Summary

फ्लोरोसेंट का तेज छोटे एक्सट्रासेलुलर वेसिकल्स इन विट्रो और स्पाइनल कॉर्ड में लेबल किया गया

Published: May 23, 2021
doi:

Summary

हम पीकेएच रंगों के साथ मैक्रोफेज-व्युत्पन्न छोटे एक्सट्रासेलुलर वेसिकल्स को लेबल करने के लिए एक प्रोटोकॉल का वर्णन करते हैं और इंट्राथेकल डिलीवरी के बाद विट्रो और रीढ़ की हड्डी में उनके तेज का निरीक्षण करते हैं।

Abstract

छोटे एक्सट्रासेलुलर वेसिकल्स (एसईवी) 50-150 एनएम वेसिकल्स हैं जो सभी कोशिकाओं द्वारा स्रावित होते हैं और शारीरिक तरल पदार्थों में मौजूद होते हैं। SEVs ऐसे आरएनए, प्रोटीन, और लिपिड जैसे जैव अणुओं को दाता से स्वीकारकर्ता कोशिकाओं में स्थानांतरित करते हैं, जिससे वे कोशिकाओं के बीच प्रमुख संकेत मध्यस्थ बन जाते हैं। केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) में, एसईवी न्यूरोइम्यून इंटरैक्शन सहित इंटरसेलुलर सिग्नलिंग में मध्यस्थता कर सकते हैं। सेव कार्यों को इन विट्रो और वीवो दोनों में प्राप्तकर्ता कोशिकाओं में लेबल वाले एसईवी के तेज को ट्रैक करके अध्ययन किया जा सकताहै । यह पेपर पीकेएच झिल्ली डाई का उपयोग करके रॉ 264.7 मैक्रोफेज कोशिकाओं के वातानुकूलित मीडिया से एसईवी की लेबलिंग का वर्णन करता है। यह न्यूरो-2ए कोशिकाओं और प्राथमिक एस्ट्रोसाइट्स इन विट्रोद्वारा कई समय बिंदुओं पर लेबल किए गए एसईवी की विभिन्न सांद्रता के तेज को दर्शाता है। यह भी दिखाया गया है कि माउस स्पाइनल कॉर्ड न्यूरॉन्स, एस्ट्रोसाइट्स और कॉन्फोकल माइक्रोस्कोपी द्वारा कल्पना किए गए माइक्रोग्लिया में इंट्राथेकेली रूप से वितरित SEVs का तेज है। प्रतिनिधि परिणाम विभिन्न कोशिकाओं द्वारा एसईवी के तेज में समय पर निर्भर भिन्नता प्रदर्शित करते हैं, जो रीढ़ की हड्डी में सफल एसईवी वितरण की पुष्टि करने में मदद कर सकता है।

Introduction

छोटे एक्सट्रासेलुलर वेसिकल्स (एसईवी) नैनोसाइज्ड, झिल्ली-व्युत्पन्न वेसिकल्स हैं, जिनका आकार 50-150 एनएम है। वे बहु-वेसिकुलर निकायों (एमवीबी) से उत्पन्न होते हैं और प्लाज्मा झिल्ली के साथ एमवीबी के संलयन पर कोशिकाओं से जारी किए जाते हैं। SEVs में मीन्राना, एमएचआरए, प्रोटीन और बायोएक्टिव लिपिड होते हैं, और इन अणुओं को कोशिका-से-कोशिका संचार के रूप में कोशिकाओं के बीच स्थानांतरित किया जाता है। एसईवी को विभिन्न प्रकार के एंडोसाइटिक रास्तों द्वारा प्राप्तकर्ता कोशिकाओं द्वारा आंतरिक किया जा सकता है, और प्राप्तकर्ता कोशिकाओं द्वारा एसईवी का यह कैप्चर ईवीएस और लक्ष्य कोशिकाओं दोनों पर सतह के अणुओं की मान्यता द्वारा मध्यस्थता की जाती है1।

SEVs अपनी क्षमता के कारण ब्याज प्राप्त किया है स्वीकारकर्ता कोशिकाओं में आणविक और phenotypic परिवर्तन ट्रिगर, एक चिकित्सकीय एजेंट के रूप में उनकी उपयोगिता, और कार्गो अणुओं या औषधीय एजेंटों के लिए वाहक के रूप में उनकी क्षमता । उनके छोटे आकार के कारण, एसईवी की इमेजिंग और ट्रैकिंग चुनौतीपूर्ण हो सकती है, खासकर वीवो अध्ययन और नैदानिक सेटिंग्स में। इसलिए, विट्रो और वीवो2में उनके बायोडिविशनल और ट्रैकिंग की सहायता करने के लिए एसईवी को लेबल और छवि बनाने के लिए कई तरीके विकसित किए गए हैं।

