att cellmigration, orientering och genuttryck beror på amplituden av appliceradspänning 3,6,7,8,9,10. Frekvens spelar en viktig roll i biofysisk stimulering, eftersom det har visat sig att dessa förekommer naturligt in vivo. Det har visat sig att höga och låga frekvenser har positiva effekter på celler. särskilt i cellmembranspänningsgrisade kalciumkanaler eller endoplasmiskt retikulum, som utlöser olika signalvägar på intracellulär nivå1,7,11.

Enligt ovan består en anordning för att generera EU-fonder av en spänningsgenerator ansluten till två parallella kondensatorer12. Denna enhet genomfördes av Armstrong et al. för att stimulera både proliferativ hastighet och molekylär syntes av kondrocyter13. En anpassning av denna enhet utfördes av Brighton et al. som modifierade cellkulturens brunnsplattor genom att borra sina övre och nedre lock. Hål fylldes av täckglas, där bottenglasen användes för att odla biologiska vävnader. Elektroder placerades på varje täckrutschbana för att generera EFs14. Denna enhet användes för att elektriskt stimulera kondrocyter, osteoblaster och brosk explanter, visar en ökning av cellproliferation14,15,16 och molekylär syntes3,17. Enheten som designades av Hartig et al. bestod av en våggenerator och en spänningsförstärkare, som var anslutna till parallella kondensatorer. Elektroder tillverkades av högkvalitativt rostfritt stål som ligger i ett isolerande fodral. Enheten användes för att stimulera osteoblaster, visar en betydande ökning av spridning och proteinsekretion18. Enheten som användes av Kim et al. bestod av ett bifasiskt strömstimulatorchip, som byggdes med hjälp av en tillverkningsprocess av kompletterande halvledare av högspänningsmetalloxid. En kultur välplåt utformades för att odla celler över en ledande yta med elektrisk stimulering. Elektroder var belagda i guld över kiselplattor19. Denna anordning användes för att stimulera osteoblaster, vilket visar en ökning av spridningen och syntesen av vaskulär endoteltillväxtfaktor19, och stimulera produktionen av alkalisk fosfatasaktivitet, kalciumdeposition och benmorfogena proteiner20. På samma sätt användes denna anordning för att stimulera proliferativ hastighet och uttryck av vaskulär endotel tillväxtfaktor för mänskliga benmärg mesenchymala stamceller21. Enheten som designades av Nakasuji et al. bestod av en spänningsgenerator ansluten till platinaplattor. Elektroder byggdes för att mäta den elektriska potentialen vid 24 olika punkter. Denna anordning användes för att stimulera kondrocyter, vilket visar att EFs inte ändrade cellmorfologi och ökad spridning och molekylär syntes22. Den anordning som användes av Au et al. bestod av en glaskammare utrustad med två kolstavar anslutna till en hjärtstimulator med platinatrådar. Denna stimulator användes för att stimulera kardiomyocyter och fibroblaster, förbättra cellförlängning och fibroblast inriktning23.

Olika MF-enheter har tillverkats baserat på Helmholtz spolar för att stimulera flera typer av biologiska prover. Till exempel har Helmholtz spolar använts för att stimulera spridning och molekylär syntes av kondrocyter24,25, förbättra proteoglykansyntesen av artikulär brosk explanter26, förbättra genuppreglering relaterad till benbildning av osteoblastliknande celler27, och öka spridningen och molekylära uttrycket av endotelceller28. Helmholtz spolar genererar MFs i två spolar som ligger framför varandra. Spolarna skall placeras med ett avstånd som motsvarar spolens radie för att säkerställa ett homogent MF. Nackdelen med att använda Helmholtz spolar ligger i spoldimensionerna, eftersom de måste vara tillräckligt stora för att generera den önskade MF-intensiteten. Dessutom måste avståndet mellan spolarna vara tillräckligt för att säkerställa en homogen fördelning av MFs runt biologiska vävnader. För att undvika problem orsakade av Helmholtz spolar har olika studier fokuserats på solenoidspolar tillverkning. Solenoidspolar är baserade på ett rör, som lindas med koppartråd för att generera MFs. Koppartrådsingångar kan anslutas direkt till uttaget eller en strömförsörjning för att driva spolen och skapa MFs i mitten av solenoiden. Ju fler varv spolen har, desto större är MF-genererad. MF-magnituden beror också på spänningen och strömmen som appliceras för att ge ström åtspolen 29. Solenoidspolar har använts för att stimulera magnetiskt olika typer av celler som HeLa, HEK293 och MCF730 eller mesenkymala stamceller31.

