Summary

Caractérisation fonctionnelle des variantes de RYR1 humaines exprimées de manière endogène

Published: June 09, 2021
doi:

Summary

Ici, les méthodes utilisées pour étudier l’effet fonctionnel des mutations RYR1 exprimées de manière endogène dans les lymphocytes B humains immortalisés par le virus d’Epstein Barr et les cellules satellites dérivées de la biopsie musculaire différenciées en myotubes sont décrites.

Abstract

Plus de 700 variantes du gène RYR1 ont été identifiées chez des patients atteints de différents troubles neuromusculaires, notamment une susceptibilité à l’hyperthermie maligne, des myopathies centrales et une myopathie centronucléaire. En raison des divers phénotypes liés aux mutations RYR1, il est fondamental de caractériser leurs effets fonctionnels pour classer les variantes portées par les patients pour de futures interventions thérapeutiques et identifier les variantes non pathogènes. De nombreux laboratoires se sont intéressés au développement de méthodes pour caractériser fonctionnellement les mutations RYR1 exprimées dans les cellules des patients. Cette approche présente de nombreux avantages, notamment: les mutations sont exprimées de manière endogène, RyR1 n’est pas surexprimé, l’utilisation de cellules hétérologues exprimant RyR1 est évitée. Cependant, étant donné que les patients peuvent présenter des mutations dans différents gènes en dehors de RYR1, il est important de comparer les résultats du matériel biologique d’individus hébergeant la même mutation, avec des antécédents génétiques différents. Le présent manuscrit décrit les méthodes développées pour étudier les effets fonctionnels des variantes de RYR1 exprimées de manière endogène dans: (a) le virus d’Epstein Barr immortalisé les lymphocytes B humains et (b) les cellules satellites dérivées de biopsies musculaires et différenciées en myotubes. Les changements dans la concentration intracellulaire de calcium déclenchés par l’ajout d’un activateur pharmacologique RyR1 sont ensuite surveillés. Le type de cellule sélectionné est chargé d’un indicateur de calcium fluorescent ratiométrique et les changements intracellulaires [Ca2+]sont surveillés soit au niveau de la cellule unique par microscopie à fluorescence, soit dans les populations cellulaires à l’aide d’un spectrofluoromètre. Les courbes dose-réponse agoniste au repos [Ca2+] sont ensuite comparées entre les cellules de témoins sains et les patients hébergeant des variantes de RYR1, ce qui permet de mieux comprendre l’effet fonctionnel d’une variante donnée.

Introduction

À ce jour, plus de 700 variantes de RYR1 ont été identifiées dans la population humaine et liées à divers troubles neuromusculaires, notamment la susceptibilité à l’hyperthermie maligne (MHS), la rhabdomyolyse induite par l’exercice, la maladie du noyau central (CCD), la maladie multi-minicore (MmD), la myopathie centronucléaire (CNM)1,2,3 ; néanmoins, les études visant à caractériser leurs effets fonctionnels sont à la traîne et seulement environ 10% des mutations ont été testées fonctionnellement. Différentes approches expérimentales peuvent être utilisées pour évaluer l’impact d’une variante donnée de RyR1, y compris la transfection de cellules hétérologues telles que les cellules HEK293 et COS-7 avec un codage plasmidique pour le WT et l’ADNc4mutant RYR1,5,la transduction de fibroblastes de souris dyspédiques avec des plasmides et des vecteurs codant pour le WT et l’ADNc RYR1 mutant, suivie d’une transduction avec myo-D et d’une différenciation en myotubes6 , génération de modèles animaux transgéniques porteurs du mutant RyR1s7,8,9, caractérisation de cellules de patients exprimant la variante RYR1 de manière endogène10,11,12. De telles méthodes ont permis d’établir l’impact fonctionnel de différentes mutations sur le canal RyR1 Ca2+.

