Summary

Bestemmelse af total lipid- og lipidklasser i marineprøver

Published: December 11, 2021
doi:

Summary

Denne protokol er til bestemmelse af lipider i havvand og biologiske prøver. Lipider i filtrater ekstraheres med chloroform eller blandinger af chloroform og methanol i tilfælde af faste stoffer. Lipid klasser måles ved stang tynd-lag kromatografi med flamme ionisering afsløring og deres sum giver det samlede lipid indhold.

Abstract

Lipider består i vid udstrækning af kulstof og brint og giver derfor en større specifik energi end andre organiske makromolekyler i havet. At være kulstof- og brintrige er de også hydrofobiske og kan fungere som opløsningsmiddel og absorptionsbærer for organiske forurenende stoffer og kan således være drivkræfter for forurenende bioakkumulering i marine økosystemer. Deres hydrofobiske natur letter deres isolering fra havvand eller biologiske prøver: marine lipidanalyse begynder med prøveudtagning og derefter udvinding i ikke-polære organiske opløsningsmidler, hvilket giver en bekvem metode til deres adskillelse fra andre stoffer i en akvatisk matrix.

Hvis der er udtaget prøver af havvand, omfatter det første trin normalt adskillelse i operationelt definerede “opløste” og “partikelfraktioner” ved filtrering. Prøver indsamles og lipider isoleres fra prøvematrixen typisk med kloroform for virkelig opløst stof og kolloider og med blandinger af chloroform og methanol til faste stoffer og biologiske prøver. Sådanne ekstrakter kan indeholde flere klasser fra biogene og menneskeskabte kilder. På dette tidspunkt, samlede lipider og lipid klasser kan bestemmes. Total lipid kan måles ved at opsummere individuelt bestemte lipid klasser, som sædvanligvis er blevet kromatisk adskilt. Tyndt lag kromatografi (TLC) med flammeionisering detektion (FID) bruges regelmæssigt til kvantitativ analyse af lipider fra marine prøver. TLC-FID giver synoptisk lipid klasse information og, ved opsummering klasser, en total lipid måling.

Lipid klasse information er især nyttig, når de kombineres med målinger af individuelle komponenter, f.eks fedtsyrer og / eller steroler, efter deres frigivelse fra lipid ekstrakter. Den brede vifte af lipidstrukturer og -funktioner betyder, at de anvendes bredt i økologisk og biogeokemisk forskning, der vurderer økosystemets sundhed og graden af indflydelse fra menneskeskabte virkninger. De er blevet anvendt til at måle stoffer af kosten værdi for havfauna (f.eks. aquafeeds og/eller byttedyr) og som en indikator for vandkvaliteten (f.eks. kulbrinter).

Introduction

De metoder, der er beskrevet her, vedrører stoffer, der defineres operationelt som marine lipider. Denne definition er baseret på deres evne til væskevæskeudvinding i ikke-polære organiske opløsningsmidler, og den giver en bekvem metode til deres adskillelse fra andre stoffer i en akvatisk matrix. Deres hydrofobiske natur letter deres isolation fra havvand eller biologiske prøver samt deres berigelse og fjernelse af salte og proteiner.

Målingen af lipidindhold og dets sammensætning i marine organismer har været af stor interesse for fødevarenetøkologi, akvakultur ernæring og fødevarevidenskab i årtier. Lipider er universelle komponenter i levende organismer, der fungerer som væsentlige molekyler i cellemembraner, som vigtige kilder til biotilgængelig energi, der giver varmeisolering og opdrift og tjener som signalmolekyler. Selv om procedurerne for lipidbestemmelse på andre områder er blevet beskrevet godt, kræver deres anvendelse sammen med marineprøver almindeligvis modifikationer for at tilpasse sig feltforholdene samt til prøvetype1.

For havvandsprøver kræver det første trin normalt adskillelse i de operationelt definerede “opløste” og »partikelfraktioner«, normalt ved filtrering (protokoltrin 1). Partikelfraktionen er det, der bevares af filteret, og størrelsen af porerne er vigtig for at definere cut-off2. Ofte når vi prøver partikler, vil vi gerne relatere lipidkoncentrationer til de samlede massekoncentrationer, i hvilket tilfælde der skal udtages en separat, mindre prøve (f.eks. 10 mL) til dette formål (protokoltrin 1, bemærk). For at få en nøjagtig massebestemmelse er det vigtigt at tilføje ammoniumformat (35 g/L) i slutningen af filtreringen.

