Summary

Ett magnetiskt pärlbaserat mygg-DNA-extraktionsprotokoll för nästa generations sekvensering

Published: April 15, 2021
doi:

Summary

Beskrivs här är ett DNA-extraktionsprotokoll med magnetiska pärlor för att producera högkvalitativa DNA-extraktioner från myggor. Dessa extraktioner är lämpliga för en nedströms nästa generations sekvenseringsmetod.

Abstract

Ett nyligen publicerat DNA-extraktionsprotokoll med magnetiska pärlor och ett automatiserat DNA-extraktionsinstrument föreslog att det är möjligt att extrahera högkvalitativt och mängd-DNA från en välbevarad individuell mygga som är tillräcklig för nedströms hel genomsekvensering. Att förlita sig på ett dyrt automatiserat DNA-extraktionsinstrument kan dock vara oöverkomligt för många laboratorier. Här ger studien ett budgetvänligt magnetiskt pärlbaserat DNA-extraktionsprotokoll, som är lämpligt för låg till medelhög genomströmning. Protokollet som beskrivs här testades framgångsrikt med hjälp av enskilda Aedes aegypti myggprover. De minskade kostnaderna i samband med DNA-extraktion av hög kvalitet kommer att öka tillämpningen av hög genomströmningssekvensering på resursbegränsade laboratorier och studier.

Introduction

Den senaste utvecklingen av ett förbättratDNA-extraktionsprotokoll 1 har möjlig tillåtit många nedströmsstudier som involverar helagenomsekvensering 2,3,4,5,6. Detta magnetiska pärlbaserade DNA-extraktionsprotokoll ger tillförlitlig DNA-avkastning från enskilda myggprover, vilket i sin tur minskar kostnaden och tiden i samband med att förvärva ett tillräckligt antal prover från fältsamlingar.

Den senaste tidens framsteg inom befolknings- och landskapsgenomik korreleras direkt med minskande kostnader för hela genomsekvensering. Även om det tidigareDNA-extraktionsprotokollet 1 ökar effektiviteten i samband med sekvensering med hög genomströmning, kan mindre laboratorier /studier utan medel välja bort att använda dessa nya kraftfulla landskaps- och befolkningsgenomikverktyg på grund av kostnader för att implementera protokollet (t.ex. kostnader för specialiserade instrument).

Här presenteras ett modifierat DNA-extraktionsprotokoll som använder ett liknande magnetiskt pärlextraktionssteg som Neiman et al.1 för att erhålla DNA med hög renhet men inte förlitar sig på högkostnadsinstrument för vävnadslys och DNA-extraktion. Detta protokoll är lämpligt för experiment som > 10 ng högkvalitativt DNA.

Protocol

1. Allmän provtagning och preparat före DNA-extraktion Hydrera provet i 100 μL PCR-vatten i 1 timme (eller över natten) vid 4 °C om provet har lagrats i >70% alkohol för att mjuka upp vävnaden. 2. Avbrott i urvalet Ställ in en inkubator eller ett skakvärmeblock vid 56 °C. Gör proteinas K (PK) buffert/enzymblandning. 2 μL Proteinas K (100 mg/ml) och 98 μL Proteinase K-buffert (totalt 100 μL) krävs för varje enskild myggextraktion. För att fö…

Representative Results

Det genomsnittliga DNA-utbytet per enskilt mygghuvud/bröstkorgsvävnad var 4,121 ng/μL (N = 92, standardavvikelse 3,513) mätt med hjälp av en fluorometer när den eluterades med 100 μL elueringsbuffert. Detta är tillräckligt för de 10-30 ng genomiska DNA-indatakrav som krävs för hela genombibliotekskonstruktion1,7. Mängden DNA kan variera mellan 0,3-29,7 ng/μL beroende på myggkroppens storlek och bevarandeförhållanden. En del av den höga variation…