एसईवी बायोडिव्रिब्यूशन और टारगेट सेल इंटरैक्शन का अध्ययन करने की सबसे आम तकनीक में उन्हें फ्लोरोसेंट डाई अणुओं 3 ,4,5 ,6,7के साथ लेबल करना शामिल है । ईवीएस को शुरू में कोशिका झिल्ली रंगों के साथ लेबल किया गया था जो आमतौर पर छवि कोशिकाओं के लिए उपयोग किए जाते थे। ये फ्लोरोसेंट रंग आम तौर पर एसईवी पर लिपिड बाइलेयर या ब्याज के प्रोटीन को दाग देते हैं। साइटोसोल में शामिल होने पर कई लिपोफिलिक रंग एक मजबूत फ्लोरोसेंट सिग्नल प्रदर्शित करते हैं, जिसमें डीआईआर (1,1′-डायक्टाडेसिल-3,3,3′,3′-टेट्रामेथाइलिंटोट्रिकरबोसायनी आयोडाइड), डीआईएल (1, 1′-डायक्टाडाइल-3, 3, 3′, 3′-टेट्रामेथिल इंडोकार्बोसिनाइन परक्लोरेट), और डीआईडी (1, 1′-डायक्टाडेसिल-3, 3, 3′, 3′-टेट्रामेथिल इंडोकार्बोसायनिन 4-क्लोरोबेनजेनेसुलफनेट नमक)8,9,10,11।

PKH67 और PKH26 जैसे अन्य लिपोफिलिक रंगों में एक अत्यधिक फ्लोरोसेंट ध्रुवीय प्रमुख समूह और एक लंबी एलिफेटिक हाइड्रोकार्बन पूंछ होती है जो आसानी से किसी भी लिपिड संरचना में इंटरकैलेट करती है और दीर्घकालिक डाई प्रतिधारण और स्थिर फ्लोरेसेंस12की ओर ले जाती है। PKH रंग ईवीएस को भी लेबल कर सकते हैं, जो वीवो13में ईवी गुणों के अध्ययन की अनुमति देता है। फ्लोरोसेंस माइक्रोस्कोपी और फ्लो साइटोमेट्री का उपयोग करके एक्सोसोम्स का निरीक्षण करने के लिए कई अन्य रंगों का उपयोग किया गया है, जिसमें लिपिड-लेबलिंग रंग14 और सेल-पारगम्य रंग जैसे कार्बोक्सीफ्लोरेसिन डायसेटेट सुसिनिमिडिल एस्टर (सीएफडीए-एसई)15,16 और कैल्सीन एसिटॉक्सीमिथिल (एएम) एस्टर17शामिल हैं।

सीएनएस में विभिन्न कोशिकाओं के बीच एसईवी-मध्यस्थता क्रॉसटॉक के अध्ययनों ने न्यूरोइंफ्लेमेटरी और न्यूरोडीजेनेरेटिव रोगों18के रोगजनन पर महत्वपूर्ण अंतर्दृष्टि प्रदान की है। उदाहरण के लिए, न्यूरॉन्स से SEVs बीटा-एमिलॉयड पेप्टाइड्स और फॉस्फोरिलेटेड ताऊ प्रोटीन और अल्जाइमर रोग19के रोगजनन में सहायता फैल सकता है । इसके अतिरिक्त, एरिथ्रोसाइट्स से प्राप्त ईवीएस में बड़ी मात्रा में अल्फा-सिन्यूक्लिन होते हैं और रक्त-मस्तिष्क बाधा को पार कर सकते हैं और पार्किंसंस की विकृति20में योगदान दे सकते हैं। SEVs की शारीरिक बाधाओं को पार करने की क्षमता21 और उनके जैव अणुओं को लक्षित कोशिकाओं में स्थानांतरित करने से उन्हें सीएनएस22में चिकित्सीय दवाओं को वितरित करने के लिए सुविधाजनक उपकरण बन जाते हैं ।

