질 세척을 활용한 설치류 에스트로우스 사이클 모니터링 : 정상주기와 같은 것은 없습니다.
Summary
이 연구는 암컷 쥐와 관련된 실험 설계에서 고려해야 할 중요한 요소를 자세히 설명합니다. 더 큰 의미에서 이러한 데이터는 낙인을 줄이고 더 포괄적 인 진단 및 개입 도구의 개발을 돕는 역할을합니다.
Abstract
현재의 방법론은 여성 Sprague Dawley (SD) 청소년 쥐의 발정주기를 모니터링하기위한 재현 가능하고 표준화되고 비용 효율적인 접근법을 수립합니다. 이 연구는 호르몬주기의 복잡성과 신뢰할 수 있고 유효한 모니터링 기술을 구축하는 데 필요한 광범위한 이해를 보여줍니다. 주요 실험 설계 및 절차 요소에 대한 심층적 인 검토를 통해주기와 기본 원칙에 대한 이러한 설명은 향후 복제에 대한 오해를 더 깊이 이해하고 해체하기위한 틀을 제공합니다.
질 세척을 사용하는 샘플 수집 프로세스의 개요와 함께이 절차는 proestrus, estrus, metestrus 및 diestrus의 네 단계 모델로 데이터 분류 메커니즘을 설명합니다. 이러한 단계는 질액 상태, 존재하는 세포 유형, 세포 배열 및 수집시의 세포량의 4 가지 분류 결정 요인을 활용하는 새로운 제안 된 접근법을 특징으로합니다. 각 단계의 변형, 호의적이고 불리한 샘플, 순환성과 비순환성의 구별, 수집 된 분류 구성 요소의 그래픽 묘사는 데이터의 효과적인 해석 및 조직 관행과 함께 제시됩니다. 전반적으로 이러한 도구를 사용하면 처음으로 정량화 가능한 데이터 범위를 게시할 수 있으므로 복제 시 범주화 요소가 표준화됩니다.
Introduction
새로운 기여
설치류 발정주기는 건강의 필수 지표로 확인되었습니다. 그러나 조사관의 무의식적 인 편견과 여성의 신체에 관한 부정확 한 해석은 과학계를 방해합니다. “estrous”라는 단어의 어원은 열등감과 부정감을 의미합니다. Euripides는이 용어를 사용하여 “광란”또는 광기를 묘사하고, 호머는 공황을 묘사하고, 플라톤은 비합리적인 드라이브를 묘사했습니다. 이 연구는 이러한 원시적 관점이 현재 과학계에 어떻게 영향을 미치는지 강조하고 이전에 연구 된 방법의 업데이트 된 조합 인 새로운 모자이크 패러다임을 통해보다 포괄적 인 접근 방식을 위해 범위를 확대 한 새로운 모자이크 패러다임을 통해 이러한 우려를 해결합니다.
표준화되고 포괄적 인 모니터링 기술이 없기 때문에이 기술의 연구와 사용이 필요하며 데이터 해석 관행이 불분명 할 수 있습니다. 둘째, 에스트로우스 사이클 특성은 연구되는 개별 쥐에 의존하지만, 종종 보편화됩니다. 셋째, 호르몬 순환은 일상적이고 유익한 과정이지만 ‘인간으로의 번역’섹션에서 탐구 된 위험한 낙인으로 둘러싸여 있습니다. 이 연구는 (A) 심층적 인 에스트로 사이클 모니터링 기술을 설명하고 결과를 해석 할 수있는 방법을 명확히하고, (B) 각 사이클의 무결성과 개성을 유지하는 방법을 요약하고, (C) 입증되지 않은 관행을 영속시키는 오해에주의를 환기시킴으로써 세 가지 방법으로이 세 가지 문제를 해결하는 것을 목표로합니다.
이 연구는 또한 청소년기 쥐에 초점을 맞추는 데있어 독특합니다.이 기간은 성인기의 다양한 행동, 해부학 적 및 생리적 징후를 밝히는 중요한 발달 변화로 특징 지어집니다1. 공통적 편향을 해체하면서 연구가 부족한 인구의 호르몬 주기를 모니터링하기 위한 표준화된 실험 설계를 구축하면 신뢰할 수 있고 유효한 호르몬 상관관계 2,3,4의 개발과 상태 의존적 주기 중단 5,6,7,8,9,10 의 결정이 가능합니다. . 궁극적으로, 이러한 참신함은 진단 기준, 치료 및 다양한 건강 문제의 개입을 확장하는 역할을합니다.
