Summary

एकल-नाभिक आरएनए-अनुक्रमण के लिए वयस्क माउस किडनी से नाभिक अलगाव

Published: September 20, 2021
doi:

Summary

यहां, हम जमे हुए माउस गुर्दे से उच्च गुणवत्ता वाले नाभिक को अलग करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जो मज्जा किडनी सेल प्रकारों के प्रतिनिधित्व में सुधार करता है और एंजाइमेटिक ऊतक पृथक्करण से जीन अभिव्यक्ति कलाकृतियों से बचता है।

Abstract

गुर्दे पानी, इलेक्ट्रोलाइट और एसिड-बेस होमियोस्टैसिस जैसी विविध जैविक प्रक्रियाओं को नियंत्रित करते हैं। गुर्दे के शारीरिक कार्यों को अंग के कॉर्टिकोमेडुलरी अक्ष पर एक जटिल वास्तुकला में व्यवस्थित कई सेल प्रकारों द्वारा निष्पादित किया जाता है। एकल-कोशिका ट्रांसस्क्रिप्टोमिक्स में हालिया प्रगति ने गुर्दे के शरीर विज्ञान और बीमारी में सेल प्रकार-विशिष्ट जीन अभिव्यक्ति की समझ को तेज कर दिया है। हालांकि, एंजाइम-आधारित ऊतक पृथक्करण प्रोटोकॉल, जो अक्सर एकल-कोशिका आरएनए-अनुक्रमण (एससीआरएनए-सेक) के लिए उपयोग किए जाते हैं, को ज्यादातर ताजा (गैर-संग्रहीत) ऊतक की आवश्यकता होती है, ट्रांसक्रिप्शनल तनाव प्रतिक्रियाओं को पेश करते हैं, और किडनी कॉर्टेक्स के प्रचुर मात्रा में सेल प्रकारों के चयन का पक्ष लेते हैं, जिसके परिणामस्वरूप मज्जा की कोशिकाओं का कम प्रतिनिधित्व होता है।

यहां, हम एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जो इन समस्याओं से बचता है। प्रोटोकॉल जमे हुए गुर्दे के ऊतकों से 4 डिग्री सेल्सियस पर नाभिक अलगाव पर आधारित है। नाभिक को माउस किडनी के एक केंद्रीय टुकड़े से अलग किया जाता है जिसमें कॉर्टेक्स, बाहरी मज्जा और आंतरिक मज्जा शामिल होते हैं। यह मज्जा कोशिकाओं के लाभ के लिए पूरे गुर्दे के नमूनों के लिए विशिष्ट कॉर्टिकल कोशिकाओं के अतिप्रतिनिधित्व को कम करता है जैसे कि डेटा पर्याप्त प्रचुरता में पूरे कॉर्टिकोमेडुलरी अक्ष का प्रतिनिधित्व करेगा। प्रोटोकॉल सरल, तेज और अनुकूलनीय है और गुर्दे के अनुसंधान में एकल-नाभिक ट्रांसस्क्रिप्टोमिक्स के मानकीकरण की दिशा में एक कदम प्रदान करता है।

Introduction

गुर्दे एक अत्यधिक जटिल ऊतक वास्तुकला प्रदर्शित करते हैं। वे एक कॉर्टिकोमेडुलरी अक्ष के साथ कार्यात्मक और शारीरिक रूप से अलग-अलग खंडों से मिलकर बनते हैं और जैविक कार्यों को मध्यस्थ करते हैं, जैसे कि बाह्य तरल पदार्थ की मात्रा, इलेक्ट्रोलाइट संतुलन, या एसिड-बेस होमियोस्टेसिस1 का विनियमन।

एकल-कोशिका ट्रांसस्क्रिप्टोमिक्स में प्रगति ने जटिल ऊतकों के गहन लक्षण वर्णन को सक्षम किया है और गुर्दे के शरीर विज्ञान, विकास और रोग 2,3,4 में खंड और सेल प्रकार-विशिष्ट जीन अभिव्यक्ति की समझ को तेज किया है।

हालांकि, एंजाइम-आधारित पृथक्करण प्रोटोकॉल जो अक्सर एससीआरएनए-सेक के लिए उपयोग किए जाते हैं, कई कमियां और बाधाएं प्रदर्शित करते हैं। प्रोटोकॉल के आधार पर, वे ट्रांसक्रिप्शनल तनाव प्रतिक्रियाओं और ऊतक पृथक्करण पूर्वाग्रह को आसानी से अलग करने वाले कॉर्टिकल सेल प्रकार 5,6 के प्रति उत्पन्न करते हैं। यद्यपि भ्रूण के गुर्दे के लिए कोल्ड-एक्टिव प्रोटीज का उपयोग करने वाले प्रोटोकॉल तनाव से संबंधित ट्रांसक्रिप्शनल परिवर्तनों को कम करने में सक्षम हैं, वे कॉर्टिकल कोशिकाओं के प्रति पृथक्करण पूर्वाग्रह को दूर करने में विफल रहते हैं और विभिन्न प्रकार के रोगग्रस्त गुर्दे के ऊतकों के लिए आसानी से अनुकूलनीय नहीं होसकते हैं। इसके अलावा, एकल-कोशिका दृष्टिकोण जमे हुए ऊतक नमूनों के साथ आसानी से संगत नहीं होते हैं, उनके आवेदन को ज्यादातर गैर-संग्रहीत, ताजा ऊतक तक सीमित करते हैं, इस प्रकार ऊतक संग्रह को एक प्रतिबंधित कारकबनाते हैं।