Havvandsfiltratet fra den større prøve skal udgøre mellem 250 mL og 1 L afhængigt af prøvetypen og udsættes for væskevæskeudvinding i en separatortragt (protokoltrin 2). Lipiders hydrofobiske karakter betyder, at de kan adskilles fra andre forbindelser ved ekstraktion i et ikkepolar opløsningsmiddel som chloroform. Et tolagssystem er skabt, hvor lipider partition i det organiske lag, mens vandopløselige komponenter forbliver i det vandige lag.

Partikelprøver på et filter eller biologiske prøver ekstraheres med en modificeret Folch et al. ekstraktion3, der også involverer chloroform (protokoltrin 3). Igen skabes et organisk / vandigt system, hvor lipider opdeles i den organiske fase, mens vandopløselige molekyler forbliver i den vandige fase, og proteiner udfældes. Faktisk bruger de fleste laboratorier for faste stoffer en vis variation af Folch et al. extraction3-proceduren, der involverer chloroform og methanol. For filtre er det første skridt at homogenisere i 2 mL kloroform og 1 mL methanol.

Under udvindingen skal det sikres, at lipider beskyttes mod kemisk eller enzymatisk modifikation ved at opbevare prøver og opløsningsmidler på is for at reducere esterbinding hydrolyse eller kulstof-carbon dobbeltbindingsinoxidation. Væv og celle lipider er ganske godt beskyttet af naturlige antioxidanter og ved opdeling4; Efter homogeniseringen af prøver kombineres celleindholdet dog, hvilket gør lipider mere tilbøjelige til at ændre sig, kemisk eller enzymatisk. Nogle lipider, såsom de fleste steroler, er meget stabile, mens andre, såsom dem, der indeholder flerumættede fedtsyrer, er mere modtagelige for kemisk oxidation. Andre, såsom steroler med konjugerede dobbeltbindinger, er tilbøjelige til oxidation katalyseret af lys5. Efter ekstraktioner er lipider meget mere modtagelige for kemisk oxidation, og prøver bør opbevares under en inert gas som nitrogen. En blid strøm af kvælstof vil også blive brugt til at koncentrere ekstrakter.

Efter koncentration ville lipider normalt blive kvantificeret i løs vægt, da de er en vigtig komponent i marine økosystemer, der giver en høj koncentration af energi, mere end det dobbelte af kJ / g af kulhydrater og proteiner. Uvægerligt vil de næste blive kvantificeret som individuelle komponenter: den omfattende analyse af lipider indebærer generelt adskillelse i enklere kategorier i henhold til deres kemiske karakter. Således indebærer en fuld analyse måling af samlede lipider, lipidklasser og individuelle forbindelser.

Total lipid kan bestemmes ved at tage summen af individuelt målte lipid klasser adskilt af kromatografi6. En marine lipid ekstrakt kan indeholde mere end et dusin klasser fra biogene og menneskeskabte kilder. Den brede vifte af lipid strukturer betyder meget information kan opnås ved at bestemme individuelle gruppering af strukturer. Lipid klasser individuelt, eller i visse grupper, er blevet brugt til at signalere tilstedeværelsen af visse typer af organismer, samt deres fysiologiske status og aktivitet2. De er også blevet anvendt som en indikator for oprindelsen af organisk materiale, herunder opløst organisk materiale (DOM) samt hydrofobiske forurenende stoffer.

