Summary

Vurdering agrokemisk risiko for parrede honningbi dronninger

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

Denne protokol blev udviklet for at øge forståelsen af, hvordan agrokemikalier påvirker honningbi (Apis mellifera) reproduktion ved at etablere metoder til at udsætte honningbi dronninger og deres arbejdstager viceværter til agrokemikalier i en kontrolleret, laboratorium indstilling og omhyggeligt overvågning af deres relevante svar.

Abstract

De nuværende risikovurderingsstrategier for honningbier er stærkt afhængige af laboratorieundersøgelser udført på voksne eller umodne arbejderbier, men disse metoder kan ikke nøjagtigt registrere virkningerne af agrokemisk eksponering på honningbidronninger. Som den eneste producent af befrugtede æg inde i en honningbikoloni er dronningen uden tvivl det vigtigste enkeltmedlem af en fungerende kolonienhed. Derfor bør det betragtes som et kritisk aspekt af vurderingen af pesticidrisikovurderingen at forstå, hvordan agrokemikalier påvirker dronningens sundhed og produktivitet. Her præsenteres en tilpasset metode til at udsætte honningbidronninger og arbejderedronningspersonale for agrokemiske stressorer, der administreres gennem en arbejdstagerdiæt, efterfulgt af sporing af ægproduktion i laboratoriet og vurdering af første instar eclosion ved hjælp af et specialiseret bur, kaldet et queen monitoring cage. For at illustrere metodens tilsigtede anvendelse beskrives resultaterne af et eksperiment, hvor arbejderedronning ledsagere blev fodret med kost, der indeholder fremlejede doser af imidacloprid og virkninger på dronninger.

Introduction

På grund af den øgede globale efterspørgsel efter landbrugsprodukter kræver moderne landbrugsmetoder ofte brug af agrokemikalier til at kontrollere mange skadedyr, der vides at reducere eller skade høstudbyttet1. Samtidig er producenterne af mange frugt-, grøntsags- og nøddeafgrøder afhængige af bestøvningstjenesterne fra kommercielle honningbikolonier for at sikre rigeligt høstudbytte2. Denne praksis kan resultere i, at bestøvere, herunder honningbier (Apis mellifera), udsættes for skadelige niveauer af pesticidrester3. Samtidig kræver den udbredte tilstedeværelse af parasitære Varroa-destructormideangreb i honningbikolonier ofte biavlere til at behandle deres bistader med miticider, hvilket også kan have negative virkninger på koloniens sundhed og levetid4,5,6. For at reducere og afbøde skadelige virkninger af agrokemiske produkter er det nødvendigt at evaluere deres sikkerhed fuldt ud for honningbier forud for deres gennemførelse, så der kan fremsættes anbefalinger til deres anvendelse for at beskytte gavnlige insekter.

I øjeblikket er Environmental Protection Agency (EPA) afhængig af en differentieret risikovurderingsstrategi for eksponering af honningbi pesticid, som involverer laboratorieundersøgelser på voksne bier og undertiden honningbilarver7. Hvis laboratorieundersøgelser på lavere niveauer ikke mindsker bekymringerne om toksicitet, kan det anbefales at teste højere niveau og semifelttest. Mens disse laboratorieundersøgelser giver værdifuld indsigt i de potentielle virkninger af agrokemikalier på arbejdernes levetid, er de ikke nødvendigvis forudsigende for deres virkninger på dronninger, som adskiller sig væsentligt fra arbejdere biologisk8 og adfærdsmæssigt9. Desuden er der mange potentielle virkninger af agrokemikalier på insekter ud over dødelighed, hvilket kan have betydelige konsekvenser for sociale insekter, der er afhængige af koordineret adfærd for at fungere som en kolonienhed10,11.

Selvom dødelighed er den mest almindeligt betragtede effekt af agrokemiske pesticider12, kan disse produkter have en bred vifte af virkninger på både mål- og ikke-mål leddyr, herunder ændret adfærd13,14,15,16, repellency eller attractancy17,18,19, ændringer i fodringsmønstre20,21,22 og forhøjet eller nedsat fecundity20,21,22,23,24,25. For sociale insekter kan disse virkninger systemisk forstyrre koloniinteraktioner og funktioner11. Af disse funktioner kan reproduktion, som er stærkt afhængig af en enkelt æglægningsdronning støttet af resten af kolonienheden9, være særligt sårbar over for forstyrrelser på grund af pesticideksponering.