기본 정의 및 사용
에스트로우스 사이클은 세 가지 진동하는 여성 성 스테로이드 호르몬, 즉 에스트라 디올, 류틴 화 호르몬 (LH) 및 프로게스테론 (그림 1A, B)에 반응하여 발생하는 역동적 인 생리 학적 과정의 모음입니다. 내분비와 중추 신경계 사이의 상호 작용은 사이클을 조절하며, 이는 대부분 4-5 일 동안 지속되며 성적 성숙의 시작부터 생식 노화 및 / 또는 중단까지 재발합니다. 그것은 호르몬 수준에 따라 별도의 범주로 나뉩니다 – 가장 일반적으로 원형 방식으로 진행되는 디스트러스 (DIE), 돌출부 (PRO), 발정기 (EST) 및 metestrus (MET)의 4 단계로 나뉩니다. 분할의수는 연구 13의 성격에 따라 3 단계11에서 13 단계 12까지 다양 할 수 있습니다. 부서 수가 적을수록 MET는 종종 스테이지로 제외되고 단기간의 과도기 기간으로 분류됩니다. 더 높은 숫자는 전형적으로 종양 발달 또는 자발적 위임신과 같은 현상의 면밀한 검사를 허용하는 하위섹션, 배아 이식 없이 임신의 생리학적 상태(12,14,15)를 포함한다.
이 연구에서, 단계는 질 운하의 구성 요소를 통해 확인되었으며, 3 가지 분류 결정 인자 – 세포 유형 (들) 존재, 세포 배열 및 세포 양 (그림 2A-D)으로 명명되었습니다. 이 연구에서 질액의 상태는 모니터링되지 않았지만 네 번째 분류 구성 요소로 포함하는 것이 좋습니다. 질 유체를 검사하는 것에 대한 추가 정보는 참조 리스트(16)에서 찾을 수 있다. 분류 구성 요소는 질 세척을 통해 세포를 추출하여 검사 할 수 있습니다.이 기술은 현대 발정주기 모니터링에서 권장되는 기본 기술입니다. 각 단계 내의 심층적 인 생리 학적 과정이이 연구의 범위를 벗어나는 반면, 더 많은 정보는 문헌17에서 찾을 수 있습니다.
이 에스트로우스 사이클 모니터링 기술의 사용 및 지속적인 개발은 성 스테로이드 호르몬과 심혈관 시스템(18), 내분비계(8) 및 중 추신경계(19,20,21)와 같은신체 시스템의 기능 사이의 연결에 뿌리를 두고 있다. 동시에, 여성 설치류가22,23,24,25와 관련되어있을 때 발정주기 모니터링이 항상 필요한 것은 아닙니다. 오히려, 성별 차이가 연구의 특정 영역에서보고되었는지 여부를 고려하는 것이 중요하며, 이는 출판 된 리뷰22,23에서 더 탐구 될 수 있습니다. 에스트로우스 사이클 모니터링은 광범위한 연구 조사에서 필수적이지만, 실험에 여성 설치류를 포함시키는 데 장애물로 간주되어서는 안됩니다. 이 기술은 복잡하고 시간이 많이 걸리는 것처럼 보일 수 있지만 조사자에 따라 절차 자체를 완료하는 데 15 분 미만이 걸릴 수 있으며 비용 효율적입니다. 전반적으로, 과학 연구에 여성 설치류를 포함시키는 것은 신체 시스템, 다양한 조건 및 병리학 및 일반적인 건강에 대한 이해에 유리하며, 이러한 개발은 주로 남성 신체 템플릿에 기반을두고 있기 때문입니다.