Triacylglycerols, fosfolipider og steroler er blandt de mere vigtige biogene lipidklasser. De to første er biokemisk beslægtede, da de har en glycerol rygrad, hvortil to eller tre fedtsyrer er esterificeret (figur 1). Triacylglyceroler er sammen med voksestere meget vigtige opbevaringsstoffer, mens andre fedtsyreholdige lipidklasser såsom diacylglyceroler, frie fedtsyrer og monoacylglyceroler generelt er mindre bestanddele. Frie fedtsyrer er til stede ved lavere koncentrationer i levende organismer, da de umættede kan være giftige7. Steroler (både i deres frie og esterificerede former) og fede alkoholer er også inkluderet blandt de mindre polære lipider, mens glycolipider og fosfolipider er polære lipider. Polar lipider har en hydrofil gruppe, som giver mulighed for dannelse af lipid bilayers findes i cellemembraner. Gratis steroler er også membran strukturelle komponenter, og når de tages i forhold til triacylglycerols de giver en tilstand eller ernæringsmæssige indeks (TAG : ST), som har været meget udbredt8. Når de tages i forhold til fosfolipider (ST : PL), kan de bruges til at indikere plantens følsomhed over for salt: højere værdier opretholder strukturel integritet og reducerer membranens permeabilitet9. Det inverse forhold (PL : ST) er blevet undersøgt i toskallet væv under temperaturtilpasning10.

Marine lipid klasser kan adskilles af tyndt lag kromatografi (TLC) på silica gel belagt stænger (Protokol trin 4) og derefter detekteres og kvantificeres ved flamme ionisering detektion (FID) i en automatisk FID scanner. TLC/FID er rutinemæssigt blevet brugt til marine prøver, da det hurtigt leverer synoptiske lipidklassedata fra små prøver og ved at tage summen af alle klasser, en værdi for total lipider. TLC/FID har været underkastet en kvalitetssikringsvurdering og blev fundet at opfylde de standarder, der kræves for konsekvent ekstern kalibrering, lave emner og præcis replikeringsanalyse11. Variationskoefficienter (CV) eller relative standardafvigelser er omkring 10 %, og FID-scannerens samlede lipiddata er normalt omkring 90 % af dem, der opnås ved gravimetriske og andre metoder2. Gravimetry giver højere samlede lipider sandsynligvis, fordi FID scanner måler kun ikke-flygtige forbindelser, og også som et resultat af mulig optagelse af ikke-lipid materiale i gravimetriske målinger.

Oplysningerne fra lipid klasse analyse er især nyttige, når de kombineres med bestemmelser af fedtsyrer som enkeltpersoner, eller steroler, eller de to i kombination. Det første skridt i retning af disse analyser omfatter frigivelse af alle komponent fedtsyrer sammen med steroler i lipid ekstrakter (protokol trin 5). Den brede vifte af lipidstrukturer og -funktioner betyder, at de har set bred anvendelse i økologiske og biogeokemiske undersøgelser, der vurderer økosystemets sundhed og i hvilket omfang de er blevet påvirket af menneskeskabte og terrestriske input. De er blevet anvendt til at måle biosyntese af stoffer af kosten værdi til marine fauna samt til at angive kvaliteten af vandprøver. Måling af lipider i sedimentkerneprøver hjælper med at vise sedimenternes følsomhed over for ændringer i menneskers arealanvendelse nær land-hav-margenen.

Det primære værktøj til at identificere og kvantificere individuelle lipidforbindelser har traditionelt været gaskromatografi (GC) med FID. Før analyse dog, disse forbindelser er gjort mere flygtige ved derivatization. Fedtsyrer frigives i nærværelse af en sur katalysator (H2SO4) fra acyl lipidklasser (Figur 1). I organisk kemi er acylgruppen (R-C=O) normalt afledt af en carboxylic syre (R-COOH). De er derefter re-esterified til fedtsyrer methyl estere (FAME), som giver bedre adskillelser på GC kolonner (Protokol trin 5).

Protocol

BEMÆRK: For at rengøre glasvarer, instrumenter og filtre til lipidanalyser skal de vaskes 3 gange med methanol efterfulgt af 3 vaskes med kloroform eller opvarme dem til 450 °C i mindst 8 timer. 1. Filtreringsprocedure for opløst havvand og partikellipider BEMÆRK: Den særlige del af interessen er operationelt defineret ved filtreringsproceduren. I dette tilfælde er porestørrelsen 1,2 μm. Sæt filtreringsmanifolden op uden filter, …

Representative Results

Som den hurtigst voksende fødevareproduktionssektor udvikler akvakulturen sig med hensyn til teknologiske innovationer og tilpasninger for at opfylde skiftende krav. En af disse er at mindske afhængigheden af fiskemel og fiskeolie, der stammer fra vilde kilder, og som leverer foderingredienser til mange akvakulturarter. Terrestriske planteolier undersøges som bæredygtige og økonomiske erstatninger for fiskeolie i aquafeeds, og leveren er et målvæv til analyse, fordi det er det primære sted for lipid metabolisme<s…