एकल-नाभिक आरएनए अनुक्रमण (एसएनआरएनए-सेक) इन सीमाओं8,9 को दरकिनार कर सकता है। यहां, हम जमे हुए वयस्क माउस किडनी ऊतक (चित्रा 1)10) के एक केंद्रीय टुकड़े से नाभिक अलगाव के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं। हमारा प्रोटोकॉल सरल है और प्रयोगात्मक मॉडल के लिए विभिन्न किडनी सेल प्रकारों के संतुलित प्रतिनिधित्व के साथ आरएनए अनुक्रमण पुस्तकालयों को प्राप्त करने के लिए एक मानकीकृत दृष्टिकोण प्रदान करता है जिसमें मजबूत क्षेत्रीय ऊतक परिवर्तन शामिल नहीं हैं। बाद के मामले में, हमारे प्रोटोकॉल को पूरे गुर्दे के साथ भी किया जा सकता है।

Protocol

सभी पशु प्रयोगों को पशु कल्याण अधिनियम (टियरएसएचजी) और पशु कल्याण प्रायोगिक पशु विनियमन (टियरएसएचवर्सवी) के अनुसार आयोजित किया गया था और स्थानीय अधिकारियों और हमारे संस्थान (एमडीसी) में पशु कल्याण अधिकारियों द्वारा अधिकृत किया गया था। 1. ऊतक तैयारी प्रत्येक गुर्दे के लिए प्रति अच्छी तरह से 1x फॉस्फेट-बफर्ड सेलाइन (पीबीएस) के 2 एमएल युक्त एक 6-वेल प्लेट तैयार करें जो प्राप्त किया जाएगा। एक 6-वेल प्लेट तैयार करें जिसमें प्रति अच्छी तरह से और गुर्दे में 2 एमएल आरएनए स्थिरीकरण समाधान हो। बर्फ पर दोनों प्लेटों को पहले से ठंडा करें। एक 3- से 6 महीने के पुरुष C57BL /6 माउस को इच्छामृत्यु करें। माउस को एक विच्छेदित ट्रे पर रखें, छोरों को पिन करें और 70% इथेनॉल के साथ पेट को निष्फल करें। बल और कैंची का उपयोग करके पेट को रिबकेज तक खोलें। आंत और अन्य अंगों को साइड में उठाएं और कैंची से मूत्रवाहिनी, गुर्दे की धमनी और नस को सावधानीपूर्वक काटकर गुर्दे को हटा दें। पहले से तैयार, बर्फ-ठंडा 1x PBS में गुर्दे को धोएं और गुर्दे से गुर्दे की प्रावरणी और किसी भी शेष वसा को हटा दें जब तक कि सभी सफेद ऊतक को हटा न दिया जाए (चित्रा 2 ए)। गुर्दे को एक ठंडे विच्छेदन प्लेट पर रखें और 1-2 मिमी का मध्य टुकड़ा प्राप्त करने के लिए एक तेज स्केलपेल या रेजर ब्लेड का उपयोग करें। सुनिश्चित करें कि ऊतक के टुकड़े में संपूर्ण कॉर्टिकोमेडुलरी अक्ष (चित्रा 2 बी) शामिल है। केंद्र टुकड़े के किनारों से कॉर्टेक्स को सावधानीपूर्वक ट्रिम करने के लिए माइक्रोडिसेक्शन कैंची और फोर्सप्स का उपयोग करें। विच्छेदित ऊतक टुकड़े के भीतर, तीन खंड कॉर्टेक्स, बाहरी मज्जा और आंतरिक मज्जा स्पष्ट रूप से दिखाई देने चाहिए (चित्रा 2 सी)।नोट: प्रभावी ऊतक लाइसिस के लिए पर्याप्त बफर मात्रा सुनिश्चित करने और सीडीएनए पुस्तकालयों में परिवेश पृष्ठभूमि आरएनए को कम करने के लिए स्लाइस 2 मिमी की मोटाई या 20 मिलीग्राम के वजन से अधिक नहीं होना चाहिए। परिवेश आरएनए अनुक्रम क्षमता को बर्बाद करता है, क्योंकि यह एकल नाभिक से जुड़ा नहीं है। गुर्दे के टुकड़े को पहले से तैयार आरएनए स्थिरीकरण समाधान में स्थानांतरित करें और आरएनए क्षरण से बचने के लिए 4 डिग्री सेल्सियस पर 24 घंटे के लिए इनक्यूबेट करें। 24 घंटे के बाद, आरएनए स्थिरीकरण समाधान को हटा दें और आगे के उपयोग तक ऊतक को -80 डिग्री सेल्सियस पर स्टोर करें। टिशू पेपर के साथ अतिरिक्त घोल को सावधानीपूर्वक हटा दें। 