Summary

Hale Vene Transeksjon Blødning Modell i Fullt Bedøvet Hemofili En Mus

Published: September 30, 2021
doi:

Summary

Den raffinerte hale vene transeksjon (TVT) blødning modell i bedøvede mus er en sensitiv in vivo metode for vurdering av hemofil blødning. Denne optimaliserte TVT blødningsmodellen bruker blodtap og blødningstid som endepunkter, raffinerer andre modeller og unngår døden som endepunkt.

Abstract

Haleblødningsmodeller er viktige verktøy i hemofili forskning, spesielt for vurdering av prokoagulant effekter. Hale vene transeksjon (TVT) overlevelsesmodell har blitt foretrukket i mange settinger på grunn av følsomhet for klinisk relevante doser av FVIII, mens andre etablerte modeller, som hale klipp modellen, krever høyere nivåer av prokoagulant forbindelser. For å unngå å bruke overlevelse som endepunkt, utviklet vi en TVT-modell som etablerte blodtap og blødningstid som endepunkter og full anestesi under hele eksperimentet. Kort sagt er bedøvede mus plassert med halen nedsenket i temperert saltvann (37 °C) og dosert med testforbindelsen i høyre sidehaleåre. Etter 5 min blir venstre lateral hale vene transektert ved hjelp av en malguide, halen returneres til saltvannsoppløsningen, og alle blødningsepisoder overvåkes og registreres i 40 minutter mens du samler blodet. Hvis ingen blødning oppstår på 10 min, 20 min eller 30 min etter skade, blir blodpropp utfordret forsiktig ved å tørke kuttet to ganger med en våt gasbindpinne. Etter 40 min kvantifiseres blodtapet av mengden hemoglobin blødde inn i saltvannsoppløsningen. Denne raske og relativt enkle prosedyren resulterer i konsistente og reproduserbare blødninger. Sammenlignet med TVT-overlevelsesmodellen bruker den en mer human prosedyre uten å gå på kompromiss med følsomheten for farmakologisk inngrep. Videre er det mulig å bruke begge kjønn, og redusere det totale antall dyr som må avles, i samsvar med prinsippene til 3R. En potensiell begrensning i blødningsmodeller er den stokastiske naturen til hemostase, noe som kan redusere reproduserbarheten til modellen. For å motvirke dette sikrer manuell blodproppforstyrrelser at blodpropp utfordres under overvåking, og forhindrer at primær (blodplate) hemostase stopper blødningen. Dette tillegget til katalogen over blødningsskademodeller gir et alternativ for å karakterisere prokoagulant effekter på en standardisert og human måte.

Introduction

Dyremodeller er avgjørende for å forstå patogenesen av hemofili og utvikle og teste behandlingsregimer og terapier. Factor VIII knock-out mus (F8-KO) er en mye brukt modell for studiet av hemofili A 1,2. Disse musene rekapitulerer viktige egenskaper ved sykdommen og har blitt mye brukt til utvikling av behandlinger, for eksempel rekombinante FVIII-produkter 3,4,5 og genterapistrategier 6,7.

Det finnes ulike blødningsskademodeller for å evaluere de farmakologiske effektene av forskjellige hemostatiske forbindelser in vivo. En av disse koagulasjonsmodellene er hale vene transeksjon overlevelsesmodell hos mus 8,9,10,11,12,13,14, som måler evnen til hemofile mus til å overleve ekssanguinasjon etter haletranseksjon. Denne metoden ble introdusert for mer enn fire tiår siden15 og brukes fortsatt 9,16,17. Modellen utnytter imidlertid overlevelse som endepunkt og krever observasjon av dyrene over en periode på opptil 24 timer, hvor dyrene er bevisste og dermed kan oppleve smerte og nød.

Blødningsmodeller med kortere varighet og under full anestesi har blitt beskrevet tidligere, for eksempel haleklippmodellen (også kjent som halespissen)8,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28 . Likevel, for en fullstendig normalisering av blodtap etter blødningsutfordringen, krever disse modellene doser av prokoagulantforbindelser (f.eks. FVIII) langt høyere enn de som administreres klinisk29. En annen skademodell under anestesi, vena saphena blødningsmetoden, er følsom for lavere doser av prokoagulantforbindelser30, men krever et høyt nivå av eksperimenteringsintervensjon siden blodproppene må forstyrres ofte (i motsetning til 3 ganger i den presenterte modellen).