रीढ़ की हड्डी में असंख्य सीएनएस कोशिकाओं द्वारा सेव तेज की कल्पना करने से मशीनी अध्ययन और विभिन्न सेलुलर स्रोतों से एक्सोजेनोसली प्रशासित एसईवी के चिकित्सीय लाभों का मूल्यांकन दोनों सक्षम होंगे। यह पेपर मैक्रोफेज से प्राप्त SEVs को लेबल करने की पद्धति का वर्णन करता है और काठ की रीढ़ की हड्डी में और वीवो में न्यूरॉन्स, माइक्रोग्लिया और एस्ट्रोसाइट्स द्वारा दृश्य द्वारा एसईवी वितरण की गुणात्मक पुष्टि करने के लिए उनकी गति को छवि देता है।

Protocol

नोट: सभी प्रक्रियाओं प्रयोगशाला जानवरों की देखभाल और उपयोग के लिए NIH गाइड के अनुपालन में प्रदर्शन किया गया और ड्रेक्सेल विश्वविद्यालय कॉलेज ऑफ मेडिसिन की संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति द्वारा अनु…

Representative Results

अपकेंद्रित्र के माध्यम से रॉ 264.7 वातानुकूलित मीडिया से SEVs के अलगाव के बाद, एनटीए का उपयोग शुद्ध sEVs की एकाग्रता और आकार वितरण को निर्धारित करने के लिए किया गया था। रॉ 264.7-व्युत्पन्न एसईवी का औसत औसत औसत आकार 1…

Discussion

इस प्रोटोकॉल में, हमने पीकेएच रंगों के साथ SEVs की लेबलिंग और रीढ़ की हड्डी में उनके तेज के दृश्य को दिखाया। पीकेएच लिपोफिलिक फ्लोरोसेंट रंगों का व्यापक रूप से उपयोग कोशिकाओं को फ्लो साइटोमेट्री और फ्लो?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन को एनआईएच एनआईएनडीएस R01NS102836 और पेंसिल्वेनिया डिपार्टमेंट ऑफ हेल्थ कॉमनवेल्थ यूनिवर्सल रिसर्च एन्हांसमेंट (इलाज) से मिलेना के अजीत को दिए गए अनुदानों द्वारा समर्थित किया गया था । हम पांडुलिपि के महत्वपूर्ण पढ़ने के लिए डॉ ब्राडली नैश का शुक्रिया अदा करते हैं ।

Materials

Amicon Ultra 0.5 mL centrifugal filters MilliporeSigma Z677094
Anti-Alix Antibody Abcam ab186429 1:1000
Anti-Calnexin Antibody Abcam Ab10286 1:1000
Anti-CD81 Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-166029 1:1000
Anti-GAPDH Monoclonal Antibody (14C10) Cell Signaling Technology 2118 1:1000
Anti-Glial Fibrillary Acidic Protein Antibody Sigma-Aldrich MAB360 1:500 for IF; 1:1000 for IHC
Anti-Iba1 Antibody Wako 019-19741 1:2000
Anti-MAP2A Antibody Sigma-Aldrich MAB378 1:500
Bovine Serum Albumin (BSA) VWR 0332
Cell Strainer, 40 μm VWR 15-1040-1
Centrifuge Tubes Thermo Scientific 3118-0050 12,000 x g
Coverslip, 12-mm, #1.5 Electron Microscopy Sciences 72230-01
Coverslip, 18-mm, #1.5 Electron Microscopy Sciences 72222-01
DAPI Sigma-Aldrich D9542-1MG 1 µg/mL
DC Protein Assay Bio-Rad 500-0116
Deoxyribonuclease I (DNAse I) MilliporeSigma D4513-1VL
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (HRP) Abcam ab16284 1:10000
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L, Alexa Fluor 488 Invitrogen A-21206 1:500
Double Frosted Microscope Slides, #1 Thermo Scientific 12-552-5
DPBS without Calcium and Magnesium Corning 21-031-CV
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Corning 10-013-CV
Exosome-Depleted Fetal Bovine Serum Gibco A27208-01
Fetal Bovine Serum (FBS) Corning 35-011-CV
FluorChem M imaging system ProteinSimple
FV3000 Confocal Microscope Olympus
Goat Anti-Mouse IgG H&L (HRP) Abcam ab6789 1:10000
Goat Anti-Mouse IgG H&L, Alexa Fluor 488 Invitrogen A-11001 1:500
Goat Anti-Mouse IgG1, Alexa Fluor 594 Invitrogen A-21125
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) VWR 02-0121
HEPES Gibco 15630080
HRP Substrate Thermo Scientific 34094
Intercept blocking buffer, TBS LI-COR Biosciences 927-60001
Laemmli SDS Sample Buffer Alfa Aesar AAJ61337AC
Micro Cover Glass, #1 VWR 48404-454
Microm HM550 Thermo Scientific
NanoSight NS300 system Malvern Panalytical
NanoSight NTA 3.2 software Malvern Panalytical
Neuro-2a Cell Line ATCC CCL-131
Normal Goat Serum Vector Laboratories S-1000
O.C.T Compound Sakura Finetek 4583
Papain Worthington Biochemical Corporation NC9597281
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 19210
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122
PKH26 Sigma-Aldrich MINI26-1KT
PKH67 Sigma-Aldrich MINI67-1KT
Protease Inhibitor Cocktail Thermo Scientific 1862209
PVDF Transfer Membrane MDI SVFX8302XXXX101
RAW 267.4 Cell Line ATCC TIB-71
RIPA Buffer Sigma-Aldrich R0278
Sodium Chloride AMRESCO 0241-2.5KG
Superfrost Plus Gold Slides Thermo Scientific 15-188-48 adhesive slides
T-75 Flasks Corning 431464U
Tecnai 12 Digital Transmission Electron Microscope FEI Company
TEM Grids Electron Microscopy Sciences FSF300-cu
Tris-Glycine Protein Gel, 12% Invitrogen XP00120BOX
Tris-Glycine SDS Running Buffer Invitrogen LC26755
Tris-Glycine Transfer Buffer Invitrogen LC3675
TrypLE Express cell dissociation enzyme
Triton X-100 Acros Organics 327371000
Trypsin, 0.25% Corning 25-053-CL
Tween 20
Ultracentrifuge Tubes Beckman 344058 110,000 x g