Undersøgelser udført på umodne dronninger har vist, at udviklingsmæssig eksponering for miticider kan påvirke voksen dronning adfærd, fysiologi, overlevelse26,27. Tilsvarende har undersøgelser, der anvender kolonier i fuld eller reduceret størrelse , vist , at agrokemikalier kan påvirke voksne honningbidronninger ved at reducere parringssucces28, faldende oviposition29og reducere levedygtigheden af de producerede æg25,30,31. Disse fænomener har tidligere været vanskelige at observere uden brug af hele kolonier, hovedsagelig på grund af mangel på tilgængelige laboratoriemetoder. Men en metode til at studere dronning oviposition under stramt kontrollerede laboratorieforhold ved hjælp af Queen Monitoring Cages (QMC)32 er for nylig blevet tilpasset til at undersøge virkningerne af agrokemikalier på dronning fecundity33. Her er disse teknikker beskrevet i detaljer sammen med yderligere metoder til at måle og spore arbejdstager kost forbrug i QPC’er.

Disse metoder er mere fordelagtige end eksperimenter, der kræver kolonier i fuld størrelse, fordi de giver mulighed for administration af præcise doser af agrokemikalier til et stærkt reduceret antal arbejdere i forhold til de titusinder, der typisk er til stede inde i en koloni34, som derefter giver dronningen. Denne eksponeringsteknik afspejler den brugte eksponering, som dronninger ville opleve i virkelige scenarier, fordi dronninger i en koloni ikke fodrer sig selv og stoler på, at arbejderne giver dem kost9. Tilsvarende forlader dronninger generelt ikke bikuben undtagen under koloni reproduktion (swarming) til parring flyvninger35. Parret honningbi dronninger kan købes fra kommercielle dronning opdrættere og sendes natten over. Typisk sælger dronningeopdrættere dronninger direkte efter at have bekræftet, at de er begyndt at lægge æg, hvilket er taget som en indikation af vellykket parring. Hvis der er behov for mere præcise oplysninger om dronningealderen eller relatedness, kan forskerne rådføre sig med dronningeopdrætteren, før de afgiver en ordre.

QPC’er giver mulighed for præcis observation og kvantificering af honningbi dronning oviposition og æg udklækning satser32,33, giver værdifulde data relateret til virkningerne af agrokemisk eksponering på dronning fecundity. De repræsentative resultater, der præsenteres her, beskriver et eksperiment, der kvantificerer oviposition, kostforbrug og embryons levedygtighed i QPC’er under kronisk eksponering for feltrelevante koncentrationer af det systemiske neurotoksiske neonicotinoide pesticid imidacloprid36. Når det er anvendt, translokerer imidacloprid til plantevæv37, og rester er blevet påvist pollen og nektar af mange bibestøvede planter38,39,40. Eksponering for imidacloprid kan have en bred vifte af skadelige virkninger på honningbier , herunder nedsat fourageringsevne16, nedsat immunfunktion41og nedsat koloniudvidelse ogoverlevelseshastighed 42,43. Her blev imidacloprid udvalgt til brug som teststof, fordi feltforsøg har vist, at det kan påvirke honningbidronningen29

Protocol

1. QMC-samling QPC’er fra dele (Figur 1A) med en enkelt æglægningsplade (ELP) indsat som vist i figur 1B. Tilsættes ikke feederrør, før arbejderne er blevet tilsat til buret. Dæk midlertidigt de 4 feeder huller med laboratoriekvalitetstape. Indsæt dronningens ekskluder og fodringskammerdøren over fodringskammeret for at forhindre dronningen i at komme ind i fodringskammeret og kontakte den behandlede kost. Se Fine et al.<sup class="xr…

Representative Results

Produktionen af æg blev overvåget i QMCs samlet og vedligeholdt som beskrevet ovenfor med en gang daglige observationer af ægproduktion og 15 bure pr. behandlingsgruppe. Nyligt parret dronninger af primært Carniolan lager blev købt og afsendt natten fra en dronning opdrætter, og honningbi arbejdstagere blev opnået fra 3 kolonier vedligeholdes i henhold til standard kommercielle metoder på The Bee Research Facility på University of Illinois Urbana-Champaign. Her blev der anvendt 4 diætbehandlingsgrupper: 1) 50 p…

Discussion

Fecundity af kvindelige ensomme insekter samt dronninger i eusociale insektkolonier kan påvirkes af abiotiske stressorer som agrokemikalier25,28,29,30,33. Hos honningbier kan virkningerne af agrokemikalier på dronninger være indirekte, da de kan forekomme gennem ændringer i deres pleje og fodring af arbejderbier. Vores repræsentative resultater, som svare…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Tak til Dr. Amy Cash-Ahmed, Nathanael J. Beach og Alison L. Sankey for deres hjælp til at udføre dette arbejde. Omtale af handelsnavne eller kommercielle produkter i denne publikation er udelukkende med det formål at give specifikke oplysninger og indebærer ikke anbefaling eller godkendelse af det amerikanske landbrugsministerium. USDA er en lige muligheder udbyder og arbejdsgiver. Denne forskning blev støttet af et tilskud fra Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 til Gene E. Robinson og Huimin Zhao, USDA projekt 2030-21000-001-00-D, og Phenotypic Plasticity Research Experience for Community College Studerende ved University of Illinois i Urbana Champaign.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500

Referências

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).
check_url/pt/62316?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).

View Video