Discussion

Den hastighed, hvormed TLC-FID-systemet giver synoptisk lipidklasseinformation fra små prøver, gør TLC-FID til et muligt værktøj til screening af havprøver, før der iværksættes mere involverede analyseprocedurer. Sådanne analyser kræver normalt frigivelse af komponentforbindelser fra lipidekstrakter og derivatisering for at øge volatiliteten i tilfælde af gaskromatografi. TLC-FID kombineret med GC-FID har vist sig at være en stærk kombination for ekstrakter af fisk og skaldyr og andre fødevarer<sup class=…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev finansieret af Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) tilskud nummer 105379 til C.C. Parrish. Memorial University’s Core Research Equipment &Instrument Training (CREAIT) Network hjalp med at finansiere denne publikation.

Materials

15 ml vials VWR 66009-560
1-hexadecanol Sigma 258741-1G
1-Monopalmitoyl-rac-glycerol Sigma M1640-1g
2 ml vials VWR 46610-722
25 mm glass fibre filters Fisher 09 874 32A
2ml pipet bulbs VWR 82024-554
47 mm glass fibre filters Fisher 09 874 32
5 3/4" pipets Fisher 1367820A
9" pipets Fisher 1367820C
Acetone VWR CAAX0116-1
Agilent GC-FID 6890 Agilent
Calcium Chloride ANHS 500gm VWR CACX0160-1
Caps for 2 ml vials VWR 46610-712
chloroform VWR CACX1054-1
Cholesteryl palmitate Sigma C6072-1G
Chromarod S5 Shell USA 3252
Dichloromethane VWR CADX0831-1
DL-a-phosphatidylcholine, dipalmotoyl Sigma P5911-1g
Ethyl Ether, ACS grade anhydr 4L VWR CAEX0190-4
Glyceryl tripalmitate Sigma T5888-100MG
Hamilton Syringe 702SNR 25µl Sigma 58381
Helium Air Liquide A0492781
Hexane VWR CAHX0296-1
Hydrogen regulator VWR 55850-484
Iatroscan MK6 Shell USA
Kimwipes Fisher 066662
Medical Air Air Liquide A0464563
Medium nitrile gloves Fisher 191301597C
Nitrile gloves L VWR CA82013-782
Nitrogen Air Liquide A0464775
Nitrogen Regulator VWR 55850-474
Nonadecane Sigma 74158-1G
Palmitic acid Sigma P0500-10G
Repeating dispenser Sigma 20943
Sodium Bicarbonate 1kg VWR CA97062-460
Sodium Sulfate Anhy ACS 500gr VWR CA71008-804
Sulfuric acid VWR CASX1244-5
Teflon tape Fisher 14610120
tissue master 125 115V w/7mm homogenator OMNI International TM125-115
TLC development tank Shell USA 3201
UHP hydrogen Air Liquide A0492788
VWR solvent repippetter VWR 82017-766
VWR timer Flashing LED 2 channel VWR 89140-196
Zebron ZB-Wax GC column Phenomenex 7HM-G013-11