2. नाभिक अलगाव सफाई और तैयारी के कदम 70% इथेनॉल और आरएनएस परिशोधन समाधान के साथ बेंचटॉप और पिपेट को साफ करें। एक गोल तल, 2 एमएल ऊतक ग्राइंडर ट्यूब को साफ करें और आरनेस परिशोधन समाधान के साथ पेस्टल ए और बी का मिलान करें, इसके बाद 70% इथेनॉल और आरएनएस-मुक्त पानी (प्रति नमूना 1 ग्राइंडर ट्यूब और मूसल सेट) लें। इसे पूरी तरह सूखने दें। सेंट्रीफ्यूज को 4 डिग्री सेल्सियस तक प्री-कूल करें। लेबल और प्री-कूल तीन 15 एमएल संग्रह ट्यूब, एक 1.5 एमएल संग्रह ट्यूब, एक 5 एमएल फ्लोरेसेंस-एक्टिवेटेड सेल सॉर्टिंग (एफएसीएस) संग्रह ट्यूब, और बर्फ पर प्रत्येक नमूने के लिए एक सूखी ग्राइंडर ट्यूब। बफर तैयारी निर्माता के निर्देशों के अनुसार ग्रीन-ब्लैक स्पष्ट समाधान में पुनर्गठित होने तक राइबोन्यूक्लियोसाइड-वैनाडिल कॉम्प्लेक्स स्टॉक समाधान को 65 डिग्री सेल्सियस तक गर्म करें। 11 तालिका 1 ए में वर्णित 4% गोजातीय सीरम एल्बुमिन (बीएसए) युक्त 1x PBS तैयार करें। इसके अतिरिक्त, 0.04% बीएसए (तालिका 1 बी) के साथ 1x PBS तैयार करें। दोनों समाधानों को 0.2 μm सर्फेक्टेंट-मुक्त सेल्यूलोज एसीटेट (SFCA) झिल्ली सिरिंज फ़िल्टर का उपयोग करके फ़िल्टर करें और आगे के उपयोग तक बर्फ पर रखें। नाभिक लाइसिस बफर 1 (एनएलबी 1, तालिका 1 सी) तैयार करें। नाभिक लाइसिस बफर 2 (एनएलबी 2, तालिका 1 डी) के लिए 4 एमएल ईजेड लाइसिस बफर और नाभिक निलंबन बफर (एनएसबी, तालिका 1 ई) के लिए 0.04% बीएसए / पीबीएस के 2 एमएल को 15 एमएल ट्यूबों में जोड़ें। प्रोटोकॉल में नीचे दिए गए अनुसार उपयोग से पहले सीधे एनएलबी 2 और एनएसबी में आरएनएस अवरोधक समाधान जोड़ें। आगे के उपयोग तक बर्फ पर रखें। 10% सुक्रोज (सुक्रोज ग्रेडिएंट बफर, टेबल 1 एफ) के साथ ईजेड लाइसिस बफर तैयार करें। अच्छी तरह से मिलाएं और बफर को 0.2 μm SFCA झिल्ली सिरिंज फ़िल्टर का उपयोग करके एक ताजा 15 एमएल ट्यूब में फ़िल्टर करें। आगे के उपयोग तक बर्फ पर रखें। ऊतक समरूपीकरण और कोशिका लाइसिसनोट: आरएनए क्षरण को कम करने के लिए, सभी चरणों को बर्फ पर किया जाता है। ग्राइंडर ट्यूब, पेट्री डिश, और सभी बफर को पहले से ठंडा करने की आवश्यकता होती है। सभी पुन: निलंबन चरण नाभिक निलंबन को सावधानीपूर्वक पाइप करके किए जाते हैं। कतरनी बलों और नाभिक को नुकसान से बचने के लिए नमूने को भंवर न करें।जमे हुए गुर्दे का टुकड़ा लें और इसे बर्फ पर 60 मिमी पॉलीस्टाइनिन पेट्री डिश में स्थानांतरित करें जिसमें 1 एमएल एनएलबी 1 हो। रेजर ब्लेड या स्केलपेल (चित्रा 3 ए) का उपयोग करके ऊतक को अच्छी तरह से कीमा करें। 1 एमएल पिपेट टिप की नोक को काट लें और कीमा ऊतक और बफर को ग्राइंडर ट्यूब में स्थानांतरित करें। सभी ऊतक टुकड़ों को स्थानांतरित करना सुनिश्चित करें। यदि आवश्यक हो, तो पेट्री डिश को बफर के साथ 5-10 बार धोएं। ग्राइंडर ट्यूब में धीरे-धीरे मूसल ए, 25 गुना ऊपर और नीचे ले जाकर बर्फ पर निलंबन को समरूप करें। तेजी से आंदोलन के कारण हवा के बुलबुले से बचें (चित्रा 3 बी)। होमोजेनेट को एक प्री-कूल्ड 15 एमएल संग्रह ट्यूब में 100 μm छन्नी के माध्यम से पास करें और फ़िल्टर को एनएलबी 1 के एक और 1 एमएल के साथ धो लें। ग्राइंडर ट्यूब को ठंडे ईजेड नाभिक लाइसिस बफर के साथ धोएं और बफर को छोड़ दें। होमोजेनेट को वापस ग्राइंडर ट्यूब में स्थानांतरित करें और ग्राइंडर ट्यूब में धीरे-धीरे मूसल बी, 15 गुना ऊपर और नीचे ले जाकर बर्फ पर निलंबन को समरूप करें। तेजी से आंदोलन के कारण हवा के बुलबुले से बचें (चित्रा 3 सी)। होमोजेनेट को प्री-कूल्ड 15 एमएल संग्रह ट्यूब में स्थानांतरित करें। ग्राइंडर ट्यूब को एनएलबी 1 के एक और 2 एमएल के साथ धो लें और सभी ऊतक टुकड़ों को संग्रह ट्यूब में स्थानांतरित करना सुनिश्चित करें। कोशिकाओं को अलग करने के लिए बर्फ पर 5 मिनट के लिए होमोजेनेट (4 एमएल की कुल