Standardisering mot en felles protokoll for å teste nye prokoagulantforbindelser vil i stor grad lette datasammenligning mellom laboratorier 31,32,33. I TVT-modeller er det ennå ikke en felles enighet om studerte endepunkter (blodtap 7,26, blødningstid 9,34 og overlevelsesrate35,36), og eksperimentell lengde varierer mellom studie13.

Vårt primære mål er å beskrive og karakterisere en optimalisert modell med høy reproduserbarhet, muligheten til å studere on-demand samt en profylaktisk behandling, følsomhet for farmakologisk intervensjon tilsvarende overlevelsesmodellen, men likevel ikke bruke død eller nær-døden som endepunkter. For å redusere smerte og nød bør dyrene ikke være bevisste under blødning og et mer etisk endepunkt må implementeres37.

Haleklipsmodeller utføres vanligvis i en av to varianter, enten amputerer spissen av halen, for eksempel amputasjon på 1-5 mm 18,19,20,21,23,24 eller, i en mer alvorlig variant, transektert med en halediameter rundt 1-3 mm 8,22,25 . Dette forårsaker en kombinert arteriovenøs blødning, da laterale og dorsale årer og ventral arterie vanligvis blir kuttet, og generelt, jo større amputasjonen er, jo lavere følsomhet for en prokoagulant forbindelse. Videre, siden halespissen er amputert, blir arteriovenøs skade utsatt uten motstående vev; Dermed er det i det minste i teorien ulikt de vanligste hemofile blødningene.

Som navnet antyder, er bare venen skadet i hale vene transeksjonsmodeller som beskrevet i dette papiret, og dermed resulterer i en utelukkende venøs blødning. Siden fartøyet ikke er helt avskåret, forventes skaden å være mindre enn i amputasjonsmodellene, og vevet rundt kuttet, som en blodpropp kan holde seg til, beholdes. I tillegg er det lavere blodtrykk i venen i motsetning til arterien. Disse faktorene bidrar til økt følsomhet i forhold til amputasjonsmodeller, slik at normalisering av blødning kan oppnås med klinisk relevante doser av erstatningsterapi, for eksempel med rFVIII i hemofili A, som er nyttig for å evaluere omfanget og holdbarheten av effekter av prokoagulant behandling 26,38,39.

Protocol

Alle prosedyrer som er beskrevet i denne protokollen er godkjent av Dyrevelferdsorganet i Novo Nordisk A/S, og det danske dyreforsøksinspektøratet, Det danske mat-, landbruks- og fiskeridepartementet. Den optimaliserte 40 minutters metoden inkluderer anestesi og doseringstid i designet (figur 1). Hemofile mus av begge kjønn mellom 10-16 uker er nødvendig for denne prosedyren. 1. Forberedelser før studien Forbered doseringsløsningene i de riktige ko…

Representative Results

For å vurdere anvendelsen av den optimaliserte modellen ble det utført en studie i F8-KO (C57BL genetisk bakgrunn) mus administrert med en kommersielt tilgjengelig rekombinant faktor VIII erstatningsterapi (rFVIII); fire forskjellige doser ble testet: 1 IE/kg, 5 IE/kg, 10 IE/kg og 20 IE/kg. Videre testet vi den tilsvarende kjøretøykontroll (negativ) i F8-KO mus og wild-type (WT) gruppe ved hjelp av C57BL mus som en positiv kontrollgruppe for å vurdere responsområdet i modellen. Etter den…

Discussion

Denne optimaliserte metoden for hale vene transeksjon (TVT) har flere fordeler sammenlignet med TVT overlevelsesmetoden. Dyrene er fullt bedøvet for hele studievarigheten, noe som gjør musehåndtering enklere og øker dyrets velvære. Videre, i motsetning til TVT-overlevelsesmodellen, er det ikke nødvendig med observasjon over natten, og denne optimaliserte modellen gir muligheten til å måle blodtap og observere den nøyaktige blødningstiden over 40 minutter. Også lengre perioder med blødning hos bevisste dyr kan…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esther Bloem og Thomas Nygaard er anerkjent for støtte med målinger av FVIII i plasma. Bo Alsted er anerkjent for å tegne og bearbeide malen og kutte blokker.