Referências

  1. Couturier, L. I. E., et al. State of art and best practices for fatty acid analysis in aquatic sciences. ICES Journal of Marine Science. , (2020).
  2. Parrish, C. C. Lipids in Marine Ecosystems. ISRN Oceanography. , 604045 (2013).
  3. Folch, J., Lees, M., Stanley, G. H. S. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Journal of Biological Chemistry. 226, 497-509 (1957).
  4. Vaz, F. M., Pras-Raves, M., Bootsma, A. H., van Kampen, A. H. C. Principles and practice of lipidomics. Journal of Inherited Metabolic Disease. , (2014).
  5. Wolf, C., Quinn, P. J. Lipidomics: practical aspects and applications. Progress in Lipid Research. 47, 15-36 (2008).
  6. Parrish, C. C., Arts, M. T., ainman, B. C. Determination of total lipid, lipid classes, and fatty acids in aquatic samples. Lipids in Freshwater Ecosystems. , 4-20 (1999).
  7. Jüttner, F. Liberation of 5,8,11,14,17-eicosapentaenoic acid and other polyunsaturated fatty acids from lipids as a grazer defense reaction in epilithic diatom biofilms. Journal of Phycology. 37, 744-755 (2001).
  8. Carreón-Palau, L., Parrish, C. C., Pérez-España, H., Aguiñiga-Garcia, S. Elemental ratios and lipid classes in a coral reef food web under river influence. Progress in Oceanography. 164, 1-11 (2018).
  9. Maciel, E., et al. Bioprospecting of marine macrophytes using MS-based lipidomics as a new approach. Marine Drugs. 14, 49 (2016).
  10. Pernet, F., Tremblay, R., Comeau, L., Guderley, H. Temperature adaptation in two bivalve species from different thermal habitats: energetics and remodelling of membrane lipids. Journal of Experimental Biology. 210, 2999-3014 (2007).
  11. Bergen, B. J., Quinn, J. G., Parrish, C. C. Quality-assurance study of marine lipid-class determination using Chromarod/Iatroscan thin-layer chromatography-flame ionization detector. Environmental Toxicology and Chemistry. 19, 2189-2197 (2000).
  12. Foroutani, B. M., Parrish, C. C., Wells, J., Taylor, R. G., Rise, M. L. Minimizing marine ingredients in diets of farmed Atlantic salmon (Salmo salar): effects on liver and head kidney lipid class, fatty acid and elemental composition. Fish Physiology & Biochemistry. 46, 2331-2353 (2020).
  13. Parrish, C. C., Deibel, D., Thompson, R. J. Effect of sinking spring phytoplankton blooms on lipid content and composition in suprabenthic and benthic invertebrates in a cold ocean coastal environment. Marine Ecology Progress Series. 391, 33-51 (2009).
  14. Sinanoglou, V. J., et al. On the combined application of Iatroscan TLC-FID and GC-FID to identify total, neutral, and polar lipids and their fatty acids extracted from foods. ISRN Chromatography. , 59024 (2013).
  15. Peters-Didier, J., Sewell, M. A. Maternal investment and nutrient utilization during early larval development of the sea cucumber Australostichopus mollis. Marine Biology. 164, 178 (2017).
  16. Triesch, N., et al. Concerted measurements of lipids in seawater and on submicron aerosol particles at the Cape Verde Islands: biogenic sources, selective transfer and high enrichments. Atmospheric Chemistry and Physics. 21, 4267-4283 (2021).
  17. Parrish, C. C., Bodennec, G., Gentien, P. Determination of glycoglycerolipids by Chromarod thin-layer chromatography with Iatroscan flame ionization detection. Journal of Chromatography A. 741, 91-97 (1996).
  18. Mejri, S., et al. Bonefish (Albula vulpes) oocyte lipid class and fatty acid composition related to their development. Environmental Biology of Fishes. 102, 221-232 (2019).
  19. Sewell, M. A. Utilization of lipids during early development of the sea urchin Evechinus chloroticus. Marine Ecology Progress Series. 304, 133-142 (2005).
  20. Parrish, C. C., Bodennec, G., Gentien, P. Separation of polyunsaturated and saturated lipids from marine phytoplankton on silica gel coated Chromarods. Journal of Chromatography A. 607, 97-104 (1992).
  21. Stevens, C. J., Deibel, D., Parrish, C. C. Incorporation of bacterial fatty acids and changes in a wax ester-based omnivory index during a long-term incubation experiment with Calanus glacialis Jaschnov. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 303, 135-156 (2004).
  22. Goutx, M., et al. Short term summer to autumn variability of dissolved lipid classes in the Ligurian Sea (NW Mediterranean). Biogeosciences. 6, 1229-1246 (2009).
  23. Conlan, J. A., Rocker, M. M., Francis, D. S. A. comparison of two common sample preparation techniques for lipid and fatty acid analysis in three different coral morphotypes reveals quantitative and qualitative differences. PeerJ. 5, 3645 (2017).

Play Video

Citar este artigo
Parrish, C. C., Wells, J. S. Determination of Total Lipid and Lipid Classes in Marine Samples. J. Vis. Exp. (178), e62315, doi:10.3791/62315 (2021).

View Video