Summary

Måling av mitokondrie substrat flux i rekombinante perfringolysin O-permeabiliserte celler

Published: August 13, 2021
doi:

Summary

I dette arbeidet beskriver vi en modifisert protokoll for å teste mitokondrie substratfluks ved hjelp av rekombinant perfringolysin O i kombinasjon med mikroplatebasert respirometri. Med denne protokollen viser vi hvordan metformin påvirker mitokondrie respirasjon av to forskjellige tumorcellelinjer.

Abstract

Mitokondrie substratflux er en kjennetegn ved hver celletype, og endringer i komponentene som transportører, kanaler eller enzymer er involvert i patogenesen av flere sykdommer. Mitokondrie substrat flux kan studeres ved hjelp av intakte celler, permeabiliserte celler eller isolert mitokondrier. Undersøkelse av intakte celler støter på flere problemer på grunn av samtidig oksidasjon av forskjellige substrater. Dessuten inneholder flere celletyper interne lagre av forskjellige substrater som kompliserer resultattolkning. Metoder som mitokondrieisolasjon eller bruk av permeabiliserende midler er ikke lett reproduserbare. Det er problematisk å isolere rene mitokondrier med intakte membraner i tilstrekkelige mengder fra små prøver. Bruk av ikke-selektive permeabilisatorer forårsaker ulike grader av uunngåelig mitokondriemembranskade. Rekombinant perfringolysin O (rPFO) ble tilbudt som en mer passende permeabilizer, takket være dens evne til selektivt å permeabilisere plasmamembran uten å påvirke mitokondrieintegriteten. Når det brukes i kombinasjon med mikroplate respirometri, tillater det å teste fluxen til flere mitokondrie substrater med nok replikeringer i ett eksperiment mens du bruker et minimalt antall celler. I dette arbeidet beskriver protokollen en metode for å sammenligne mitokondrie substratfluks av to forskjellige cellulære fenotyper eller genotyper og kan tilpasses for å teste ulike mitokondrie substrater eller inhibitorer.

Introduction

Mikroplatebasert respirometri har revolusjonert mitokondrieforskning ved å muliggjøre studiet av cellulær respirasjon av en liten prøvestørrelse1. Cellulær respirasjon betraktes generelt som en indikator på mitokondriefunksjon eller ‘dysfunksjon’, til tross for at mitokondrieområdet av funksjoner strekker seg utover energiproduksjonen2. Under aerobe forhold trekker mitokondrier ut energien som er lagret i forskjellige substrater ved å bryte ned og konvertere disse substratene til metabolske mellomprodukter som kan drive sitronsyresyklusen3 (figur 1). Den kontinuerlige strømmen av substrater er avgjørende for strømmen av sitronsyresyklusen for å generere høyenergi “elektrondonorer”, som leverer elektroner til elektrontransportkjeden som genererer en protongradient over den indre mitokondriemembranen, slik at ATP-syntase kan fosforylere ADP til ATP4. Derfor må en eksperimentell design for å analyse mitokondrie respirasjon inkludere prøven natur (intakte celler, permeabiliserte celler, eller isolerte mitokondrier) og mitokondrie substrater.

Celler holder en butikk med innfødte substrater5, og mitokondrier oksiderer flere typer substrater samtidig6, noe som kompliserer tolkningen av resultater oppnådd fra eksperimenter utført på intakte celler. En vanlig tilnærming for å undersøke mitokondrie evne til å oksidere et valgt substrat er å isolere mitokondrier eller permeabilisere de undersøkte cellene5. Selv om isolerte mitokondrier er ideelle for kvantitative studier, er isolasjonsprosessen arbeidskrevende. Det står overfor tekniske vanskeligheter som behovet for stor prøvestørrelse, renhet av utbyttet og reproduserbarhet av teknikken5. Permeabiliserte celler tilbyr en løsning for ulempene ved mitokondrieisolasjon; Rutinemessige permeabiliserende midler av vaskemiddel natur er imidlertid ikke spesifikke og kan skade mitokondriemembraner5.

Rekombinant perfringolysin O (rPFO) ble tilbudt som et selektivt plasmamembranpermeabiliserende middel7, og det ble brukt vellykket i kombinasjon med en ekstracellulær fluksanalysator i flere studier7,8,9,10. Vi har modifisert en protokoll ved hjelp av rPFO for å screene mitokondrie substrat flux ved hjelp av XFe96 ekstracellulær flux analysator. I denne protokollen sammenlignes fire forskjellige substratoksidasjonsveier i to cellulære fenotyper mens de har tilstrekkelige replikeringer og riktig kontroll for hvert testet materiale.

Protocol

1. En dag før analysen Fremstilling av reagenser og substrater. Mitokondrieanalyseløsning (MAS): Klargjør lagerløsninger for alle reagenser som beskrevet i tabell 1. Varm opp lagrene av mannitol og sukrose til 37 °C for å oppløses helt. Bland reagensene for å forberede 2x MAS, og varm deretter blandingen til 37 °C. Juster pH med 5N KOH til 7,4 (~7 ml), tilsett deretter vann for å bringe volumet opp til 1 L. Filtersterilisere og lagre aliquots ved -20 °C til måledagen. …

Representative Results

Begynn med å normalisere resultatene til det andre målet for baseline respirasjon for å vise verdier som oksygenforbruksrateprosent (OCR%). Resultatene av analysen vises i Figur 5, Figur 6, Figur 7 og Figur 8. Det er viktig å tildele de riktige bakgrunnsbrønnene for hver gruppe og inaktivere bakgrunnsbrønnene til andre grupper. Figur 5</stron…