설치류의 보편적 인 매개 변수와 자연 다양성
“전형적인”것으로 보이는 측면에 대한 범위를 설정하는 것은 표준 사이클 패턴을 정의하고, 비교 및 분석 목적을 위해 매개 변수를 설정하고, 이상 및 이상값을 감지하는 데 필요합니다. 동시에 각 쥐의주기가 독특하며 동물의 변형, 생리 학적 과정 및 환경 조건에 따른 편차가 예상된다는 것을 인식하는 것도 중요합니다. 사실, 에스트로우스 사이클의 가장 “정상적인”측면 중 하나는 변동성입니다. 이것은 3-38 일26,27의 범위와 함께 총 사이클 길이에서 볼 수 있습니다. 32-34 일에서 여러 주에 이르기까지 다양 할 수있는 성적 성숙의 나이28,29,30; 비주기적 11로 간주되는 것, 및 분류된 결정자 패턴(11,13)이 있다. 전반적으로, 에스트로우스 사이클에 대한 보편적 인 템플릿은 없으며, 과학계와 일반 대중 모두에게 그것을 번역하는 것은 실험 과정의 중요한 부분입니다.
실험 시점과 발달 연령
이러한 변동성 원칙을 인식하면 신뢰할 수 있고 유효한 실험 설계를 구축하는 데 도움이됩니다. 예를 들어, 에스트로우스 사이클링 모니터링의 시작은 쥐의 해부학 적 및 생리적 발달에 의존하며, 이는 환경 및 생리 학적 요인에 따라 다릅니다. 모니터링은 질 운하의 내부 부분으로 이어지는 외음부로 둘러싸인 외부 질 오리피스 인 질 개구부 (VO)가 발달 할 때까지 시작할 수 없습니다 (그림 3A-D). VO는 종종 32 일에서 34 일 사이에 완전히 발달하지만, 각 과목마다 개별화 된 채로 남아 있으며 그 과정에 대한 많은 부분은 알려지지 않았습니다. 이 개구부는 에스트라디올 31의 증가, 시상 하부 – 뇌하수체 – 난소 축 (32)의 성숙 및 쥐 17,33,34,35의 첫 번째 배란과 관련된 성적 성숙의 시작을 확인하는 데 사용되었습니다. 그러나, 최근의 간행물들은 그것이 불리한 환경(31)에서 호르몬 및 발달 발생으로부터 결합되지 않을 수 있고, 성적 성숙(33)보다는 에스트라디올 수준의 변화를 나타낼 수 있기 때문에, 생식 발달의 간접적인 마커일 뿐이라는 것을발견하였다. 따라서, 발달 연령을 결정하기 위해 VO에만 의존하지 않고, 발정기 모니터링(36)을 위한 한정자로서, 또한 성적 성숙의 개시를 표시하기 위해 상피 세포(30)의 첫 번째 EST 단계의 출현 및 각질화를 활용하는 것이 바람직하다.
체중은 설치류30,37의 청소년 기간 동안 발달 연령과 특히 관련이 있으므로이 기간의 발달 연령을 결정하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 현상과 관련된 제안 된 메커니즘은 성장 호르몬과 같은 생식 발달에 필요한 호르몬의 자극, 및 식욕 조절제, 렙틴30에 의한 시상 하부 – 뇌하수체 부신 (HPA) 축의 억제를 포함한다. 그러나, 종에 걸친 쥐와 공급 업체 제공자(38) 사이에서 볼 수있는 큰 차이로 인해이 측정을 발달 연령의 유일한 지표로 활용하는 것은 권장되지 않습니다. VO 및 체중의 발달에서 볼 수있는 변동성은 전체 실험 과정에서 개념의 중요성을 예증합니다.
인간에 대한 번역 : 문화적, 과학적 맥락
동물과 인간의 생식 연구의 번역 관계는 양방향입니다. 동물 기반 연구의 결과는 인간 과정이 어떻게 평가되고, 접근하고, 분석되는지에 영향을 미친다39. 인간의 생식 시스템과 관련 과정에 대한 인식은 동물을 연구하는 방법에 영향을 미칩니다. 사실,이 분야의 추가 연구에 대한 가장 큰 징후 중 하나는 과학적 과정에 영향을 미치는 호르몬주기와 관련된 편향된 사회 문화적 신념에서 비롯됩니다. 이러한 관습의 대부분은 월경을 논의하는 일반적인 문화적 혐오감에서 파생되었으며, 이는 잘 입증 된 지식40,41의 데이터 격차를 초래했습니다. 이것은 선반 높이와 스마트 폰 크기에서부터 경찰 갑옷 피팅 및 놓친 암 진단42에 이르기까지 사소한 것부터 치명적인 것까지 다양한 결과를 초래합니다.