Produkter som används av olika upphovsmän har inte beaktat vare sig elektrodernas tillräckliga storlek eller rätt längd på spolen för att homogent distribuera både EUF och MFs. Dessutom genererar enheter fasta spänningar och frekvenser, vilket begränsar deras användning för att stimulera specifika biologiska vävnader. Av denna anledning utförs i detta protokoll en riktlinje för beräkningssimulering för att simulera både kapacitiva system och spolar för att säkerställa homogen fördelning av EU och MFs över biologiska prover, vilket undviker kanteffekten. Dessutom visas att utformningen av elektroniska kretsar genererar spänningar och frekvens mellan elektroderna och spolen, vilket skapar EU-fonder och MFs som kommer att övervinna begränsningar som orsakas av impedans av cellkulturbrunnplattor och luft. Dessa modifieringar kommer att göra det möjligt att skapa icke-invasiva och adaptiva bioreaktorer för att stimulera någon biologisk vävnad.

Protocol

1. Simulering av EU-fonder och MFs OBS: Simulering av EU och MFs utfördes i COMSOL Multiphysics. Välj en axisymmetrisk 2D-konfiguration som representerar både domäner elektriska och magnetiska. I fysikkonfigurationen väljer du antingen gränssnittet Elektrisk ström för att beräkna EFs i parallella elektroder eller magnetic field-gränssnittet för att beräkna MFs runt spolar. I studiekonfigurationen väljer du Fre…

Representative Results

BeräkningssimuleringFördelningar av EUF och MFs visas i figur 3. Å ena sidan var det möjligt att observera den homogena fördelningen av EU-fonder i kapacitivsystemet (figur 3A). Ef ritades för att i detalj observera fältets storlek inuti det biologiska provet (figur 3B). Denna simulering var användbar för att parametrisera storleken på elektroderna och tillverka dem för att undvika kanteffekten. Å an…

Discussion

Behandlingar som används för att läka olika patologier som påverkar mänskliga vävnader är farmakologiska terapier32 eller kirurgiskaingrepp 33, som försöker lindra smärta lokalt eller ersätta drabbade vävnader med explanter eller transplantationer. Nyligen har autolog cellterapi föreslagits som en alternativ terapi för att behandla skadade vävnader, där celler isoleras från patienten och utvidgas, genom in vitro-tekniker, för att implanteras på platsen f?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar det ekonomiska stödet från “Fondo Nacional de Financiamiento para la Ciencia, la Tecnología, y la Innovación -Fondo Francisco José de Caldas- Minciencias” och Universidad Nacional de Colombia genom bidraget nr 80740-290-2020 och det stöd som Valteam Tech – Research and Innovation fått för att tillhandahålla utrustning och tekniskt stöd i videons utgåva.

