Summary

Modellering Slagtilfælde i mus: Focal Cortical Læsioner af photothrombosis

Published: May 06, 2021
doi:

Summary

Beskrevet her er den fotothrombotiske slagtilfælde model, hvor et slagtilfælde er produceret gennem intakt kraniet ved at fremkalde permanent mikrovaskulær okklusion ved hjælp af laser belysning efter administration af en lysfølsom farvestof.

Abstract

Slagtilfælde er en førende dødsårsag og erhvervet voksne handicap i de udviklede lande. På trods af omfattende undersøgelse for nye terapeutiske strategier, der fortsat begrænsede terapeutiske muligheder for slagtilfælde patienter. Derfor er der behov for mere forskning for patofysiologiske veje såsom betændelse efter slagtilfælde, angiogenese, neuronal plasticitet og regenerering. I betragtning af in vitro-modellernes manglende evne til at reproducere hjernens kompleksitet er eksperimentelle slagtilfældemodeller afgørende for analysen og den efterfølgende evaluering af nye lægemiddelmål for disse mekanismer. Desuden er der et presserende behov for detaljerede standardiserede modeller for alle procedurer for at overvinde den såkaldte replikationskrise. Som en indsats inden for ImmunoStroke forskningskonsortium beskrives en standardiseret fotothrombotisk musemodel ved hjælp af en intraperitoneal injektion af Rose Bengal og belysningen af det intakte kranium med en 561 nm laser. Denne model tillader udførelsen af slagtilfælde hos mus med tildeling til enhver kortikal region i hjernen uden invasiv kirurgi; således gør det muligt at studere slagtilfælde i forskellige områder af hjernen. I denne video demonstreres de kirurgiske metoder til slagtilfældeinduktion i den fotothrombotiske model sammen med histologiske analyser.

Introduction

Iskæmisk slagtilfælde er fortsat en hovedårsag til død og erhvervet voksen handicap i de udviklede lande i det 21. århundrede tegner sig for ca. 2,7 millioner dødsfald i 2017 på verdensplan1. Selv med den enorme indsats fra det videnskabelige samfund er der kun få behandlinger tilgængelige. Med så høje udelukkelseskriterier er disse allerede begrænsede muligheder desuden ikke tilgængelige for mange patienter, hvilket resulterer i et presserende behov for nye behandlinger for at forbedre funktionel genopretning efter slagtilfælde.

I betragtning af in vitro-modellernes manglende evne til at kopiere hjernens komplekse interaktioner er dyremodeller afgørende for præklinisk slagtilfældeforskning. Mus er den hyppigst anvendte dyremodel inden for slagtilfældeforskning. De fleste af disse musemodeller har til formål at fremkalde infarkt ved at blokere blodgennemstrømningen i den midterste cerebral arterie (MCA), da størstedelen af humane slagtilfældelæsioner er placeret i MCA-territoriet2. Selv om disse modeller bedre opsummere menneskelige slagtilfælde læsioner, de involverer kramper operationer med høj infarkt volumen variation.

Siden Rosenblum og El-Sabban’s forslag om den fotothrombotiske model i 19773, og senere anvendelsen af denne model på rotter Watson et al.4, er det blevet meget udbredt i iskæmisk slagtilfælde forskning5,6. Den fotothrombotiske slagtilfælde model fremkalder en lokal og defineret kortikale infarkt som følge af fotoaktivering af en lysfølsom farvestof tidligere injiceres i blodgennemstrømningen. Dette forårsager lokal trombose af fartøjerne i de områder, der udsættes for lys. Kort, ved udsættelse for lys fra det injicerede lysfølsomme farvestof, fremkaldes lokaliseret oxidativ skade af endotelcellemembranen, hvilket fører til blodpladesammenlægning og trombrandannelse efterfulgt af lokal forstyrrelse af cerebral blodgennemstrømning7.