월경을 비위생적이고 파괴적이며 독성이 강한 것으로 묘사하는 것은 존경받는 텍스트, 미디어, 사전 및 의학적 가르침에서 볼 수 있습니다 – 과학 출판물에 의해 보존됩니다. 이것은 호르몬 순환에 대한 부정확하고 편향된 설명, 생식 기관이 신경 내분비 대응 물 및 환경 영향으로부터 분리되는 것, 그리고 ‘임신 실패’로서의 순환의 완성에 대한 환원 주의적 관점을 통해 발생합니다.43,44. 이것은 호르몬 순환에 영향을 미치는 외부 변수의 생략, 해부학 적 발달만을 기반으로 시작과 종점을 결정하고, 순환 방식이 아닌 선형으로주기 진행을 측정하는 것과 같은 건전하지 않은 실험 관행의 창출로 이어집니다. 사회 문화적 요인과 생물학적 결과 사이의 직접적인 상관 관계에도 불구하고 과학 문헌에서는 종종 고려되지 않습니다. 보다 전체적인 출판물 43,44,45의 검사를 통해 연구자들은 이러한 오명을 해체하고보다 신뢰할 수 있고 유효한 실험 설계를 만들 수 있습니다.
Protocol
Representative Results
Discussion
주요 단계 및 중요한 고려 사항
제공된 프로토콜의 특정 중요한 단계는 특히 질 세포 수집 내에서 강조가 필요합니다. 질액 추출 중에 주사기 삽입의 적절한 각도와 깊이를 보장하는 것이 만족스러운 결과를 산출하고 궁극적으로 동물에 대한 자극, 부상 또는 자궁 경부 자극을 예방하는 열쇠입니다. 자궁 경부의 자극은 백혈구 전용 질 도말 (11)의 12-14 일로 표시된 의사 임신 유도의 …
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
이 연구는 캘리포니아 대학 로스 앤젤레스 뇌 손상 연구 센터 (BIRC) 간의 NIH 자금 협력을 통해 수행되었습니다.
Materials
| AmScope 40X-1000X LED Student Microscope + 5MP USB Camera | AmScope | Part Number: M150C-E5 EAN: 0608729747796 Model Number: M150C-E5 | https://www.amazon.com/AmScope-40X-1000X-Student-Microscope-Camera/dp/B00O9GNOTA/ref=sr_1_15?crid=2W9CHTG8YSOTV& keywords=usb+camera+for+microscope& qid=1572477663&s=industrial &sprefix=USB+camera+for+micr%2Cindustrial%2C177&sr=1-15 |
| BD PrecisionGlide Needle Pack, 20G x 1, Short Bevel | Fischer Scientific | 14-815-526 | https://www.fishersci.com/shop/products/bd-precisionglide-single-use-needles-short-bevel-regular-wall-4/14815526#?keyword=BD%20PrecisionGlide%20Needle%20Pack,%2020G%20x%201 |
| Bed O Cob 1/8 | NEWCO | 93009 | https://andersonslabbedding.com/cob-products/bed-ocobs-8b/ |
| Corning™ Plain Microscope Slides Plain water-white glass | Fischer Scientific | 12-553-7A | https://www.fishersci.com/shop/products/corning-plain-microscope-slides-microscope-slides-75-x-25mm/125537a |
| Corning™ Rectangular Cover Glasses | Fischer Scientific | 12-553-464 | https://www.fishersci.com/shop/products/corning-square-rectangular-cover-glasses-rectangle-no-1-thickness-0-13-0-17mm-size-24-x-50mm/12553464#?keyword=true |
| Kimberly-Clark Professional™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Delicate Task Wipers, 1-Ply | Fischer Scientific | 06-666 | https://www.fishersci.com/shop/products/kimberly-clark-kimtech-science-kimwipes-delicate-task-wipers-7/p-211240?crossRef=kimwipes |
| Labdiet Rodent Lab Chow 50lb, 15001 | NEWCO Specialty and LabDiet | 5012 | https://www.labdiet.com/products/standarddiets/rodents/index.html |
| Linear LED Bulb, UL Type A, T8, Medium Bi-Pin (G13), 4,000 K Color Temperature, Lumens 2550 lm | Grainger | 36UX10 | https://www.grainger.com/product/36UX10?gclid=CjwKCAjw_ LL2BRAkEiwAv2Y3SW1WdNdkf7 zdIxoT9R6n2DGnrToJHjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRoCi4 cQAvD_BwE&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696 !p!!g!!led18et8%2F4%2F840&ef_id= CjwKCAjw_LL2BRAkEiwAv2Y3SW 1WdNdkf7zdIxoT9R6n2DGnrToJ Hjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRo Ci4cQAvD_BwE:G:s&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&cm_mmc= PPC:+Google+PPC |