Ici, les méthodes développées pour évaluer les effets fonctionnels des mutations RYR1 sont décrites. Divers paramètres de l’homéostasie calcique intracellulaire sont étudiés dans des cellules humaines exprimant de manière endogène le canal calcique RyR1, y compris les myotubes et les lymphocytes B immortalisés par le virus d’Epstein Barr (EBV). Les cellules sont obtenues à partir de patients, développées en culture et chargées d’indicateurs de calcium fluorescents ratiométriques tels que Fura-2 ou indo-1. Les paramètres qui ont été signalés comme étant modifiés en raison de mutations pathogènes de RYR1, y compris le repos [Ca2+],la sensibilité à différents agonistes pharmacologiques et la taille des réserves intracellulaires de Ca2+ sont mesurés soit au niveau de la cellule unique, en utilisant la microscopie à fluorescence, soit dans les populations cellulaires à l’aide d’un fluorimètre. Les résultats obtenus dans les cellules des porteurs de mutations sont ensuite comparés à ceux obtenus auprès de membres sains de la famille témoin. Cette approche a démontré que : (i) de nombreuses mutations liées à la MHS entraînent une augmentation du repos [Ca2+] et un déplacement vers la gauche de la courbe dose-réponse à la dépolarisation induite par KCl ou à l’activation pharmacologique de RyR1 avec le 4-chloro-m-crésol10,11,12,13; (ii) les mutations liées au CCD entraînent une diminution du pic [Ca2+]libéré par l’activation pharmacologique du RyR1 et une diminution de la taille si le Ca2+ intracellulaire stocke12,13,14,15; (iii) certaines variantes n’ont pas d’impact sur l’homéostasie Ca2+13. Les avantages de cette approche expérimentale sont: la protéine RyR1 n’est pas surexprimée et des niveaux physiologiques sont présents, les cellules peuvent être immortalisées (à la fois les cellules musculaires et les lymphocytes B) fournissant des lignées cellulaires contenant des mutations. Certains inconvénients sont liés au fait que les patients peuvent être porteurs de mutations dans plus d’un gène codant pour des protéines impliquées dans l’homéostasie du calcium et / ou le couplage de contraction d’excitation (ECC), ce qui peut compliquer les conclusions expérimentales. Par exemple, deux variantes de JP-45 ont été identifiées dans la population MHS et témoin et leur présence a eu un impact sur la sensibilité du récepteur de la dihydropyridine (DHPR) à l’activation16. Les patients doivent être disponibles, le matériel biologique doit être fraîchement collecté et les permis éthiques doivent être obtenus auprès des conseils éthiques locaux.

Protocol

Les protocoles décrits ci-dessous sont conformes aux directives éthiques de l’Ethikkommission Nordwest- und Zentralschweiz EKNZ. 1. Préparation des lignées cellulaires de lymphocytes B immortalisées d’Epstein Barr11 Après consentement éclairé, prélever 30 mL de sang total dans des tubes stériles traités à l’EDTA dans la bande porteuse d’une mutation RYR1 et chez des membres sains de la famille sans mutation.REMARQUE: Gardez toutes les s…

Representative Results

[Ca2+]i mesures dans des populations de lymphocytes B immortalisés par le VEBLes lymphocytes B primaires expriment l’isoforme RyR1 qui fonctionne comme un canal de libération de Ca2+ au cours des processus de signalisation stimulés par le récepteur de l’antigène des cellules B17. L’immortalisation des lymphocytes B avec EBV, une procédure couramment utilisée par l…

Discussion

Les protocoles décrits dans cet article ont été utilisés avec succès par plusieurs laboratoires pour étudier l’impact des mutations RYR1 sur l’homéostasie du calcium. Les étapes critiques des approches décrites dans le présent document portent sur la stérilité, les compétences et les techniques de culture cellulaire et la disponibilité du matériel biologique. En principe, l’utilisation des lymphocytes B immortalisés par l’EBV est plus simple et permet de générer des lignées cellulaires contenan…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les travaux décrits dans ce manuscrit ont été soutenus par des subventions du Fonds national suisse (FNS) et de la Fondation suisse du muscle.

Materials

4-chloro-m-cresol Fluka 24940
Blood collection tubes Sarstedt 172202
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich A7906
caffeine Merk 102584
Cascade 125+ CCD camera Photometrics
Cascade 128+ CCD Photometrics
Creatine Sigma-Aldrich C-3630
DMEM ThermoFisher Scientific 11965092
DMSO Sigma 41639
EGTA Fluka 3778
Epidermal Growth Factor (EGF) Sigma-Aldrich E9644
Ficoll Paque Cytiva 17144002
Foetal calf serum ThermoFisher Scientific 26140079
Fura-2/AM Invitrogen Life Sciences F1201
Glutamax Thermo Fisher Scientific 35050061
HEPES ThermoFisher Scientific 15630049
Horse serum Thermo Fisher Scientific 16050122
Insulin ThermoFisher Scientific A11382II
Ionomycin Sigma I0634
KCl Sigma-Aldrich P9333
Laminin ThermoFisher Scientific 23017015
Lanthanum Fluka 61490
Microperfusion system ALA-Scientific DAD VM 12 valve manifold
Origin Software OriginLab Corp Software
Pennicillin/Streptomycin Gibco Life Sciences 15140-122
Perfusion chamber POC-R Pecon 000000-1116-079
poly-L-lysine Sigma-Aldrich P8920
RPMI ThermoFisher Scientific 21875091
Spectrofluorimeter Perkin Elmer LS50
Thapsigargin Calbiochem 586005
Tissue culture dishes Falcon 353046
Tissue culture flask Falcon 353107
Tissue culture inserts Falcon 353090
Trypsin/EDTA solution ThermoFisher Scientific 25300054
Visiview Visitron Systems GmbH Software
Zeiss Axiovert S100 TV microscope Carl Zeiss AG
Zeiss glass coverslips Carl Zeiss AG 0727-016

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Citar este artigo
Treves, S., Girard, T., Zorzato, F. Functional Characterization of Endogenously Expressed Human RYR1 Variants. J. Vis. Exp. (172), e62196, doi:10.3791/62196 (2021).

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