Den største fordel ved denne teknik ligger i dens enkelhed i udførelsen og muligheden for at lede læsionen til den ønskede region. I modsætning til andre eksperimentelle slagtilfælde modeller, mindre kirurgisk ekspertise er nødvendig for at udføre den fotothrombotic slagtilfælde model som læsionen er induceret gennem belysning af intakt kraniet. Desuden kan de velafgrænsede grænser ( figur 2A og figur 5B) og fleksibiliteten til at fremkalde læsionen til en bestemt hjerneregion lette undersøgelsen af cellulære reaktioner inden for det iskæmiske eller intakte kortikale område8. Af disse grunde er denne tilgang egnet til undersøgelse af cellulære og molekylære mekanismer af kortikal plasticitet.

I løbet af de sidste par årtier er den voksende bekymring over den manglende reproducerbarhed mellem forskergrupper blevet opfundet den såkaldte replikationskrise9. Efter koordineringen af den første prækliniske randomiserede kontrollerede multicenterforsøgsundersøgelse i 201510, et foreslået værktøj til forbedring af præklinisk forskning11,12,13, blev det bekræftet , at en årsag til manglende reproducerbarhed mellem prækliniske undersøgelser fra uafhængige laboratorier var manglen på tilstrækkelig standardisering af eksperimentelle slagtilfældemodeller og resultatparametre14. Derfor, da ImmunoStroke-konsortiet blev etableret (https://immunostroke.de/), var et samarbejde, der har til formål at forstå hjerneimmune interaktioner, der ligger til grund for de mekanistiske principper for slagtilfældegendannelse, standardisering af alle de eksperimentelle slagtilfældemodeller blandt hver forskningsgruppe afgørende.

Beskrevet her er den standardiserede procedure for induktion af den fotothrombotiske model, som anvendes i ovennævnte forskningskonsortium. Kort sagt gennemgik et dyr bedøvelsesmidler, fik en Rose Bengal-injektion (10 μL/g) intraperitonally, og det intakte kranium, 3 mm tilbage fra bregma, blev straks oplyst af en 561 nm laser i 20 min (Figur 1). Derudover rapporteres en relateret histologisk og adfærdsmæssig metode til at analysere slagtilfælderesultatet i denne model. Alle metoder er baseret på standard driftsprocedurer udviklet og anvendt i laboratoriet.

Protocol

De forsøg, der blev rapporteret i denne video, blev udført i overensstemmelse med de nationale retningslinjer for brug af forsøgsdyr, og protokollerne blev godkendt af de tyske regeringsudvalg (Regierung von Oberbayern, München, Tyskland). De mus, der blev anvendt i denne undersøgelse, var hanmus fra C57Bl/6J, 10-12 uger gamle, og afsendt af Charles River Germany. Dyrene blev anbragt under kontrollerede temperaturer (22 °C ± 2 °C) med en 12 timers lysmør cyklusperiode og adgang til pelleteret mad og vand ad …

Representative Results

Modellen beskrevet her er en fotothrombotic slagtilfælde model af Rose Bengal injektion og intakt kraniet belysning i 20 min, på en konstant 561 nm bølgelængde og 25 mW udgangseffekt på fiberen. Selvom den komplette fotothrombotiske operation varer 30 minutter, holdes dyret under lav anæstesi, og hjerneskaden er moderat. Ca. 10 minutter efter overførsel til deres bure var alle dyrene vågne, frit bevægede sig i buret og interagerede med littermates. Infarkt volumetry blev udført ved h…

Discussion

Den præsenterede protokol beskriver den eksperimentelle slagtilfælde model af fotothrombose ved at belyse den intakte kraniet med en 561 nm laser, med en tidligere intraperitoneal injektion af Rose Bengal. Indtil for nylig har brugen af denne model været lav, men er støt stigende.

Dødelighed under slagtilfælde induktion i denne model er fraværende. Den samlede dødelighed på under 5% opstår under drift på grund af anæstesiologiske komplikationer eller ofre efter at have opfyldt udel…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker alle vores samarbejdspartnere i Immunostroke Consortia (FOR 2879, Fra immunceller til slagtilfælde opsving) for forslag og diskussioner. Dette arbejde blev finansieret af Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation) under Tysklands excellencestrategi inden for rammerne af München-klyngen for system neurologi (EXC 2145 SyNergy – ID 390857198) og under tilskud LI-2534/6-1, LI-2534/7-1 og LL-112/1-1.