| Sodium Chloride Injection Bags, 0.9% | Live Action Safety | ABB079830939 | https://www.liveactionsafety.com/injection-iv-solution-9-sodium-chloride-1000ml-bags/ |
| Syringe Sterile 1ml with Luer Slip Tip – 100 Syringes by BH Supplies | BH Supplies | ASIN: B07BQDRDC2 UPC: 638632928821 | https://www.amazon.com/1ml-Syringe-Sterile-Luer-Slip/dp/B07BQDRDC2/ref=sr_1_1_sspa?crid=13S8EGEUK90G7& keywords=1ml+sterile+syringe&qid= 1572478649&s=industrial &sprefix=1+ml+steri%2Cindustrial%2C187&sr=1-1-spons&psc=1&spLa= ZW5jcnlwdGVkUXVhbGlmaWVy PUEyRlo4NFdZWkJLWkxGJm VuY3J5cHRlZElkPUEwMDEzODQ yMjNWNzdWM0hTNzVBRCZlbmNy eXB0ZWRBZElkPUEwNDI3NzAzM 0E5SzVKMkxaQVc2JndpZGdldE5h bWU9c3BfYXRmJmFjdGlvbj1jbGlja 1JlZGlyZWN0JmRvTm90TG9nQ2 xpY2s9dHJ1ZQ== |
| Wire lids and floors Mouse Maternity Wire Bar LidUsed with Rat Cage (10" X 19" x 8"H )Overall dimen | Allentown | LV40326013 | https://www.labx.com/item/wire-lids-and-floors-mouse-maternity-wire-bar-lidused/LV40326013#description |
| Ultra Lightweight Tissue and Plastic 17' x 24' Disposable Underpad | Medline | EAN: 0480196288558 Global Trade Identification Number: 40080196288558 |
https://www.amazon.com/Medline-Industries-MSC281224C-Lightweight-Disposable/dp/B00A2G67YU/ref=sr_1_4?keywords=medline+industries+surgical+pads&qid=1572475853& sr=8-4 |
Referências
- Schneider, M. Adolescence as a vulnerable period to alter rodent behavior. Cell and Tissue Research. 354 (1), 99-106 (2013).
- Camacho-Arroyo, I., Montor, J. M. Beyond reproductive effects of sex steroids. MiniReviews in Medicinal Chemistry. 12 (11), 1037-1039 (2012).
- Shah, S. I. A. Systemic non-reproductive effects of sex steroids in adult males and females. Human Physiology. 44, 83-87 (2018).
- Wierman, M. E. Sex steroid effects at target tissues: mechanisms of action. Advances in Physiology Education. 31 (1), 26-33 (2007).
- An, G., et al. Pathophysiological changes in female rats with estrous cycle disorder induced by long-term heat stress. BioMed Research International. 2020, 4701563 (2020).
- Donato, J., et al. The ventral premammillary nucleus links fasting-induced changes in leptin levels and coordinated luteinizing hormone secretion. Journal of Neuroscience. 29 (16), 5240-5250 (2009).
- Fortress, A. M., Avcu, P., Wagner, A. K., Dixon, C. E., Pang, K. Experimental traumatic brain injury results in estrous cycle disruption, neurobehavioral deficits, and impaired GSK3β/β-catenin signaling in female rats. Experimental Neurology. 315, 42-51 (2019).
