Mini Liposuction Tekniği ile İnsan Subkutan Yağ Dokusu Örneklemesi
Summary
Makale ve ilgili video, umbilikusu çevreleyen bölgelerden deri altı yağ dokusu örnekleri elde etmek için perkütan bir biyopsi tekniğini göstermektedir. Bu yöntem, yağ dokusundaki bir dizi parametreyi (örneğin, gen veya protein ekspresyonu, enzim aktivitesi, lipit içeriği) araştırmak için düşük riskli ve etkili bir yoldur.
Abstract
Yağ dokusu üzerine yapılan çalışmalar metabolik ve diğer durumların anlaşılmasında yararlıdır. İnsan deri altı yağ dokusuna erişilebilir. Uygun eğitim ve aseptik tekniğe sıkı sıkıya bağlılık ile, deri altı yağ örnekleri araştırmacılar tarafından klinik olmayan bir ortamda güvenli ve verimli bir şekilde elde edilebilir. Lokal anestezik lateral göbek içine verildikten sonra, 5 veya 10 mL’lik bir şırıngaya tutturulmuş 14 G’lik bir iğne deriden deri altı dokusuna yerleştirilir. Emme altında, şırınga yağ dokusunun parçalarını izole etmek için pistonlu, dilimleme hareketinde hareket ettirilir. Pistonun geri çekilmesi, yağ dokusu parçalarının iğneden şırıngaya aspire edilmesini sağlamak için yeterlidir. Tek bir biyopsi yaklaşık 200 mg doku toplayabilir. Bu biyopsi tekniği hem katılımcılar hem de araştırma personeli için çok güvenlidir. Biyopsiyi takiben, katılımcılar çoğu günlük aktiviteye devam edebilirler, ancak aşırı kanamayı önlemek için 48 saat boyunca yüzmeden ve aşırı yorucu aktivitelerden kaçınmaları gerekir. Katılımcılar tek bir gün içinde güvenli bir şekilde 2 biyopsi alabilirler, bu da tekniğin akut müdahale öncesi ve sonrası çalışmalarda uygulanabileceği anlamına gelir.
Introduction
Yağ dokusu, insanların metabolik fonksiyonları hakkında yararlı bilgiler sağlayabilir. İnsan deri altı yağ dokusuna kolayca erişilebilir. Subkutan yağ dokusu ekstraksiyonu için bir teknik ilk olarak 80’li yılların ortalarında tanımlanmıştır1; O zamandan beri, verimi artırmak ve çalışma katılımcısının tolere edilebilirliğini artırmak için ilk protokol geliştirilmiştir. Subkutan yağ dokusu çok sayıda bölgeden, en sık glutei1 ve abdominal bölge2’den elde edilebilir. İkincisinden alınan örnekler, metabolik hastalıkla ilgili bağlamlarda daha değerli bilgiler sağladıkları için daha arzu edilebilir3.
Mini liposuction yöntemi kullanılarak deri altı yağ dokusu biyopsisi, klinik olmayan bir ortamda güvenli ve verimli bir şekilde gerçekleştirilebilir. Kurul sertifikalı bir doktor tarafından uygun eğitimi takiben ve sıkı aseptik teknik kullanarak, araştırmacılar bu biyopsileri hem katılımcı hem de araştırmacılar için minimum riskle rutin olarak gerçekleştirebilirler. Biyopsi ekibi en az 2 kişiden oluşmalıdır: biyopsiyi yapacak kişi ve bir asistan.
Biyopsiden sorumlu kişi, katılımcının kimliğini doğrulamak, katılımcının prosedürden güvenli bir şekilde geçebileceğini kontrol etmek (aşağıdaki protokol adımları 2.1-2.4’e bakınız), katılımcının prosedür boyunca rahat etmesini sağlamak, prosedür boyunca steril tekniğin korunmasını sağlamak, prosedürü uygulamak ve katılımcıya sözlü ve yazılı bakım sonrası prosedürler sağlamakla görevlidir. Asistanın rolü, daha sonra analiz ve / veya depolama için elde edilen yağ dokusunu işlemek ve hızlı bir şekilde işlemektir. Asistan ayrıca “steril olmayan eller” olarak ve katılımcının prosedür boyunca rahat etmesini sağlayarak yardımcı olur. Bu video ve makalenin amacı, karın bölgesinden deri altı yağ dokusunu güvenli bir şekilde elde etmek için adım adım biyopsi prosedürünü tanımlamaktır.
Protocol
Representative Results
Discussion
Tarif edilen protokol ve ilişkili video, karın bölgesinden deri altı yağ dokusu örnekleri elde etmek için mini liposuction tekniğine adım adım genel bir bakış sunmaktadır. Bu araştırma grubu, katılımcılarda herhangi bir yan etkisi olmadan 19 ay boyunca toplam 124 biyopsi gerçekleştirmiştir. Prosedür güvenlidir ve açıklanan güvenlik önlemlerine uyulması koşuluyla katılımcılar veya biyopsi ekibi için minimum risk ile ilişkilidir. Aseptik teknik (steril ekipmanın kirletilmeden açılması …
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Yazarların beyan edecek bir fonu yoktur.