मात्रा) को इनक्यूबेट करें। नाभिक शुद्धिकरण होमोजेनेट को 40 μm छन्नी के माध्यम से एक पूर्व-ठंडा 15 एमएल संग्रह ट्यूब में पास करें। एक स्विंगिंग-बकेट रोटर के साथ सेंट्रीफ्यूज में 5 मिनट के लिए 500 x g पर 4 डिग्री सेल्सियस पर संग्रह ट्यूब को घुमाएं। इस बीच, एनएलबी 2 (तालिका 1 डी) में आरएनएस अवरोधक समाधान जोड़ें। गोली को परेशान किए बिना सतह पर तैरने वाले को हटा दें। एनएलबी 2 के 4 एमएल में गोली को सावधानीपूर्वक पुन: निलंबित करें। सुक्रोज ग्रेडिएंट बफर के 1 एमएल कुशन के साथ निलंबन को सावधानीपूर्वक कम करें। एक झूलते-बाल्टी रोटर के साथ सेंट्रीफ्यूज में 500 x g पर 5 मिनट के लिए 4 डिग्री सेल्सियस पर सेंट्रीफ्यूज। इस बीच, एनएसबी (तालिका 1 ई) में आरएनएस अवरोधक समाधान जोड़ें। सेंट्रीफ्यूजेशन के बाद, धीरे से सेंट्रीफ्यूज से संग्रह ट्यूब को हटा दें और संग्रह ट्यूब को संभालते समय दो परतों को परेशान न करने के लिए सावधान रहें। सेल मलबा दो परतों के बीच दिखाई देता है। मलबे से शुरू होने वाले सतह पर तैरने वाले को सावधानीपूर्वक हटा दें। नाभिक गोली को परेशान किए बिना शेष सतह पर तैरने वाले को हटा दें और एनएसबी के 1 एमएल में गोली को सावधानीपूर्वक पुन: निलंबित करें।नोट: पुन: निलंबन मात्रा अलगाव के लिए उपयोग किए जाने वाले ऊतक की मात्रा और अंतिम सेंट्रीफ्यूजेशन चरण के बाद प्राप्त गोली के आकार पर निर्भर करती है। मात्रा को नाभिक की अपेक्षित संख्या के अनुकूल बनाने की आवश्यकता हो सकती है। होमोजेनेट को 20 μm छन्नी के माध्यम से प्री-कूल्ड 5 एमएल एफएसीएस संग्रह ट्यूब में पास करें। 3. नाभिक छंटाई एफएसीएस संग्रह ट्यूब में होमोजेनेट में 2 μM की अंतिम सांद्रता के लिए NSB के प्रति mL 4′, 6-डायमिडिनो-2-फेनिलइंडोल (DAPI) का 20 μL जोड़ें और सावधानी से मिलाएं। बर्फ पर 5 मिनट के लिए इनक्यूबेट करें। 4% बीएसए /1x PBS के 20 μL के साथ प्री-कूल्ड 1.5 mL संग्रह ट्यूब तैयार करें और 1 U/μL की अंतिम सांद्रता में 0.5 μL RNase अवरोधक समाधान जोड़ें। तुरंत छंटाई के लिए आगे बढ़ें। सेल सॉर्टर का उपयोग करके नाभिक को क्रमबद्ध करें।सॉर्टर में एफएसीएस संग्रह ट्यूब डालने से पहले नाभिक निलंबन को संक्षेप में मिलाएं। मलबे और समुच्चय को बाहर करने के लिए फॉरवर्ड स्कैटर (एफएससी) और साइड स्कैटर (एसएससी) के आधार पर पहला गेट पी 1 सेट करें (चित्रा 4 ए)। खाली या क्षतिग्रस्त नाभिक और गुणकों को बाहर करने के लिए, DAPI-क्षेत्र बनाम DAPI-ऊंचाई (DAPI-A बनाम DAPI-H) (चित्रा 4B) के आधार पर एक अगला द्वार सेट करें। एकल नाभिक को 1.5 एमएल संग्रह ट्यूब में क्रमबद्ध करें जिसमें 4% बीएसए / 1 एक्स पीबीएस होता है, जिसमें 3.2 में तैयार 1 यू / 1 एल आरएनएस अवरोधक समाधान होता है। 4. गुणवत्ता नियंत्रण प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोप के तहत या कम से कम दो स्वतंत्र गणनाओं में एक स्वचालित गिनती कक्ष में अंतिम नाभिक एकाग्रता को मापें और निलंबन गुणवत्ता का आकलन करें (चित्रा 5)।नोट: इष्टतम सांद्रता 700 – 1,200 नाभिक / μL के बीच होती है। 700 नाभिक / μL जैसी कम सेल सांद्रता बेहतर हो सकती है क्योंकि परिणामस्वरूप सीडीएनए पुस्तकालयों में कम परिवेश पृष्ठभूमि आरएनए होता है (प्रतिलेख व्यक्तिगत नाभिक से जुड़े नहीं होते हैं)। अनुक्रमित एकल नाभिक की वांछित वसूली के लिए नाभिक निलंबन की आवश्यक मात्रा की गणना करें। नाभिक एकत्रीकरण और आरएनए क्षरण से बचने के लिए, पुस्तकालय की तैयारी के लिए तुरंत आगे बढ़ें।