Materials

Electrical stimulator
Operational amplifier Motorola LF-353N —-
Quantity: 1
Resistors —- —- 22 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 10 kΩ
Quantity: 3
Resistors —- —- 2.6 kΩ
Quantity: 2
Resistors —- —- 2.2 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 1 kΩ
Quantity: 1
Resistors —- —- 220 Ω
Quantity: 2
Resistors —- —- 22 Ω
Quantity: 5
Resistors —- —- 10 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 6.8 Ω
Quantity: 1
Resistors —- —- 3.3 Ω
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 1 nF
Quantity: 2
Polyester capacitors —- —- 100 nF
Quantity: 1
VHF Band Amplifier Transistor JFET Toshiba 2SK161 —-
Quantity: 1
Power transistor BJT NPN Mospec TIP 31C —-
Quantity: 1
Zener diode Microsemi 1N4148 —-
Quantity: 1
Switch Toogle Switch SPDT – T13 —-
Quantity: 3
Toroidal ferrite core Caracol —- T*22*14*8
Quantity: 1
Cooper wire Greenshine —- AWG – 24
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 8 pin connectors
Quantity: 1
Relimate header with female housing ADAFRUIT —- 2 pin connectors
Quantity: 1
Female plug terminal connector JIALUN —- 4mm Lantern Plugs (Plug + Socket) 15 A
Quantity: 1
Aluminum Heat Sink AWIND —- For TIP 31C transistor
Quantity: 1
Led CHANZON —- 5 mm red
Quantity: 1
Integrated circuit socket connector Te Electronics Co., Ltd. —- Double row 8-pin DIP
Quantity: 1
3 pin connectors set STAR —- JST PH 2.0
Quantity: 3
2 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
3 pin screw connectors STAR —- For PCB
Quantity: 1
Banana connector test lead JIALUN —- P1041 – 4 mm – 15 A
Quantity: 7
Bullet connectors to banana plug charge lead JIALUN —- 4 mm male-male/female-female adapters – 15 A
Quantity: 1
Case —- —- ABS
Quantity: 1
Electrodes —- —- Stainless – steel
Quantity: 2
Electrode support —- —- Teflon
Quantity: 2
Printed circuit board Quantity: 1
Magnetic stimulator
Cooper wire Greenshine —- AWG – 18
Quantity: 1
AC power plugs —- —- 120 V AC – 60 Hz
Quantity: 1
Banana female connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm – 15 A
Quantity: 2
Banana male connector test lead JIALUN —- 1Set Dual Injection – 4 mm 15 A
Quantity: 1
Cell culture well plate support —- —- PMMA
Quantity: 1
Fuse Bussmann 2A —-
Quantity: 1
Transformer —- —- 1A – 6 V AC
Quantity: 1
Tube —- —- PVC
Quantity: 1
Variable rheostat MCP BXS150 10 Ω
Quantity: 1
General equipment
Digital dual source  PeakTech DG 1022Z 2 x 0 – 30 V / 0 – 5 A CC / 5 V / 3 A fijo
Quantity: 1
Digital Oscilloscope Rigol DS1104Z Plus 100 MHz, bandwidth, 4 channels
Quantity: 1
Digital multimeter Fluke F179 Voltage CC – CA (1000 V). Current CC – CA 10 A. Frequency 100 kHz
Quantity: 1