Materials

561 nm wavelenght laser Solna Cobolt HS-03
Acetic Acid Sigma Life Science 695092
Anesthesia system for isoflurane Drager
ApopTag Peroxidase In Situ Apoptosis Detection Kit Millipore S7100
Bepanthen pomade Bayer 1578681
C57Bl/6J mice Charles River 000664
Collimeter Thorlabs F240APC-A
Cotons NOBA Verbondmitel Danz 974116
Cresyl violet Sigma Life Science C5042-10G
Cryostat Thermo Scientific CryoStarNX70
Ethanol 70% CLN Chemikalien Laborbedorf 521005
Ethanol 96% CLN Chemikalien Laborbedorf 522078
Ethanol 99% CLN Chemikalien Laborbedorf ETO-5000-99-1
Filter paper Macherey-Nagel 432018
Fine Scissors FST 15000-00
Forceps FST 11616-15
Heating blanket FHC DC Temperature Controller  40-90-8D
Isoflurane Abbot B506
Isopentane Fluka 59070
Ketamine Inresa Arzneimittel GmbH
Laser Speckle Perimed PeriCam PSI HR
Mayor Scissors FST 1410-15
Phosphate Buffered Saline PH: 7.4 Apotheke Innestadt Uni Munchen P32799
Protective glasses Laser 2000 NIR-ZS2-38
Rose Bengal Sigma Aldrich 198250-5G
Roti-Histokit mounting medium Roth 6638.1
Saline solution Braun 131321
Stereomikroskop Zeiss Stemi DV4
Stereotactic frame Stoelting 51500U
Superfrost Plus Slides Thermo Scientific J1800AMNZ
Xylacine Albrecht