Representative Results

हमारे प्रोटोकॉल के प्रदर्शन को निर्धारित करने के लिए, हमने पुस्तकालय की तैयारी के लिए 10x जीनोमिक्स क्रोमियम सिंगल सेल 3 ‘जीन एक्सप्रेशन किट v3.1 का उपयोग किया और सेरेट पैकेज12,13 के साथ snRNA-seq डेटा का विश्लेषण किया। चित्रा 6 एक प्रतिनिधि एसएनआरएनए-सेक लाइब्रेरी से परिणाम दिखाता है। हमारे नाभिक की गुणवत्ता का आकलन करने के लिए, हमने माइटोकॉन्ड्रियल रीड (चित्रा 6 ए) के अंश द्वारा रंगीन प्रतिलेख (अद्वितीय आणविक पहचानकर्ताओं (यूएमआई) द्वारा परिभाषित) की संख्या के खिलाफ जीन की संख्या को प्लॉट किया। अच्छी गुणवत्ता के नाभिक आम तौर पर पढ़ने की उच्च संख्या दिखाते हैं, यूएमआई और जीन संख्याओं को सहसंबंधित करते हैं, और कम माइटोकॉन्ड्रियल पढ़ने वाले अंश। बाद के विश्लेषण के लिए, 500 से कम या 4000 से अधिक गिने गए जीन वाले नाभिक, या माइटोकॉन्ड्रियल आरएनए के 5% से अधिक को बाहर रखा गया था (एन = 828)। केवल न्यूनतम तीन नाभिकों में व्यक्त जीन शामिल किए गए थे। हमने शेष 6,000 नाभिकों में कुल मिलाकर लगभग 20,000 जीनों का पता लगाया, जिसमें 1,600 औसत जीन और प्रति नाभिक 2,800 औसत यूएमआई थे (चित्रा 6 बी)। क्लस्टरिंग अत्यधिक परिवर्तनशील जीन पर आधारित था। हमने कुल 18 समूहों की पहचान की। सेल पहचान ज्ञात मार्कर जीन (नहीं दिखाया गया) के आधार पर एनोटेट की गई थी। एक सेल प्रकार के उपसमूहों को एक क्लस्टर में संक्षेपित किया गया था जिसके परिणामस्वरूप कुल 11 अलग-अलग सेल प्रकार थे: पोडोसाइट्स, समीपस्थ नलिका (पीटी), पतला अंग (टीएएल), मोटी आरोही अंग (टीएएल), डिस्टल जटिल नलिका (डीसीटी), कनेक्टिंग नलिका (सीएनटी), डक्ट प्रिंसिपल और इंटरकैलेटेड कोशिकाओं (सीडी-पीसी, ए-आईसी, बी-आईसी), पेल्विस के गहरे मज्जा उपकला (डीएमईपी) और एंडोथेलियम। क्लस्टर-समृद्ध मार्करों के जीन अभिव्यक्ति पैटर्न को एक डॉट प्लॉट (चित्रा 6 सी) और सेल प्रकार के समूहों में टी-वितरित स्टोकेस्टिक पड़ोसी एम्बेडिंग (टी-एसएनई) प्लॉट (चित्रा 6 डी) में देखा गया था। हमारे नमूने में सेल प्रकार वितरण का आकलन करने के लिए, प्रत्येक सेल प्रकार के प्रतिशत की गणना की गई थी (चित्रा 6 ई) और पीटी से टीएएल के अनुपात को निर्धारित करने के लिए उपयोग किया गया था। पीटी मुख्य रूप से किडनी कॉर्टेक्स में स्थित है और अक्सर किडनी सिंगल-सेल डेटासेट में अधिक प्रतिनिधित्व करता है क्योंकि पीटी की कोशिकाओं को विघटित करना आसान होता है और पूरे गुर्दे के नमूनों में अत्यधिक प्रचुर मात्रा में होता है। दूसरी ओर टीएएल पूरे बाहरी मज्जा14 में फैला हुआ है। इस प्रकार, पीटी और टीएएल अंशों का अनुपात किडनी सिंगल-सेल डेटासेट में मज्जा सेल प्रकारों के संवर्धन के लिए एक अच्छा उपाय का प्रतिनिधित्व करता है। सामान्य तौर पर, एकल-कोशिका पूरे किडनी डेटासेट में पीटी / टीएएल अनुपात 8 (कोल्ड-प्रोटीज-उपचारित पूरे गुर्दे के ऊतकों से अप्रकाशित डेटा) से लेकर एंजाइमेटिक रूप से अलग ऊतक 10,14,15 के लिए 45 तक था। यहां प्रस्तुत एसएनआरएनए-सेक डेटासेट में हम 2 के पीटी / टीएएल अनुपात तक पहुंचने में सक्षम थे। यह परिणाम दिखाता है कि एसएनआरएनए-सेक के साथ संयुक्त ऊतक विच्छेदन के दौरान अतिरिक्त कॉर्टेक्स को हटाने से गुर्दे की कोशिका प्रकार के प्रतिनिधित्व में काफी सुधार होता है। चित्रा 1: वर्कफ़्लो का योजनाबद्ध अवलोकन। प्रोटोकॉल में चार प्रमुख चरण होते हैं जिनमें नाभिक अलगाव, नाभिक छंटाई और अंतिम शुद्धता और एकाग्रता मूल्यांकन के बाद ऊतक विच्छेदन शामिल होता है। स्केल पट्टी = 100 μm. कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें. चित्र 2: गुर्दे विच्छेदन और ऊतक तैयार करना। (ए) विच्छेदित पूरे गुर्दे की प्रतिनिधि छवि। डॉटेड लाइनें सभी वृक्क कोशिका प्रकारों के प्रतिनिधित्व के साथ 1-2 मिमी का मध्य टुकड़ा प्राप्त करने के लिए आवश्यक कटौती को इंगित करती हैं। (बी) प्राप्त मध्य स्लाइस की प्रतिनिधि छवि। बिंदीदार रेखाएं साइड से कॉर्टेक्स ट्रिमिंग के लिए कट का संकेत देती हैं। (सी) छंटनी किए गए कॉर्टेक्स के साथ केंद्रीय गुर्दे के टुकड़े की प्रतिनिधि छवि। कॉर्टेक्स (सी), बाहरी मज्जा (ओएम) और आंतरिक मज्जा (आईएम) स्पष्ट रूप से दिखाई देते हैं। स्केल बार = 500 μm. कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्र 3: ऊतक समरूपीकरण और नाभिक शुद्धिकरण। (ए) प्रतिनिधि छवि पर्याप्त रूप से कीमा वाले गुर्दे के ऊतकों को दिखाती है। स्केल बार = 500 μm. (B) पहले समरूपीकरण चरण के बाद होमोजेनेट (मूसल ए के साथ 25 स्ट्रोक, 2 एमएल ग्राइंडर ट्यूब)। (सी) दूसरे होमोजेनाइजेशन चरण के बाद होमोजेनेट (मूसल बी के साथ 15 स्ट्रोक, 2 एमएल ग्राइंडर ट्यूब)। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्रा 4: नाभिक छंटाई के लिए गेटिंग रणनीति। (ए) मलबे और समुच्चय को बाहर करने के लिए फॉरवर्ड स्कैटर (एफएससी) बनाम साइड स्कैटर (एसएससी) के आधार पर पहला गेट पी 1 सेट किया गया था। (ख) डीएपीआई-एरिया (डीएपीआई-ए) बनाम डीएपीआई-हाइट (डीएपीआई-एच) पर आधारित एक बाद के गेट में खाली या क्षतिग्रस्त नाभिक और गुणक शामिल नहीं थे। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। चित्रा 5: नाभिक सॉर्टिंग से पहले और बाद में नाभिक निलंबन। (ए, सी) DAPI-सना हुआ नाभिक (नीला)। (बी, डी) DAPI और Brightfield (BF) चैनल का ओवरले। छंटाई (ऊपरी पैनल) से पहले नाभिक निलंबन में सेल मलबे और समुच्चय (सफेद तीर के साथ लेबल) होते हैं। छंटाई (निचले पैनल) के बाद नाभिक निलंबन बहुत साफ दिखाई देता है। DAPI-दाग वाले नाभिक के उदाहरणों को काले तीर के साथ लेबल किया जाता है। अच्छी गुणवत्ता वाले नाभिक एक बरकरार झिल्ली के साथ गोल और चिकने दिखाई देते हैं और अच्छी तरह से अलग हो जाते हैं, जबकि खराब गुणवत्ता वाले नाभिक झुर्रीदार दिखाई देते हैं और परमाणु झिल्ली का नुकसान दिखाते हैं। स्केल पट्टी = 250 μm. कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें. चित्रा 6: एक प्रतिनिधि एसएनआरएनए-सेक डेटासेट का गुणवत्ता नियंत्रण और विश्लेषण। (ए) माइटोकॉन्ड्रियल रीड (percent.mt) के अंश द्वारा रंगीन अद्वितीय आणविक पहचानकर्ताओं (एनयूएमआई) की संख्या के खिलाफ जीन (एनजीन) की संख्या। कम गुणवत्ता वाले नाभिक प्लॉट (एन = 828) के निचले बाएं चतुर्थांश के अनुरूप हैं और बाद के विश्लेषण से बाहर रखे गए थे। (बी) 6,177 नाभिक (> 500 जीन) का प्रतिनिधित्व करने वाले एसएनआरएनए-सेक डेटासेट में प्रति नाभिक एनजीन और एनयूएमआई का वितरण और औसत पाया गया। पुस्तकालयों को प्रति नाभिक ~ 8,200 मैप किए गए रीड की औसत गहराई तक अनुक्रमित किया गया था। (सी) डॉट प्लॉट अलग-अलग सेल प्रकारों (वाई-अक्ष) के लिए क्लस्टर-समृद्ध मार्करों (एक्स-अक्ष) के जीन अभिव्यक्ति पैटर्न को दर्शाता है। डॉट का आकार संकेतित जीन को व्यक्त करने वाली कोशिकाओं के अनुपात से मेल खाता है। रंग औसत अभिव्यक्ति से मेल खाता है। (डी) पहचाने गए सेल प्रकारों के टी-वितरित स्टोकेस्टिक पड़ोसी एम्बेडिंग (टी-एसएनई) प्लॉट। (ई) एसएनआरएनए-सेक डेटासेट में सेल प्रकार वितरण। पीटी, समीपस्थ नलिका; टीएल, पतला अंग; टीएएल, मोटा आरोही अंग, डीसीटी, डिस्टल जटिल नलिका; सीएनटी, नलिका को जोड़ना; सीडी-पीसी, वाहिनी प्रमुख कोशिकाओं को इकट्ठा करना; ए-आईसी, टाइप ए इंटरकैलेटेड कोशिकाएं; बी-आईसी, टाइप बी इंटरकैलेटेड कोशिकाएं; डीएमईपी, श्रोणि का गहरा मज्जा उपकला। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें। अभिकर्मक (दूसरे तत्वों की खोज में सहायक पदार्थ) अंतिम एकाग्रता आयतन (mL) (ए) 4% बीएसए / फॉस्फेट-बफर्ड सेलाइन (पीबीएस) 10% बोवाइन एल्ब्यूमिन के साथ 4% 2 पीबीएस (फॉस्फेट-बफर्ड सलाइन) कैल्शियम या मैग्नीशियम के बिना 1 एक्स – 3 (बी) 0.04% बीएसए / 4% बीएसए / 0.04 % 0.5 पीबीएस (फॉस्फेट-बफर्ड सलाइन) कैल्शियम या मैग्नीशियम के बिना 1 एक्स – 49.5 (सी) नाभिक लाइसिस बफर 1 (एनएलबी 1) परमाणु ईजेड लाइसिस बफर – 4 राइबोलॉक आरएनएस इनहिबिटर (40 यू / 1 U/μL 0.1 राइबोन्यूक्लिओसाइड-वैनाडिल कॉम्प्लेक्स (200 एमएम) 10 mM 0.2 (डी) नाभिक लाइसिस बफर 2 (एनएलबी 2) परमाणु ईजेड लाइसिस बफर – 4 राइबोलॉक आरएनएस इनहिबिटर (40 यू / 1 U/μL 0.1 (ई) नाभिक निलंबन बफर (एनएसबी) 0.04% बीएसए / – 2 राइबोलॉक आरएनएस इनहिबिटर (40 यू / 1 U/μL 0.05 (च) सुक्रोज ग्रेडिएंट बफर (10% सुक्रोज) वजन 1 ग्राम सुक्रोज परमाणु ईजेड लाइसिस बफर के 6 मिलीलीटर में घोलें परमाणु ईजेड लाइसिस बफर के साथ 10 एमएल तक भरें एक ताजा ट्यूब में 0.2 μm सिरिंज फ़िल्टर के माध्यम से फ़िल्टर करें तालिका 1: समाधान व्यंजनों: (ए) 4% बीएसए / 1 एक्स पीबीएस की तैयारी। 0.2 μm SFCA झिल्ली सिरिंज फ़िल्टर का उपयोग करके फ़िल्टर करें और उपयोग होने तक बर्फ पर रखें। (बी) 0.04% बीएसए / 1 एक्स पीबीएस की तैयारी। 0.2 μm SFCA झिल्ली सिरिंज फ़िल्टर का उपयोग करके फ़िल्टर करें और उपयोग होने तक बर्फ पर रखें। (सी) नाभिक लाइसिस बफर 1 (एनएलबी 1) की तैयारी। प्रति नमूना इंगित वॉल्यूम प्रदान किए जाते हैं। उपयोग होने तक बर्फ पर रखें। (डी) नाभिक लाइसिस बफर 2 (एनएलबी 2) की तैयारी। प्रति नमूना इंगित वॉल्यूम प्रदान किए जाते हैं। प्रोटोकॉल में उल्लिखित उपयोग से पहले सीधे एनएलबी 2 में राइबोलॉक आरएनएस इनहिबिटर जोड़ें। उपयोग होने तक बर्फ पर रखें। (ङ) नाभिक निलंबन बफर (एनएसबी) तैयार करना। प्रति नमूना इंगित वॉल्यूम प्रदान किए जाते हैं। प्रोटोकॉल में उल्लिखित उपयोग से पहले सीधे एनएसबी में राइबोलॉक आरएनएस इनहिबिटर जोड़ें। उपयोग होने तक बर्फ पर रखें। (च) सुक्रोज ग्रेडिएंट बफर तैयार करना। 0.2 μm SFCA झिल्ली सिरिंज फ़िल्टर का उपयोग करके फ़िल्टर करें और उपयोग होने तक बर्फ पर रखें।