Referências

  1. Balint, R., Cassidy, N. J., Cartmell, S. H. Electrical Stimulation: A Novel Tool for Tissue Engineering. Tissue Engineering Part B: Reviews. 19 (1), 48-57 (2013).
  2. Ercan, B., Webster, T. J. The effect of biphasic electrical stimulation on osteoblast function at anodized nanotubular titanium surfaces. Biomaterials. 31 (13), 3684-3693 (2010).
  3. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. The effect of electrical fields on gene and protein expression in human osteoarthritic cartilage explants. The Journal of Bone and Joint Surgery-American. 90 (4), 833-848 (2008).
  4. Baerov, R. M., Morega, A. M., Morega, M. Analysis of magnetotherapy effects for post-traumatic recovery of limb fractures. Revue Roumaine des Sciences Techniques- Série électrotechnique et énergétique. 65 (1-2), 145-150 (2020).
  5. Escobar, J. F., et al. In Vitro Evaluation of the Effect of Stimulation with Magnetic Fields on Chondrocytes. Bioelectromagnetics. 41 (1), 41-51 (2019).
  6. Brighton, C., Wang, W., Clark, C. Up-regulation of matrix in bovine articular cartilage explants by electric fields. Biochemical and Biophysical Research Communications. 342 (2), 556-561 (2006).
  7. Xu, J., Wang, W., Clark, C., Brighton, C. Signal transduction in electrically stimulated articular chondrocytes involves translocation of extracellular calcium through voltage-gated channels. Osteoarthritis and Cartilage. 17 (3), 397-405 (2009).
  8. Xia, Y., et al. Magnetic field and nano-scaffolds with stem cells to enhance bone regeneration. Biomaterials. 183, 151-170 (2018).
  9. Richter, A., Bartoš, M., Ferková, &. #. 3. 8. 1. ;. Physical Analysis of Pulse Low-Dynamic Magnetic Field Applied in Physiotherapy BT. World Congress on Medical Physics and Biomedical Engineering 2018. , 239-245 (2019).
  10. Miyakoshi, J. Effects of static magnetic fields at the cellular level. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 87, 213-223 (2005).
  11. Zhang, K., Guo, J., Ge, Z., Zhang, J. Nanosecond Pulsed Electric Fields (nsPEFs) Regulate Phenotypes of Chondrocytes through Wnt/β-catenin Signaling Pathway. Scientific Reports. 4 (5836), 1-8 (2014).
  12. Brighton, C. T., Unger, A. S., Stambough, J. L. In vitro growth of bovine articular cartilage chondrocytes in various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 15-22 (1984).
  13. Armstrong, P. F., Brighton, C., Star, A. M. Capacitively coupled electrical stimulation of bovine growth plate chondrocytes grown in pellet form. Journal of Orthopaedic Research. 6 (2), 265-271 (1988).
  14. Brighton, C., Townsend, P. Increased cAMP production after short-term capacitively coupled stimulation in bovine growth plate chondrocytes. Journal of Orthopaedic Research. 6 (4), 552-558 (1988).
  15. Brighton, C. T., Jensen, L., Pollack, S. R., Tolin, B. S., Clark, C. Proliferative and synthetic response of bovine growth plate chondrocytes to various capacitively coupled electrical fields. Journal of Orthopaedic Research. 7 (5), 759-765 (1989).
  16. Brighton, C. T., Okereke, E., Pollack, S. R., Clark, C. In vitro bone-cell response to a capacitively coupled electrical field. The role of field strength, pulse pattern, and duty cycle. Clinical Orthopaedics and Related Research. 285, 255-262 (1992).
  17. Wang, W., Wang, Z., Zhang, G., Clark, C., Brighton, C. T. Up-regulation of chondrocyte matrix genes and products by electric fields. Clinical Orthopaedics and Related Research. 427, 163-173 (2004).
  18. Hartig, M., Joos, U., Wiesmann, H. P. Capacitively coupled electric fields accelerate proliferation of osteoblast-like primary cells and increase bone extracellular matrix formation in vitro. European Biophysics Journal. 29 (7), 499-506 (2000).
  19. Kim, I. S., et al. Biphasic electric current stimulates proliferation and induces VEGF production in osteoblasts. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Cell Research. 1763 (9), 907-916 (2006).
  20. Kim, I., et al. Novel Effect of Biphasic Electric Current on In Vitro Osteogenesis and Cytokine Production in Human Mesenchymal Stromal Cells. Tissue Engineering Part A. 15, 2411-2422 (2009).
  21. Kim, I., et al. Novel action of biphasic electric current in vitro osteogenesis of human bone marrow mesenchymal stromal cells coupled with VEGF production. Bone. 43, 43-44 (2008).
  22. Nakasuji, S., Morita, Y., Tanaka, K., Tanaka, T., Nakamachi, E. Effect of pulse electric field stimulation on chondrocytes. Asian Pacific Conference for Materials and Mechanics. 1, 13-16 (2009).
  23. Au, H. T. H., Cheng, I., Chowdhury, M. F., Radisic, M. Interactive effects of surface topography and pulsatile electrical field stimulation on orientation and elongation of fibroblasts and cardiomyocytes. Biomaterials. 28 (29), 4277-4293 (2007).
  24. Vanessa, N., et al. In vitro exposure of human chondrocytes to pulsed electromagnetic fields. European Journal of Histochemistry. 51 (3), 203-211 (2007).