Materials
| Item: 14 G needle 14 G x 3 1/8" 210 mm x 80 mm |
B Braun | 4665473 | Per biopsy: 1 |
| Item: 21 G needle 21 G x 1 1/2" 0.8 mm x 38 mm |
Terumo | AN*2138R1 | Per biopsy: 2 |
| Item: 26 G needle 26 G x 1/2" microlance needle 0.45 mm x 13 mm |
BD | 303800 | Per biopsy: 2 |
| Item: 5 mL syringe 5 mL luer |
DB plastipak | 302187 | Per biopsy: 2 |
| Item: Adhesive wound dressing Opsite Post-Op Dressing 9.5 x 8.5 |
Smith & Nephew | 6600709 | Per biopsy: 1 |
| Item: Disposable sterile scalpel Disposable Scalpel Sterile Blade no. 10 |
Swann Morton | /0501 | Per biopsy: 1 |
| Item: Icepack BlueDot Reusable Hot/Cold Pack 26.5 cm x 13.0 cm |
NuCare | F711 | Per biopsy: 1 |
| Item: Iodine based antiseptic Videne antiseptic solution |
Ecolab Videne | 3030440 | Per biopsy: q.s |
| Item: Lidocaine 2% w/o epinephrine Lidocaine 2% injection 5 mL |
B Braun | 3558553 | Per biopsy: 5 mL |
| Item: Non-sterile gloves Starguard sensitive powder free nitrile gloves |
Starguard | SG-N-S | Per biopsy: pair |
| Item: Sodium chloride 0.9% Sodium chlride 0.9% w/v intravenous infusion BP |
BBraun | S8004-5384 | Per biopsy: q.s. |
| Item: Stabilization solution* RNAlater Stabilization Solution |
ThermoFisher Scientific | AM7020 | Per biopsy: q.s |
| Item: Sterile forceps Sterile forceps |
Rocialle | RML109-006 | Per biopsy: 1 |
| Item: Sterile gauze swabs Non woven swabs sterile 7.5 x 7.5 cm |
Prestige | 1860 | Per biopsy: 5 |
| Item: Sterile gloves Prestige soft vinyl sterile powder free medical gloves |
Prestige | S: P4301 M:P3302 L:P3301 |
Per biopsy: pair |
| Item: Sterile Microcentrifuge tubes 1.5 mL Sterile Microcentrifuge Tubes |
StarLab | I1415-5510 | Per biopsy: q.s |
| Item: Sterile sheet Paper plain white 90 x 90 cm |
Rocialle | RML 126-216 | Per biopsy: 1 |
| Item: Weighing boat Diamond shape weigh boats |
Heathrow Scientific | HS1427C | Per biopsy: 1 |
| * denotes optional materials |
Referências
- Beynen, A. C., Katan, M. B. Rapid sampling and long-term storage of subcutaneous adipose-tissue biopsies for determination of fatty acid composition. American Journal of Clinical Nutrition. 42 (2), 317-322 (1985).
- Moran, C. N., et al. Effects of diabetes family history and exercise training on the expression of adiponectin and leptin and their receptors. Metabolism. 60 (2), 206-214 (2011).
- Jialal, I., Devaraj, S. Subcutaneous adipose tissue biology in metabolic syndrome. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation. 33 (1), (2018).
- WHO Guidelines on hand hygiene in health care: a summary. World Health Organization Available from: https://www.who.int/gpsc/5may/tools/who_guidelines-handhygiene_summary.pdf (2009)
- Kettwich, L. G., et al. New device technologies for subcutaneous fat biopsy. Amyloid. 19 (2), 66-73 (2012).
- Preston, R. M. Aseptic technique: evidence-based approach for patient safety. British Journal of Nursing. 14 (10), 540-546 (2005).
- Handiyani, H., Meily Kurniawidjaja, L., Irawaty, D., Damayanti, R. The effective needle stick injury prevention strategies for nursing students in the clinical settings: a literature review. Enfermeria Clinica. 28, 167-171 (2018).
- Raggio, B. S., Barton, B. M., Kandil, E., Friedlander, P. L. Association of continued preoperative aspirin use and bleeding complications in patients undergoing thyroid surgery. JAMA Otolaryngology-Head & Neck Surgery. 144, 335 (2018).
- Cartwright, I. J., Pockley, A. G., Galloway, J. H., Greaves, M., Preston, F. E. The effects of dietary omega-3 polyunsaturated fatty acids on erythrocyte membrane phospholipids, erythrocyte deformability and blood viscosity in healthy volunteers. Atherosclerosis. 55 (3), 267-281 (1985).
- Hemmrich, K., Denecke, B., Paul, N. E., Hoffmeister, D., Pallua, N. RNA isolation from adipose tissue: an optimized procedure for high RNA yield and integrity. Laboratory Medicine. 41 (2), 104-106 (2010).
- Chachopoulos, V., et al. A technique for subcutaneous abdominal adipose tissue biopsy via a non-diathermy method. Journal of Visual Experiments: JoVE. (127), e55593 (2017).
- Civelek, M., et al. Genetic regulation of human adipose microRNA expression and its consequences for metabolic traits. Human Molecular Genetics. 22 (15), 3023-3037 (2013).
- Chen, Y. C., et al. Feeding influences adipose tissue responses to exercise in overweight men. American Journal of Physiology Endocrinology and Metabolism. 313 (1), 84-93 (2017).
- Mendham, A. E., et al. Exercise training results in depot-specific adaptations to adipose tissue mitochondrial function. Scientific Reports. 10 (1), 3785 (2020).
- Carswell, K. A., Lee, M. J., Fried, S. K. Culture of isolated human adipocytes and isolated adipose tissue. Methods in Molecular Biology. 806, 203-214 (2012).
- Arner, P., Andersson, D. P., Backdahl, J., Dahlman, I., Ryden, M. Weight gain and impaired glucose metabolism in women are predicted by inefficient subcutaneous fat cell lipolysis. Cell Metabolism. 28 (1), 45-54 (2018).
- Mutter, G., et al. Comparison of frozen and RNALater solid tissue storage methods for use in RNA expression microarrays. BMC genomics. 5, 88 (2004).
- Coleman, S. Structural fat grafting: more than a permanent filler. Plastic and Reconstructive Surgery. 118, 108-120 (2018).