Discussion

सिंगल-सेल ट्रांसस्क्रिप्टोमिक्स गुर्दे के शरीर विज्ञान और बीमारी में सेल प्रकार-विशिष्ट जीन अभिव्यक्ति की समझ को आगे बढ़ाते हैं। यहां, हमने एक मानकीकृत तरीके से एसएनआरएनए-सेक के लिए जमे हुए माउस किडनी ऊतक से उच्च गुणवत्ता वाले एकल नाभिक को अलग करने के लिए एक सरल और प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य विधि प्रदान की।

एसएनआरएनए-सेक के लिए, पुस्तकालय उत्पादन के लिए इनपुट के रूप में उच्च गुणवत्ता वाले नाभिक का उपयोग करना और ऊतक प्रसंस्करण के दौरान आरएनए क्षरण से बचने के लिए महत्वपूर्ण है। इसलिए, विच्छेदन के तुरंत बाद आरएनए स्थिरीकरण समाधान में ऊतक के टुकड़ों का इनक्यूबेशन सेलुलर आरएनए की रक्षा और स्थिर करने के लिए आवश्यक है और अनिश्चित काल तक – 80 डिग्री सेल्सियस पर नमूने स्टोर करने की अनुमति देता है। इस प्रोटोकॉल को आरएनए स्थिरीकरण समाधान उपचार के बिना जमे हुए ऊतक पर लागू करते समय, जैसे अभिलेखीय सामग्री, एक परीक्षण रन की आवश्यकता होती है, और आरएनए गुणवत्ता का मूल्यांकन करने की आवश्यकता होती है क्योंकि हमने आरएनए स्थिरीकरण समाधान में पूर्व इनक्यूबेशन के बिना स्नैप-जमे हुए ऊतक में आरएनए अखंडता का एक महत्वपूर्ण नुकसान देखा।

सामान्य तौर पर, बरकरार, एकल नाभिक की वसूली को अधिकतम करने के लिए उचित नमूना हैंडलिंग महत्वपूर्ण है। कतरनी तनाव और शारीरिक क्षति से बचने के लिए सभी पुन: निलंबन चरणों को सावधानीपूर्वक पाइपिंग द्वारा किया जाना चाहिए। अंतिम नाभिक पुन: निलंबन और नाभिक छंटाई के लिए बफर में नाभिक हानि और एकत्रीकरण से बचने के लिए बीएसए होना चाहिए।

इस प्रोटोकॉल में बफर वॉल्यूम बहुत छोटे ऊतक नमूने (~ 15 मिलीग्राम) के लिए अनुकूलित हैं। उच्च गुणवत्ता वाले निलंबन उत्पन्न करने के लिए पूर्ण सेल लाइसिस और पर्याप्त धुलाई सुनिश्चित करना महत्वपूर्ण है। बड़े ऊतक ब्लॉक या पूरे गुर्दे के नमूने के परिणामस्वरूप अत्यधिक नाभिक सांद्रता होगी जो झुरमुट और एकत्रीकरण, परिवेश आरएनए की उच्च प्रचुरता और समग्र खराब निलंबन गुणवत्ता का कारण बनती है। यदि बड़े नमूने या अन्य ऊतक संसाधित किए जाते हैं, तो न्यूनतम परिवेश आरएनए स्तरों के लिए इष्टतम बफर वॉल्यूम निर्धारित करने के लिए परीक्षण रन करने की अत्यधिक अनुशंसा की जाती है। नाभिक और आरएनए गुणवत्ता और सांद्रता की सावधानीपूर्वक जांच करने की आवश्यकता है क्योंकि ओवरलोडिंग के परिणामस्वरूप समग्र खराब प्रदर्शन होता है।

इसके अलावा, बड़ी मात्रा में सेल मलबे, जिससे परिवेश आरएनए के उच्च स्तर एकल नाभिक से जुड़े नहीं होते हैं, अनुक्रमण परिणामों को नकारात्मक रूप से प्रभावित करते हैं। सुक्रोज कुशन के माध्यम से सेंट्रीफ्यूजेशन द्वारा नाभिक निलंबन का स्पष्टीकरण कुछ हद तक इस समस्या को कम करता है, लेकिन यह प्रतिरक्षा कोशिकाओं में मौजूद घने, छोटे नाभिक के खिलाफ काउंटर चयन करके सेल प्रकार के प्रतिनिधित्व में पूर्वाग्रह भी पैदा करसकता है। यदि यह चिंता का विषय है, तो सुक्रोज ढाल को छोड़ दिया जाना चाहिए। इसके विपरीत, हमने पाया कि डीएपीआई धुंधला होने पर आधारित फ्लो साइटोमेट्री उच्च गुणवत्ता वाले एकल नाभिक निलंबन का उत्पादन करने के लिए सेल मलबे की मात्रा को कम करने के लिए महत्वपूर्ण थी।