Referências

  1. Mulcahy, L. A., Pink, R. C., Carter, D. R. F. Routes and mechanisms of extracellular vesicle uptake. Journal of Extracellular Vesicles. 3 (1), 24641 (2014).
  2. Betzer, O., et al. Advances in imaging strategies for in vivo tracking of exosomes. Wiley Interdisciplinary Reviews. Nanomedicine and Nanobiotechnology. 12 (2), 1594 (2020).
  3. Dehghani, M., Gaborski, T. R. Fluorescent labeling of extracellular vesicles. Methods in Enzymology. 645, 15-42 (2020).
  4. González, M. I., et al. Covalently labeled fluorescent exosomes for in vitro and in vivo applications. Biomedicines. 9 (1), 81 (2021).
  5. Chuo, S. T. -. Y., Chien, J. C. -. Y., Lai, C. P. -. K. Imaging extracellular vesicles: current and emerging methods. Journal of Biomedical Science. 25 (1), 91 (2018).
  6. vander Vlist, E. J., Nolte-‘tHoen, E. N. M., Stoorvogel, W., Arkesteijn, G. J. A., Wauben, M. H. M. Fluorescent labeling of nano-sized vesicles released by cells and subsequent quantitative and qualitative analysis by high-resolution flow cytometry. Nature Protocols. 7 (7), 1311-1326 (2012).
  7. Hoshino, A., et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).
  8. Heinrich, L., et al. Confocal laser scanning microscopy using dialkylcarbocyanine dyes for cell tracing in hard and soft biomaterials. Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials. 81 (1), 153-161 (2007).
  9. Haney, M. J., et al. Exosomes as drug delivery vehicles for Parkinson’s disease therapy. Journal of Controlled Release. 207, 18-30 (2015).
  10. Grange, C., et al. Biodistribution of mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles in a model of acute kidney injury monitored by optical imaging. International Journal of Molecular Medicine. 33 (5), 1055-1063 (2014).
  11. Wiklander, O. P., et al. Extracellular vesicle in vivo biodistribution is determined by cell source, route of administration and targeting. Journal of Extracellular Vesicles. 4, 26316 (2015).
  12. Lai, C. P., et al. Visualization and tracking of tumour extracellular vesicle delivery and RNA translation using multiplexed reporters. Nature Communications. 6 (1), 7029 (2015).
  13. Deddens, J. C., et al. Circulating extracellular vesicles contain miRNAs and are released as early biomarkers for cardiac injury. Journal of Cardiovascular Translational Research. 9 (4), 291-301 (2016).
  14. Montecalvo, A., et al. Mechanism of transfer of functional microRNAs between mouse dendritic cells via exosomes. Blood. 119 (3), 756-766 (2012).
  15. Escrevente, C., Keller, S., Altevogt, P., Costa, J. Interaction and uptake of exosomes by ovarian cancer cells. BMC Cancer. 11, 108 (2011).
  16. Cho, E., et al. Comparison of exosomes and ferritin protein nanocages for the delivery of membrane protein therapeutics. Journal of Controlled Release. 279, 326-335 (2018).
  17. Mantel, P. Y., et al. Malaria-infected erythrocyte-derived microvesicles mediate cellular communication within the parasite population and with the host immune system. Cell Host & Microbe. 13 (5), 521-534 (2013).
  18. Porro, C., Trotta, T., Panaro, M. A. Microvesicles in the brain: Biomarker, messenger or mediator. Journal of Neuroimmunology. 288, 70-78 (2015).
  19. De Toro, J., Herschlik, L., Waldner, C., Mongini, C. Emerging roles of exosomes in normal and pathological conditions: new insights for diagnosis and therapeutic applications. Frontiers in Immunology. 6, 203 (2015).