- Hatsuta, M., et al. Effects of hypothyroidism on the estrous cycle and reproductive hormones in mature female rats. European Journal of Pharmacology. 486 (3), 343-348 (2004).
- Jaini, R., Altuntas, C. Z., Loya, M. G., Tuohy, V. K. Disruption of estrous cycle homeostasis in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroimmunology. 279, 71-74 (2015).
- Tropp, J., Markus, E. J. Effects of mild food deprivation on the estrous cycle of rats. Physiology and Behavior. 73 (4), 553-559 (2001).
- Goldman, J. M., Murr, A. S., Cooper, R. L. The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Research. Part B, Developmental and Reproductive Toxicology. 80 (2), 84-97 (2007).
- Thung, P. J., Boot, L. M., Muhlbock, O. Senile changes in the oestrous cycle and in ovarian structure in some inbred strains of mice. Acta Endocrinologica. 23 (1), 8-32 (1956).
- Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
- . Biochemical and endocrinological studies of normal and neoplastic tissue: The metabolism of estrogen-producing ovarian tumors and other malignancies in the mouse Available from: https://www.translatetheweb.com/?from=nl&to=en&ref=SERP&dl=en&rr=UC&a=https%3a%2f%2frepository.tudelft.nl%2fislandora%2fobject%2fuuid%253A8776d58a-6695-4a38-99ca-0abf607480f0 (2021)
- Van Der Lee, S., Boot, L. M. Spontaneous pseudopregnancy in mice. Acta Physiologica Pharmacologica Neerlandica. 4 (3), 442-444 (1955).
- Paccola, C., Resende, C., Stumpp, T., Miraglia, S., Cipriano, I. The rat estrous cycle revisited: a quantitative and qualitative analysis. Animal Reproduction. 10 (4), 677-683 (2013).
- Ojeda, S. R., Urbanski, H. F., Knobil, E., Neill, J. D. Puberty in the rat. The Physiology of Reproduction. , 363-409 (1994).
- Schallmayer, S., Hughes, B. M. Impact of oral contraception and neuroticism on cardiovascular stress reactivity across the menstrual cycle. Psychology, Health & Medicine. 15 (1), 105-115 (2010).
- Barreto-Cordero, L. M., et al. Cyclic changes and actions of progesterone andallopregnanolone on cognition and hippocampal basal (stratum oriens) dendritic spinesof female rats. Behavioural Brain Research. 379, 112355 (2020).
- de Zambotti, M., Trinder, J., Colrain, I. M., Baker, F. C. Menstrual cycle-related variation in autonomic nervous system functioning in women in the early menopausal transition with and without insomnia disorder. Psychoneuroendocrinology. 75, 44-51 (2017).
- Maghool, F., Khaksari, M., Khachki, A. S. Differences in brain edema and intracranial pressure following traumatic brain injury across the estrous cycle: Involvement of female sex steroid hormones. Brain Research. 1497, 61-72 (2013).
- Bale, T. L., Epperson, C. N. Sex as a biological variable: Who, what, when, why, and how. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 386-396 (2017).
- Becker, J. B., Prendergast, B. J., Liang, J. W. Female rats are not more variable than male rats: a meta-analysis of neuroscience studies. Biology of Sex Differences. 7, 34 (2016).
- Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
- Joel, D., McCarthy, M. M. Incorporating sex as a biological variable in neuropsychiatric research: where are we now and where should we be. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 379-385 (2017).
- Long, J. A., Evans, H. M. The oestrous cycle in the rat and its associated phenomena. Memoirs of the University of California. 6, 1 (1922).
- Westwood, F. R. The female rat reproductive cycle: A practical histological guide to staging. Toxicologic Pathology. 36 (3), 375-384 (2008).
- Lenschow, C., Sigl-Glöckner, J., Brecht, M. Development of rat female genital cortex and control of female puberty by sexual touch. PLoS Biology. 15 (9), 2001283 (2017).
- Lewis, E. M., Barnett, J. F., Freshwater, L., Hoberman, A. M., Christian, M. S. Sexual maturation data for Crl Sprague-Dawley rats: Criteria and confounding factors. Drug and Chemistry Toxicology. 25 (4), 437-458 (2002).