Discussion

Protokollet som beskrivs här kan anpassas för andra insektsarter. Den ursprungliga versionen av protokollet som infördes i Nieman et al.1 har testats på flera arter, inklusive Aedes aegypti, Ae. busckii, Ae. taeniorhynchus, Anopheles arabiensis, An. coluzzii, An. coustani, An. darlingi, An. funestus, An. gambiae, An. quadriannulatus, An. rufipes, Culex pipiens, Cx. quinquefasciatus, Cx. theileri, Drosophila suzukii, Chrysomela aeneicollis Tuta absoluta och Keiferia lycopersicella…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi bekräftar finansieringsstöd från Pacific Southwest Regional Center of Excellence for Vector-Borne Diseases finansierat av U.S. Centers for Disease Control and Prevention (Cooperative Agreement 1U01CK000516), CDC beviljar NU50CK000420-04-04, USDA National Institute of Food and Agriculture (Hatch Project 1025565), UF/IFAS Florida Medical Entomology Laboratory fellowship to Tse-Yu Chen, NSF CAMTech IUCRC Phase II grant (AWD05009_MOD0030) och Florida Department of Health (Contract CODQJ). Resultaten och slutsatserna i denna artikel är författarens och representerar inte nödvändigtvis synpunkterna från U.S. Fish and Wildlife Service.

Materials

AE Buffer Qiagen 19077 Elution buffer
AL Buffer Qiagen 19075 Lysis buffer
AW1 Buffer Qiagen 19081 Washing buffer 1
AW2 Buffer Qiagen 19072 Washing buffer 2
MagAttract Suspension G Qiagen 1026901 magnetic bead
Magnetic bead separator Epigentek Q10002-1
Nanodrop ThermoFisher ND-2000 microvolume spectrophotometer
PK Buffer ThermoFisher 4489111 Proteinase K buffer
Proteinase K ThermoFisher A25561
Qubit Invitrogen Q33238 fluorometer

Referências

  1. Nieman, C. C., Yamasaki, Y., Collier, T. C., Lee, Y. A DNA extraction protocol for improved DNA yield from individual mosquitoes. F1000Research. 4, 1314 (2015).
  2. Lee, Y., et al. Genome-wide divergence among invasive populations of Aedes aegypti in California. BMC Genomics. 20 (1), 204 (2019).
  3. Schmidt, H., et al. Abundance of conserved CRISPR-Cas9 target sites within the highly polymorphic genomes of Anopheles and Aedes mosquitoes. Nature Communications. 11 (1), 1425 (2020).
  4. Schmidt, H., et al. Transcontinental dispersal of Anopheles gambiae occurred from West African origin via serial founder events. Communications Biology. 2, 473 (2019).
  5. Norris, L. C., et al. Adaptive introgression in an African malaria mosquito coincident with the increased usage of insecticide-treated bed nets. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (3), 815-820 (2015).
  6. Main, B. J., et al. The genetic basis of host preference and resting behavior in the major african malaria vector, Anopheles arabiensis. Plos Genetics. 12 (9), 1006303 (2016).
  7. Yamasaki, Y. K., et al. Improved tools for genomic DNA library construction of small insects. F1000Research. 5, 211 (2016).
  8. Tabuloc, C. A., et al. Sequencing of Tuta absoluta genome to develop SNP genotyping assays for species identification. Journal of Pest Science. 92, 1397-1407 (2019).
  9. Campos, M., et al. Complete mitogenome sequence of Anopheles coustani from São Tomé island. Mitochondrial DNA. Part B, Resources. 5 (3), 3376-3378 (2020).
  10. Cornel, A. J., et al. Complete mitogenome sequences of Aedes (Howardina) busckii and Aedes (Ochlerotatus) taeniorhynchus from the Caribbean Island of Saba. Mitochondrial DNA. Part B, Resources. 5 (2), 1163-1164 (2020).
  11. Lucena-Aguilar, G., et al. DNA source selection for downstream applications based on dna quality indicators analysis. Biopreservation and Biobanking. 14 (4), 264-270 (2016).
check_url/pt/62354?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Chen, T., Vorsino, A. E., Kosinski, K. J., Romero-Weaver, A. L., Buckner, E. A., Chiu, J. C., Lee, Y. A Magnetic-Bead-Based Mosquito DNA Extraction Protocol for Next-Generation Sequencing. J. Vis. Exp. (170), e62354, doi:10.3791/62354 (2021).

View Video