Discussion

Denne protokollen er en endring av tidligere publiserte studier7,8,9,10 og produktbrukerhåndboken. I motsetning til produsentens protokoll brukes 2x MAS i stedet for 3x MAS, siden 2× MAS er lettere å oppløse og danner ikke nedbør etter frysing. Frosne 2x MAS aliquots kan lagres opptil seks måneder og vise konsistente resultater. En annen forskjell er å inkludere ADP i komponentene i 2x M…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker de ansatte ved Institutt for fysiologi ved Det medisinske fakultet i Hradec Králové og Institutt for patofysiologi ved Det tredje fakultet for medisin for hjelp med kjemikalier og prøvepreparering. Dette arbeidet ble støttet av Charles Universitys tilskuddsprogrammer PROGRES Q40/02, Det tsjekkiske helsedepartementet gir NU21-01-00259, tsjekkisk science foundation grant 18-10144 og INOMED prosjekt CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_069/0010046 finansiert av Departementet for utdanning, ungdom og sport i Tsjekkia og av EU.

Materials

Adinosine 5′ -diphosphate monopotassium salt dihydrate Merck A5285 store at -20 °C
Antimycin A Merck A8674 store at -20 °C
Bovine serum albumin Merck A3803 store at 2 – 8 °C
Carbonyl cyanide 4-(trifluoromethoxy)phenylhydrazone Merck C2920 store at -20 °C
Dimethyl sulfoxide Merck D8418 store at RT
D-Mannitol Merck 63559 store at RT
Dulbecco's phosphate buffered saline Gibco 14190-144 store at RT
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid Merck 03777 store at RT
HEPES Merck H7523 store at RT
L(-)Malic acid disodium salt Merck M9138 store at RT
L-Glutamic acid sodium salt hydrate Merck G5889 store at RT
Magnissium chloride hexahydrate Merck M2670 store at RT
Oligomycin Merck O4876 store at -20 °C
Palmitoyl-DL-carnitine chloride Merck P4509 store at -20 °C
Potassium hydroxide Merck 484016 store at RT
Potassium phosphate monobasic Merck P5655 store at RT
Rotenone Merck R8875 store at -20 °C
Seahorse Wave Desktop Software Agilent technologies Download from www.agilent.com
Seahorse XFe96 Analyzer Agilent technologies
Seahorse XFe96 FluxPak Agilent technologies 102416-100 XFe96 sensor cartridges and XF96 cell culture microplates
Sodium pyruvate Merck P2256 store at 2 – 8 °C
Sodium succinate dibasic hexahydrate Merck S2378 store at RT
Sucrose Merck S7903 store at RT
Water Merck W3500 store at RT
XF calibrant Agilent technologies 100840-000 store at RT
XF Plasma membrane permeabilizer Agilent technologies 102504-100 Recombinant perfringolysin O (rPFO) – Aliquot and store at -20 °C

Referências

  1. Gerencser, A. A., et al. Quantitative microplate-based respirometry with correction for oxygen diffusion. Analytical Chemistry. 81 (16), 6868-6878 (2009).
  2. Murphy, E., et al. Mitochondrial function, biology, and role in disease: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation Research. 118 (12), 1960-1991 (2016).
  3. Owen, O. E., Kalhan, S. C., Hanson, R. W. The key role of anaplerosis and cataplerosis for citric acid cycle function. Journal of Biological Chemistry. 277 (34), 30409-30412 (2002).
  4. Nicholls, D. G., Ferguson, S. J. . Bioenergetics 3. , (2002).
  5. Brand, M. D., Nicholls, D. G. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochemical Journal. 435 (2), 297-312 (2011).
  6. Staňková, P., et al. Adaptation of mitochondrial substrate flux in a mouse model of nonalcoholic fatty liver disease. International Journal of Molecular Sciences. 21 (3), 1101 (2020).
  7. Salabei, J. K., Gibb, A. A., Hill, B. G. Comprehensive measurement of respiratory activity in permeabilized cells using extracellular flux analysis. Nature Protocols. 9 (2), 421-438 (2014).
  8. Divakaruni, A. S., et al. Thiazolidinediones are acute, specific inhibitors of the mitochondrial pyruvate carrier. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (14), 5422-5427 (2011).
  9. Divakaruni, A. S., Rogers, G. W., Murphy, A. N. Measuring mitochondrial function in permeabilized cells using the seahorse XF analyzer or a Clark-type oxygen electrode. Current Protocols in Toxicology. 60, 1-16 (2014).
  10. Elkalaf, M., Tůma, P., Weiszenstein, M., Polák, J., Trnka, J. Mitochondrial probe Methyltriphenylphosphonium (TPMP) inhibits the Krebs cycle enzyme 2-Oxoglutarate dehydrogenase. PLoS One. 11 (8), 0161413 (2016).
  11. Rogers, G. W., et al. High throughput microplate respiratory measurements using minimal quantities of isolated mitochondria. PLoS One. 6 (7), 21746 (2011).
check_url/pt/62902?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Elkalaf, M., Vaněčková, K., Staňková, P., Červinková, Z., Polák, J., Kučera, O. Measuring Mitochondrial Substrate Flux in Recombinant Perfringolysin O-Permeabilized Cells. J. Vis. Exp. (174), e62902, doi:10.3791/62902 (2021).

View Video