- Spear, L. P. The adolescent brain and age-related behavioral manifestations. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 24 (4), 417-463 (2000).
- Gaytan, F., et al. Development and validation of a method for precise dating of female puberty in laboratory rodents: the puberty ovarian maturation score (pub-score). Scientific Reports. 7, 46381 (2017).
- da Silva Faria, T., da Fonte Ramos, C., Sampaio, F. J. Puberty onset in the female offspring of rats submitted to protein or energy restricted diet during lactation. Journal of Nutritional Biochemistry. 15 (2), 123-127 (2004).
- Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Current Protocols in Neuroscience. 48 (1), 1 (2009).
- Engelbregt, M. J., et al. Delayed first cycle in intrauterine growth-retarded and postnatally undernourished female rats: follicular growth and ovulation after stimulation with pregnant mare serum gonadotropin at first cycle. Journal of Endocrinology. 173 (2), 297-304 (2002).
- Pescovitz, O. H., Walvoord, E. C. . When puberty is precocious: Scientific and clinical aspects. , (2007).
- . Standard Evaluation Procedure Test Guidelines 890.1450: Pubertal development and thyroid function in intact juvenile/peripubertal female rats assay Available from: https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/final_890.1450_female_pubertal_assay_sep_8.24.11.pdf (2011)
- Kennedy, G. G., Mitra, J. Body weight and food intake as initiating factors for puberty in the rat. Journal of Physiology. 166 (2), 408-418 (1963).
- Sengupta, S., Arshad, M., Sharma, S., Dubey, M., Singh, M. M. Attainment of peak bone mass and bone turnover rate in relation to estrous cycle, pregnancy and lactation in colony-bred Sprague-Dawley rats: Suitability for studies on pathophysiology of bone and therapeutic measures for its management. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 94 (5), 421-429 (2005).
- Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats. Disease models & Mechanisms. 2 (5-6), 206-210 (2009).
- Koff, E., Rierdan, J., Stubbs, M. L. Conceptions and misconceptions of the menstrual cycle. Women & Health. 16 (3-4), 119-136 (1990).
- Sahay, N. Myths and misconceptions about menstruation: A study of adolescent school girls of Delhi. Journal of Women’s Health and Development. 3 (3), 154-169 (2020).
- . The deadly truth about a world built for men – from stab vests to car crashes Available from: https://www.theguardian.com/lifeandstyle/2019/feb/23/truth-world-built-for-men-car-crashes (2019)
- Chrisler, J. C., Denmark, F. L., Paludi, M. A. The menstrual cycle in a biopsychosocial context. Women’s Psychology. Psychology of Women: A Handbook of Issues and Theories. , 193-232 (2008).
- . Re-cycling the menstrual cycle: A multidisciplinary reinterpretation of menstruation Available from: https://scholarworks.wmich.edu/masters_theses/3942 (1998)
- Sato, J., Nasu, M., Tsuchitani, M. Comparative histopathology of the estrous or menstrual cycle in laboratory animals. Journal of Toxicologic Pathology. 29 (3), 155-162 (2016).
- Whitten, W. K. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. Journal of Endocrinology. 13 (4), 399-404 (1956).
- Smith, J. R., et al. The year of the rat: The Rat Genome Database at 20: a multi-species knowledgebase and analysis platform. Nucleic Acids Research. 48 (1), 731-742 (2020).
- Capdevila, S., Giral, M., Ruiz de la Torre, J. L., Russell, R. J., Kramer, K. Acclimatization of rats after ground transportation to a new animal facility. Laboratory Animals. 41 (2), 255-261 (2007).
- Conour, L., Murray, K., Brown, M. Preparation of animals for research-issues to consider for rodents and rabbits. ILAR journal. 47 (4), 283-293 (2006).
- National Academies Press (US) Committee on Guidelines for the Humane Transportation of Laboratory Animals. Guidelines for the Humane Transportation of Research Animals. National Academies Press. , (2006).
- Obernier, J., Baldwin, R. Establishing an appropriate period of acclimatization following transportation of laboratory animals. ILAR Journal. 47 (4), 364-369 (2006).
- National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. US) . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).