एकल-कोशिका दृष्टिकोण 8 की तुलना में एकल नाभिक के अलगाव के काफी फायदेहैं। यह ठीक से जमे हुए ऊतक के साथ संगत है, ऊतक संग्रह को अधिक लचीला बनाता है, और एंजाइम-आधारित ऊतक पृथक्करण की आवश्यकता को दरकिनार करता है, जो ट्रांसक्रिप्शनल तनाव प्रतिक्रियाओं को पेश कर सकता है 6,17. इसके अलावा, यह पृथक्करण पूर्वाग्रह को दूर करता है जो गुर्दे के कॉर्टेक्स के आसानी से अलग होने योग्य सेल प्रकारों के चयन का पक्ष लेता है, जिससे कुछ एंजाइम-आधारितदृष्टिकोणों 5,6,10 में मज्जा सेल प्रकारों का कम प्रतिनिधित्व हो सकता है।

पूरे गुर्दे के ऊतकों के बजाय एक केंद्रीय गुर्दे के टुकड़े का उपयोग करना संसाधनों को बचाता है और प्रचुर मात्रा में सेल प्रकारों के अतिप्रतिनिधित्व के लिए सही करता है जैसा कि पहलेवर्णित है। हालांकि, माउस मॉडल या फेनोटाइप की जांच के आधार पर, एक मध्य स्लाइस के बजाय पूरे गुर्दे के नमूने का उपयोग करना फायदेमंद हो सकता है। पूरे गुर्दे के नमूने सच्चे सेल अनुपात, या पूरे गुर्दे में होने वाले परिवर्तनों का अधिक प्रतिनिधि हो सकते हैं, जबकि एक छंटनी मध्य टुकड़ा मज्जा फेनोटाइप के लिए फायदेमंद साबित हुआ या जब नमूना सामग्री सीमित थी। इसलिए, यह निर्णय अत्यधिक उपयोगकर्ता-विशिष्ट है और इसे सावधानीपूर्वक माना जाना चाहिए।

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम तकनीकी सहायता के लिए हेल्महोल्ट्ज़ एसोसिएशन, बर्लिन में मैक्स डेलब्रुक सेंटर फॉर मॉलिक्यूलर मेडिसिन में वैज्ञानिक जीनोमिक्स प्लेटफॉर्म को धन्यवाद देते हैं।

जेएल और केएमएसओ को जर्मन रिसर्च फाउंडेशन (डीएफजी) रिसर्च ट्रेनिंग ग्रुप जीआरके 2318 और रिसर्च यूनिट फॉर 2841 द्वारा समर्थित किया गया था। केएमएसओ को सहयोगी अनुसंधान अनुदान 1365 द्वारा समर्थित किया गया था। एबी को एनआर को दिए गए डीएफजी के गॉटफ्रीड विल्हेम लीबनिज़ पुरस्कार से वित्त पोषण द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

Cell sorter For fluorescence-activated cell sorting (FACS); e.g. BD FACSAria Cell Sorter.
Centrifuge 5810 R Eppendorf 5811000015
Countess Cell Counting Chamber Slides Invitrogen C10228
Countess II FL Automated Cell Counter Invitrogen AMQAF1000 Needs to contain DAPI light cube to count nuclei. Alternatively, nuclei can be counted manually under fluorescence microscope.
4′,6-Diamidino-2-phenyl-indol-dihydrochlorid (DAPI) Biotrend 40043/b Stock solution prepared with a concentration of 100 µM. Used for nuclei staining in a final concentration of 2 µM.
D(+)-Sucrose ≥99.9%, ultrapure DNAse-, RNAse-free VWR 0335-500G
DNA LoBind Microcentrifuge Tubes (1.5 mL) Eppendorf 22431021
Ethanol, 70 %
FACS tubes pluriSelect 43-10100-46
KIMBLE Dounce tissue grinder set 2 mL complete Sigma-Aldrich D8938-1SET
Minisart Syringe Filters 0.2 µm Sartorius 16534-GUK
Nuclease-free Water Invitrogen AM9937
Nuclei EZ Prep Nuclei Isolation Kit Sigma-Aldrich NUC-101 Nuclei EZ Lysis Buffer (Product No. N3408) needed for buffer preparation.
PBS (Phosphate-Buffered Saline) 1X without calcium or magnesium Corning 21-040-CV
Petri dishes, polystyrene 60 mm Sigma-Aldrich P5481
Phosphate-Buffered Saline (PBS) with 10% Bovine Albumin Sigma-Aldrich SRE0036
pluriStrainer Mini 100 µm pluriSelect 43-10100-46
pluriStrainer Mini 20 µm pluriSelect 43-10020-40
pluriStrainer Mini 40 µm pluriSelect 43-10040-40
Polystyrene Centrifuge Tube (15 mL) Falcon 352099
Razor blades
RiboLock RNase Inhibitor (40 U/µL) Thermo Fisher EO0384
Ribonucleoside-vanadyl complex New England Biolabs S1402S Follow manufacturer's instructions (https://international.neb.com/products/s1402-ribonucleoside-vanadyl-complex#Product%20Information). Upon use the 200 mM stock solution is reconstituted to a green-black clear solution by incubating at 65 °C.
RNAlater Stabilization Solution Invitrogen AM7020
RNase AWAY Fisher Scientific 11952385

Referências

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Citar este artigo
Leiz, J., Hinze, C., Boltengagen, A., Braeuning, C., Kocks, C., Rajewsky, N., Schmidt-Ott, K. M. Nuclei Isolation from Adult Mouse Kidney for Single-Nucleus RNA-Sequencing. J. Vis. Exp. (175), e62901, doi:10.3791/62901 (2021).

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