  25. Pezzetti, F., et al. Effects of pulsed electromagnetic fields on human chondrocytes: An in vitro study. Calcified Tissue International. 65 (5), 396-401 (1999).
  26. De Mattei, M., et al. Effects of electromagnetic fields on proteoglycan metabolism of bovine articular cartilage explants. Connective Tissue Research. 44 (3-4), 154-159 (2003).
  27. Sollazzo, V., Massari, L., Caruso, A., Mattei, M., Pezzetti, F. Effects of Low-Frequency Pulsed Electromagnetic Fields on Human Osteoblast-Like Cells In Wtro. Electromagnetobiology. 15, 75-83 (2009).
  28. Martino, C. F., Perea, H., Hopfner, U., Ferguson, V. L., Wintermantel, E. Effects of weak static magnetic fields on endothelial cells. Bioelectromagnetics. 31 (4), 296-301 (2010).
  29. Wada, K., et al. Design and implementation of multi-frequency magnetic field generator producing sinusoidal current waveform for biological researches. 2016 18th European Conference on Power Electronics and Applications (EPE’16 ECCE Europe). 2016, 1-8 (2016).
  30. Cho, H., Kim, S., Kim, K. K., Kim, K., Kim, K. Pulsed Electromagnetic Fields Stimulate Cellular Proliferation in Different Types of Cells. IEEE Transactions on Magnetics. 52 (7), 1-4 (2016).
  31. Yan, J., Dong, L., Zhang, B., Qi, N. Effects of extremely low-frequency magnetic field on growth and differentiation of human mesenchymal stem cells. Electromagnetic Biology and Medicine. 29 (4), 165-176 (2010).
  32. Enoch, S., Grey, J. E., Harding, K. G. ABC of wound healing. Non-surgical and drug treatments. BMJ. 332 (7546), 900-903 (2006).
  33. Bhosale, A. M., Richardson, J. B. Articular cartilage: Structure, injuries and review of management. British Medical Bulletin. 87 (1), 77-95 (2008).
  34. Al Hamed, R., Bazarbachi, A. H., Malard, F., Harousseau, J. -. L., Mohty, M. Current status of autologous stem cell transplantation for multiple myeloma. Blood Cancer Journal. 9 (4), 44 (2019).
  35. Massari, L., et al. Biophysical stimulation of bone and cartilage: state of the art and future perspectives. International Orthopaedics. 43 (3), 539-551 (2019).
  36. Naskar, S., Kumaran, V., Basu, B. Reprogramming the Stem Cell Behavior by Shear Stress and Electric Field Stimulation: Lab-on-a-Chip Based Biomicrofluidics in Regenerative Medicine. Regenerative Engineering and Translational Medicine. 5 (2), 99-127 (2019).
  37. Hunckler, J., de Mel, A. A current affair: electrotherapy in wound healing. Journal of Multidisciplinary Healthcare. 10, 179-194 (2017).
  38. Henry, S. L., Concannon, M. J., Yee, G. J. The effect of magnetic fields on wound healing: experimental study and review of the literature. Eplasty. 8, 393-399 (2008).
  39. Hiemer, B., et al. Effect of electric stimulation on human chondrocytes and mesenchymal stem cells under normoxia and hypoxia. Molecular Medicine Reports. 18 (2), 2133-2141 (2018).
  40. Chao, P. H., et al. Chondrocyte translocation response to direct current electric fields. Journal of Biomechanical Engineering. 122 (3), 261-267 (2000).
  41. Zhao, M., Bai, H., Wang, E., Forrester, J., McCaig, C. Electrical stimulation directly induces pre-angiogenic responses in vascular endothelial cells by signaling through VEGF receptors. Journal of Cell Science. 117 (3), 397-405 (2004).
  42. Li, X., Kolega, J. Effects of direct current electric fields on cell migration and actin filament distribution in bovine vascular endothelial cells. Journal of Vascular Research. 39 (5), 391-404 (2002).
  43. Singh, B., Dixit, A. Multistage amplifier and tuned amplifier. Analog Electronics. , 87-131 (2007).
  44. Esfandiari, E., et al. The effect of high frequency electric field on enhancement of chondrogenesis in human adipose-derived stem cells. Iranian Journal Basic Medical Sciences. 4 (3), 571-576 (2014).
  45. Mardani, M., et al. Induction of chondrogenic differentiation of human adipose-derived stem cells by low frequency electric field. Advanced Biomedical Research. 5 (97), 1-7 (2016).
  46. Karaman, O., Gümüşay, M., Demirci, E. A., Kaya, A. Comparative assessment of pulsed electromagnetic fields (PEMF) and pulsed radio frequency energy (PRFE) on an in vitro wound healing model. International Journal of Applied Electromagnetics and Mechanics. 57, 427-437 (2018).
  47. Glinka, M., et al. Test chambers for cell culture in static magnetic field. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 331, 208-215 (2013).
  48. Vacek, T. P., et al. Electrical stimulation of cardiomyocytes activates mitochondrial matrix metalloproteinase causing electrical remodeling. Biochemical and Biophysical Research Communications. 404 (3), 762-766 (2011).
  49. Okutsu, S., et al. Electric Pulse Stimulation Induces NMDA Glutamate Receptor mRNA in NIH3T3 Mouse Fibroblasts. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 215 (2), 181-187 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Saiz Culma, J. J., Escobar Huertas, J. F., Garzón-Alvarado, D. A., Vaca-Gonzalez, J. J. Electric and Magnetic Field Devices for Stimulation of Biological Tissues. J. Vis. Exp. (171), e62111, doi:10.3791/62111 (2021).

View Video