- Pantier, L. K., Li, J., Christian, C. A. Estrous cycle monitoring in mice with rapid data visualization and analysis. Bio-protocol. 9 (17), 1-17 (2019).
- Cohen, I., Mann, D. Seasonal changes associated with puberty in female rats: effect of photoperiod and ACTH administration. Biology of Reproduction. 20 (4), 757-776 (1979).
- Nelson, J. F., Felicio, L. S., Randall, P. K., Sims, C., Finch, C. E. A longitudinal study of estrous cyclicity in aging C57BL/6J Mice: I. cycle frequency, length and vaginal cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
- Pennycuik, P. R. Seasonal changes in reproductive productivity, growth rate, and food intake in mice exposed to different regimens of day length and environmental temperature. Australian Journal of Biological Sciences. 25 (3), 627-635 (1972).
- Piacsek, B. E., Hautzinger, G. M. Effects of duration, intensity and spectrum of light exposure on sexual maturation time of female rats. Biology of Reproduction. 10 (3), 380-387 (1974).
- Rubinow, M. J., Arseneau, L. M., Beverly, J. L., Juraska, J. M. Effect of the estrous cycle on water maze acquisition depends on the temperature of the water. Behavioral Neuroscience. 118 (4), 863-868 (2004).
- JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Fundamentals of Breeding and Weaning. JoVE. , (2020).
- Campbell, C., Schwartz, N. The impact of constant light on the estrous cycle of the rat. Endocrinology. 106 (4), 1230-1238 (1980).
- Nelson, J. F., Felicio, L. S., Osterburg, H. H., Finch, C. E. Altered profiles of estradiol and progesterone associated with prolonged estrous cycles and persistent vaginal cornification in aging C578L/6J mice. Biology of Reproduction. 24 (4), 784-794 (1981).
- Rivest, R. W. Sexual maturation in female rats: Hereditary, developmental and environmental aspects. Experientia. 47 (10), 1026-1038 (1991).
- CD® (Sprague Dawley) IGS Rat. Charles River Laboratories Available from: https://www.criver.com/products-services/find-model/cd-sd-igs-rat?region=3611 (2021)
- JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Rodent Handling and Restraint Techniques. JoVE. , (2020).
- Circulatory System. Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
- Urogenital System. n.d.). Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
- . Anatomical foundations of neuroscience: Mini-atlas of rat’s brain. Anatomy and Cell Biology 9535b Available from: https://instruct.uwo.ca/anatomy/530/535downs.htm (2008)
- Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse estrous cycle identification tool and images. PloS One. 7 (4), 1-5 (2012).
- Marcondes, F. K., Bianchi, F. J., Tanno, A. P. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations. Brazilian Journal of Biology. 62 (4), 609-614 (2002).
- Champlin, A. K., Dorr, D. L., Gates, A. H. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
- Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6 (5), (2020).
- Bartos, L. Vaginal impedance measurement used for mating in the rat. Laboratory Animals. 11 (1), 53-55 (1977).
- Belozertseva, I. V., Merkulov, D. D., Vilitis, O. E., Skryabin, B. V. Instrumental method for determining the stages of the estrous cycle in small laboratory rodents. Laboratory Animals for Scientific Research. (4), (2018).
- Ramos, S. D., Lee, J. M., Peuler, J. D. An inexpensive meter to measure differences in electrical resistance in the rat vagina during the ovarian cycle. Journal of Applied Physiology. 91 (2), 667-670 (2001).
- Singletary, S. J., et al. Lack of correlation of vaginal impedance measurements with hormone levels in the rat. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (6), 37-42 (2005).
- Bretveld, R. W., Thomas, C. M., Scheepers, P. T., et al. Pesticide exposure: the hormonal function of the female reproductive system disrupted. Reproductive Biology Endocrinology. 4 (30), (2006).
- MacDonald, J. K., Pyle, W. G., Reitz, C. J., Howlett, S. E. Cardiac contraction, calcium transients, and myofilament calcium sensitivity fluctuate with the estrous cycle in young adult female mice. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 306 (7), 938-953 (2014).
- Koebele, S. V., Bimonte-Nelson, H. A. Modeling menopause: The utility of rodents in translational behavioral endocrinology research. Maturitas. 87, 5-17 (2016).
