Summary

Vurdering av agrokjemisk risiko for parret honningbi queens

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen ble utviklet for å forbedre forståelsen av hvordan agrokjemikalier påvirker honningbi (Apis mellifera) reproduksjon ved å etablere metoder for å utsette honningbidronninger og deres arbeiderpassere for agrokjemikalier i kontrollerte, laboratorieinnstillinger og nøye overvåke deres relevante svar.

Abstract

Nåværende risikovurderingsstrategier for honningbier er avhengige av laboratorietester utført på voksne eller umodne arbeiderbier, men disse metodene kan ikke nøyaktig fange effekten av agrokjemisk eksponering på honningbidronninger. Som eneste produsent av befruktede egg inne i en honningbikoloni er dronningen uten tvil det viktigste enkeltmedlemmet av en fungerende kolonienhet. Derfor bør forståelse av hvordan agrokjemikalier påvirker dronningens helse og produktivitet betraktes som et kritisk aspekt av risikovurdering av plantevernmidler. Her presenteres en tilpasset metode for å eksponere honningbidronninger og arbeiderdronningsvakter for agrokjemiske stressfaktorer administrert gjennom et arbeiderdiett, etterfulgt av sporing av eggproduksjon i laboratoriet og vurdering av første instar eclosjon ved hjelp av et spesialisert bur, referert til som et Queen Monitoring Cage. For å illustrere metodens tiltenkte bruk, beskrives resultater av et eksperiment der arbeiderdronningsvakter ble matet diett som inneholder subletaldoser av imidakloprid og effekter på dronninger.

Introduction

På grunn av økt global etterspørsel etter landbruksprodukter krever moderne oppdrettspraksis ofte bruk av agrokjemikalier for å kontrollere mange som er kjent for å redusere eller skade avlinger1. Samtidig er produsentene av mange frukt-, grønnsaks- og nøtteavlinger avhengige av pollineringstjenestene som tilbys av kommersielle honningbikolonier for å sikre rikelig avlingsutbytte2. Disse praksisene kan resultere i pollinatorer, inkludert honningbier (Apis mellifera), blir utsatt for skadelige nivåer av plantevernmidler rester3. Samtidig krever den utbredte tilstedeværelsen av parasittiske Varroa destruktormittinfeksjoner i honningbikolonier ofte biavlere for å behandle sine elveblest med miticides, som også kan utøve negative effekter på koloniens helse og levetid4,5,6. For å redusere og redusere skadelige effekter av agrokjemiske produkter, er det nødvendig å evaluere deres sikkerhet for honningbier før implementeringen, slik at anbefalinger for bruk kan gjøres for å beskytte gunstige insekter.

For tiden er Environmental Protection Agency (EPA) avhengig av en lagdelt risikovurderingsstrategi for eksponering for honningbie plantevernmidler, som innebærer laboratorietester på voksne bier og noen ganger honningbi larver7. Hvis laboratorietester på lavere nivåer ikke lindrer bekymringer for toksisitet, kan det anbefales høyere nivåfelt- og semifelttesting. Mens disse laboratorietestene gir verdifull innsikt i de potensielle effektene av agrokjemikalier på arbeidstakerens levetid, er de ikke nødvendigvis prediktive for deres effekter på dronninger, som varierer betydelig fra arbeidere biologisk8 ogatferdsmessig 9. Videre er det mange potensielle effekter av agrokjemikalier på insekter utover dødelighet, noe som kan ha betydelige konsekvenser for sosiale insekter som er avhengige av koordinert oppførsel for å fungere som en kolonienhet10,11.

Selv om dødelighet er den mest vurderte effekten av agrokjemiske plantevernmidler12, kan disse produktene ha et bredt spekter av effekter på både mål og ikke-mål leddyr, inkludert endret oppførsel13,14,15,16, avstøtende eller tiltrekning17,18,19, endringer i fôringsmønstre20,21,22 , og økt eller redusert fecundity20,21,22,23,24,25. For sosiale insekter kan disse effektene systemisk forstyrre koloniinteraksjoner og funksjoner11. Av disse funksjonene kan reproduksjon, som er sterkt avhengig av en enkelt eggleggingsdronning støttet av resten av kolonienheten9, være spesielt sårbar for perturbasjon på grunn av eksponering for plantevernmidler.

Studier utført på umodne dronninger har vist at utviklingseksponering for miticides kan påvirke voksen dronningadferd, fysiologi, overlevelse26,27. På samme måte har studier ved hjelp av full eller redusert størrelse kolonier vist at agrokjemikalier kan påvirke voksne honningbidronninger ved å redusere parringssuksess28, redusere oviposisjon29, og redusere levedyktigheten til eggene som produseres25,30,31. Disse fenomenene har tidligere vært vanskelige å observere uten bruk av hele kolonier, hovedsakelig på grunn av mangel på tilgjengelige laboratoriemetoder. Imidlertid har en metode for å studere dronningoviposisjon under tett kontrollerte laboratorieforhold ved hjelp av Queen Monitoring Cages (QMC)32 nylig blitt tilpasset for å undersøke effekten av agrokjemikalier på dronning fecundity33. Her er disse teknikkene beskrevet i detalj sammen med flere metoder for å måle og spore arbeider diettforbruk i QMCer.