  20. Matsumoto, J., et al. Transmission of alpha-synuclein-containing erythrocyte-derived extracellular vesicles across the blood-brain barrier via adsorptive mediated transcytosis: another mechanism for initiation and progression of Parkinson’s disease. Acta Neuropathologica Communications. 5 (1), 71 (2017).
  21. Matsumoto, J., Stewart, T., Banks, W. A., Zhang, J. The transport mechanism of extracellular vesicles at the blood-brain barrier. Current Pharmaceutical Design. 23 (40), 6206-6214 (2017).
  22. Shaimardanova, A., et al. Extracellular vesicles in the diagnosis and treatment of central nervous system diseases. Neural Regeneration Research. 15 (4), 586-596 (2020).
  23. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  24. Hoen, E. N. M. N. -. t., et al. Quantitative and qualitative flow cytometric analysis of nanosized cell-derived membrane vesicles. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 8 (5), 712-720 (2012).
  25. Gangadaran, P., Hong, C. M., Ahn, B. -. C. An update on in vivo imaging of extracellular vesicles as drug delivery vehicles. Frontiers in Pharmacology. 9, 169 (2018).
  26. Teare, G. F., Horan, P. K., Slezak, S. E., Smith, C., Hay, J. B. Long-term tracking of lymphocytes in vivo: the migration of PKH-labeled lymphocytes. Cellular Immunology. 134 (1), 157-170 (1991).
  27. Kuffler, D. P. Long-term survival and sprouting in culture by motoneurons isolated from the spinal cord of adult frogs. Journal of Comparative Neurology. 302 (4), 729-738 (1990).
  28. Takov, K., Yellon, D. M., Davidson, S. M. Confounding factors in vesicle uptake studies using fluorescent lipophilic membrane dyes. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1388731 (2017).
  29. Pužar Dominkuš, P., et al. PKH26 labeling of extracellular vesicles: Characterization and cellular internalization of contaminating PKH26 nanoparticles. Biochimica et Biophysica Acta. Biomembranes. 1860 (6), 1350-1361 (2018).
  30. Dehghani, M., Gulvin, S. M., Flax, J., Gaborski, T. R. Systematic evaluation of PKH labelling on extracellular vesicle size by nanoparticle tracking analysis. Scientific Reports. 10 (1), 9533 (2020).
  31. Shimomura, T., et al. New lipophilic fluorescent dyes for labeling extracellular vesicles: characterization and monitoring of cellular uptake. Bioconjugate Chemistry. 32 (4), 680-684 (2021).
  32. Yuan, D., et al. Macrophage exosomes as natural nanocarriers for protein delivery to inflamed brain. Biomaterials. 142, 1-12 (2017).
  33. Polanco, J. C., Li, C., Durisic, N., Sullivan, R., Götz, J. Exosomes taken up by neurons hijack the endosomal pathway to spread to interconnected neurons. Acta Neuropathologica Communications. 6 (1), 10 (2018).
  34. Jurgielewicz, B. J., Yao, Y., Stice, S. L. Kinetics and specificity of HEK293T extracellular vesicle uptake using imaging flow cytometry. Nanoscale Research Letters. 15 (1), 170 (2020).
check_url/pt/62537?article_type=t

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Citar este artigo
Gupta, R., Luo, X., Lin, Z., Tian, Y., Ajit, S. K. Uptake of Fluorescent Labeled Small Extracellular Vesicles In Vitro and in Spinal Cord. J. Vis. Exp. (171), e62537, doi:10.3791/62537 (2021).

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