Referências

  1. GBD 2016 Causes of Death Collaborators. Global, regional, and national age-sex specific mortality for 264 causes of death, 1980-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet. 390 (10100), 1151-1210 (2017).
  2. Carmichael, S. T. Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose. NeuroRx: The Journal of the American Society for Experimental Neuro Therapeutics. 2 (3), 396-409 (2005).
  3. Rosenblum, W. I., El-Sabban, F. Platelet aggregation in the cerebral microcirculation: effect of aspirin and other agents. Circulation Research. 40 (3), 320-328 (1977).
  4. Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Annals of Neurology. 17 (5), 497-504 (1985).
  5. Bergeron, M. Inducing photochemical cortical lesions in rat brain. Current Protocols in Neuroscience. , (2003).
  6. Lee, J. K., et al. Photochemically induced cerebral ischemia in a mouse model. Surgical Neurology. 67 (6), 620-625 (2007).
  7. Dietrich, W. D., Watson, B. D., Busto, R., Ginsberg, M. D., Bethea, J. R. Photochemically induced cerebral infarction. I. Early microvascular alterations. Acta Neuropathologica. 72 (4), 315-325 (1987).
  8. Labat-gest, V., Tomasi, S. Photothrombotic ischemia: a minimally invasive and reproducible photochemical cortical lesion model for mouse stroke studies. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (76), e50370 (2013).
  9. McNutt, M. Journals unite for reproducibility. Science. 346 (6210), 679 (2014).
  10. Llovera, G., et al. Results of a preclinical randomized controlled multicenter trial (pRCT): Anti-CD49d treatment for acute brain ischemia. Science Translational Medicine. 7 (299), (2015).
  11. Dirnagl, U., et al. A concerted appeal for international cooperation in preclinical stroke research. Stroke. 44 (6), 1754-1760 (2013).
  12. Bath, P. M., Macleod, M. R., Green, A. R. Emulating multicentre clinical stroke trials: a new paradigm for studying novel interventions in experimental models of stroke. International Journal of Stroke: Official Journal of the INternational Stroke Society. 4 (6), 471-479 (2009).
  13. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. Journal of Pharmacology & Pharmacotherapeutics. 1 (2), 94-99 (2010).
  14. Llovera, G., Liesz, A. The next step in translational research: lessons learned from the first preclinical randomized controlled trial. Journal of Neurochemistry. 139, 271-279 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling laser speckle contrast analysis algorithm to enhance non-invasive high resolution laser speckle functional imaging of cutaneous microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048 (2017).
  16. Swanson, G. M., Satariano, E. R., Satariano, W. A., Threatt, B. A. Racial differences in the early detection of breast cancer in metropolitan Detroit, 1978 to 1987. Cancer. 66 (6), 1297-1301 (1990).
  17. Clark, W. M., Lessov, N. S., Dixon, M. P., Eckenstein, F. Monofilament intraluminal middle cerebral artery occlusion in the mouse. Neurological Research. 19 (6), 641-648 (1997).
  18. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).
  19. Engel, O., Kolodziej, S., Dirnagl, U., Prinz, V. Modeling stroke in mice – middle cerebral artery occlusion with the filament model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (47), e2423 (2011).
  20. Tamura, A., Graham, D. I., McCulloch, J., Teasdale, G. M. Focal cerebral ischaemia in the rat: 1. Description of technique and early neuropathological consequences following middle cerebral artery occlusion. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 1 (1), 53-60 (1981).
  21. Chen, S. T., Hsu, C. Y., Hogan, E. L., Maricq, H., Balentine, J. D. A model of focal ischemic stroke in the rat: reproducible extensive cortical infarction. Stroke. 17 (4), 738-743 (1986).
  22. Tureyen, K., Vemuganti, R., Sailor, K. A., Dempsey, R. J. Infarct volume quantification in mouse focal cerebral ischemia: a comparison of triphenyltetrazolium chloride and cresyl violet staining techniques. Journal of Neuroscience Methods. 139 (2), 203-207 (2004).
  23. Llovera, G., Roth, S., Plesnila, N., Veltkamp, R., Liesz, A. Modeling stroke in mice: permanent coagulation of the distal middle cerebral artery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (89), e511729 (2014).
  24. Cramer, J. V., et al. In vivo widefield calcium imaging of the mouse cortex for analysis of network connectivity in health and brain disease. Neuroimage. 199, 570-584 (2019).
  25. Heindl, S., et al. Automated morphological analysis of microglia after stroke. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 106 (2018).
  26. Nih, L. R., Gojgini, S., Carmichael, S. T., Segura, T. Dual-function injectable angiogenic biomaterial for the repair of brain tissue following stroke. Nature Materials. 17 (7), 642-651 (2018).
  27. Rust, R., et al. Nogo-A targeted therapy promotes vascular repair and functional recovery following stroke. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (28), 14270-14279 (2019).
  28. Kitano, H., Kirsch, J. R., Hurn, P. D., Murphy, S. J. Inhalational anesthetics as neuroprotectants or chemical preconditioning agents in ischemic brain. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 27 (6), 1108-1128 (2007).
  29. Farr, T. D., Whishaw, I. Q. Quantitative and qualitative impairments in skilled reaching in the mouse (Mus musculus) after a focal motor cortex stroke. Stroke. 33 (7), 1869-1875 (2002).
  30. Kassem-Moussa, H., Graffagnino, C. Nonocclusion and spontaneous recanalization rates in acute ischemic stroke: a review of cerebral angiography studies. Archives of Neurology. 59 (12), 1870-1873 (2002).
  31. Sigler, A., Goroshkov, A., Murphy, T. H. Hardware and methodology for targeting single brain arterioles for photothrombotic stroke on an upright microscope. Journal of Neuroscience Methods. 170 (1), 35-44 (2008).
check_url/pt/62536?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Llovera, G., Pinkham, K., Liesz, A. Modeling Stroke in Mice: Focal Cortical Lesions by Photothrombosis. J. Vis. Exp. (171), e62536, doi:10.3791/62536 (2021).

View Video