Disse metodene er mer fordelaktige enn eksperimenter som krever kolonier i full størrelse fordi de tillater administrasjon av presise doser av agrokjemikalier til et sterkt redusert antall arbeidere i forhold til titusenvis som vanligvis er til stede inne i en koloni34, som deretter klargjør dronningen. Denne eksponeringsteknikken gjenspeiler brukteksponeringen som dronninger ville oppleve i virkelige scenarier fordi dronninger i en koloni ikke spiser seg selv og stoler på arbeidere for å gi dem diett9. På samme måte forlater dronninger vanligvis ikke bikube bortsett fra under kolonireproduksjon (swarming) for parring av flyreiser35. Parret honningbi dronninger kan kjøpes fra kommersielle dronningoppdrettere og sendes over natten. Vanligvis selger dronningoppdrettere dronninger direkte etter å ha bekreftet at de har begynt å legge egg, noe som er tatt som en indikasjon på vellykket parring. Hvis det er behov for mer presis informasjon om dronningalder eller slektskap, kan forskere konsultere dronningoppdretteren før de legger inn en bestilling.

QMCs tillater presis observasjon og kvantifisering av honningbi dronning oviposisjon og egg klekking priser32,33, noe som gir verdifulle data relatert til effekten av agrokjemisk eksponering på dronning fecundity. De representative resultatene som presenteres her beskriver et eksperiment som kvantifiserer oviposisjon, diettforbruk og embryo levedyktighet i QMCer under kronisk eksponering for feltrelevante konsentrasjoner av det systemiske nevrotoksiske middel neonicotinoid plantevernmiddelet imidakloprid36. Når det er påført, translokaliserer imidakloprid til plantevev37, og rester har blitt oppdaget pollen og nektar av mange bee pollinerte planter38,39,40. Eksponering for imidakloprid kan ha et bredt spekter av skadelige effekter på honningbier, inkludert nedsatt foraging ytelse16, nedsatt immunfunksjon41, og reduserte grad av koloniutvidelse og overlevelse42,43. Her ble imidakloprid valgt for bruk som teststoff fordi feltforsøk har vist at det kan påvirke honningbidronning oviposisjon29

Protocol

1. QMC-montering Monter QMCer fra deler (Figur 1A) med en enkelt eggleggingsplate (ELP) satt inn som vist i figur 1B. Ikke legg til materrør før etter at arbeiderne er lagt til buret. Dekk midlertidig de 4 materhullene med laboratoriekvalitetstape. Sett inn dronningen unntatt og fôringskammerdøren over fôringskammeret for å hindre dronningen i å komme inn i fôringskammeret og kontakte det behandlede dietten. Se Fine et al.<sup class="…

Representative Results

Produksjonen av egg ble overvåket i QMCer samlet og vedlikeholdt som beskrevet ovenfor med en gang daglige observasjoner av eggproduksjon og 15 merder per behandlingsgruppe. Nyparerte dronninger av primært karniolanbestanden ble kjøpt og sendt over natten fra en dronningoppdretter, og honningbiarbeidere ble hentet fra 3 kolonier opprettholdt i henhold til standard kommersielle metoder ved The Bee Research Facility ved University of Illinois Urbana-Champaign. Her, 4 kostholdsbehandlingsgrupper ble brukt: 1) 50 ppb (g/g…

Discussion

Fecundity av kvinnelige ensomme insekter samt dronninger i eusosiale insektkolonier kan påvirkes av abiotiske stressfaktorer som agrokjemikalier25,28,29,30,33. I honningbier kan effekten av agrokjemikalier på dronninger være indirekte, da de kan oppstå via endringer i deres omsorg og fôring av arbeiderbier. Våre representative resultater, som ligner de s…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Takk til Dr. Amy Cash-Ahmed, Nathanael J. Beach og Alison L. Sankey for deres hjelp til å utføre dette arbeidet. Omtale av varenavn eller kommersielle produkter i denne publikasjonen er utelukkende med det formål å gi spesifikk informasjon og innebærer ikke anbefaling eller godkjenning av det amerikanske landbruksdepartementet. USDA er en leverandør og arbeidsgiver med like muligheter. Denne forskningen ble støttet av et stipend fra Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 til Gene E. Robinson og Huimin Zhao, USDA-prosjektet 2030-21000-001-00-D, og Phenotypic Plasticity Research Experience for Community College Students ved University of Illinois ved Urbana Champaign.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500

Referências

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).

Play Video

Citar este artigo
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).

View Video