Materials

#11 Scalpel blade Swann-Morton 503
15 mL centrifuge tubes Greiner Bio-One, Austria 188271
30 G needles connected to 300 µL precision (insulin) syringes for dosing BD Micro-Fine + U-100 insulin syringe 320830
Advate Takeda, Japan Recombinant factor VIII replacement therapy (rFVIII)
Alcohol pads 70% ethanol Hartmann, Soft-Zellin 999 979
Centrifuge Omnifuge 2.0 RS, Heraus Sepatech
Cutting template (Stainless steel) Self produced, you are welcomed to contact the authors for the exact drawings Supplementary Figure 2: Size specifications: 20 mm x 40 mm x 10 mm (L x B x H). Groove: 3 mm depth and 3 mm width; radius 1.5 mm
Erythrocytes (RBC) lysing solution Lysebio, ABX Diagnostics 906012
Gauze
Haematological analyser Sysmex CT-2000iv
Heating lamp on stand Phillips IR250
Heating pad with thermostat CMA model 150
Hemoglobin standards and controls – 8.81 mmol / l batch dependent HemoCue, Denmark HemoCue calibrator, 707037 Standards and controls are made from 2 different glasses of HemoCue calibrator. The value is determined against the International Reference Method for Hemoglobin (ICSH).
Isofluorane anaesthesia system complete with tubes, masks and induction box Sigma Delta Dameca
Isoflurane Baxter 26675-46-7
Magnifier with lights Eschenbach
Measuring template (Aluminum) Self produced, you are welcomed to contact the authors for the exact drawings Supplementary Figure 1: Size specifications: 20 mm x 40 mm x 10 mm (L x B x H). Groove: 2.5 mm depth and 2.5 mm width; radius 1.25 mm
Micropipettes + tips Finnpipette
Photometer Molecular Devices Corporation, CA, USA SpectraMax 340 photometer
Prism Software GraphPad, San Diego, CA, USA Version 9.0.1
Saline 0.9% NaCl Fresenius Kabi, Sweden 883264
Special tail marker block for TVT tail cut
Tail holder
Vacuum liquid suction Vacusafe comfort, IBS
Waterbath and thermostat TYP 3/8 Julabo

Referências

  1. Bi, L., et al. Targeted disruption of the mouse factor VIII gene produces a model of haemophilia A. Nature Genetics. 10 (1), 119-121 (1995).
  2. Bi, L., et al. Further characterization of factor VIII-deficient mice created by gene targeting: RNA and protein studies. Blood. 88 (9), 3446-3450 (1996).
  3. Stennicke, H. R., et al. A novel B-domain O-glycoPEGylated FVIII (N8-GP) demonstrates full efficacy and prolonged effect in hemophilic mice models. Blood. 121 (11), 2108-2116 (2013).
  4. Shapiro, A. D. Anti-hemophilic factor (recombinant), plasma/albumin-free method (octocog-alpha; ADVATE) in the management of hemophilia A. Vascular Health and Risk Management. 3 (5), 555-565 (2007).
  5. Recht, M., et al. Clinical evaluation of moroctocog alfa (AF-CC), a new generation of B-domain deleted recombinant factor VIII (BDDrFVIII) for treatment of haemophilia A: demonstration of safety, efficacy, and pharmacokinetic equivalence to full-length recombinant factor VIII. Haemophilia. 15 (4), 869-880 (2009).
  6. Miao, C. H., et al. CD4+FOXP3+ regulatory T cells confer long-term regulation of factor VIII-specific immune responses in plasmid-mediated gene therapy-treated hemophilia mice. Blood. 114 (19), 4034-4044 (2009).
  7. Milanov, P., et al. Engineered factor IX variants bypass FVIII and correct hemophilia A phenotype in mice. Blood. 119 (2), 602-611 (2012).
  8. Dumont, J. A., et al. Prolonged activity of a recombinant factor VIII-Fc fusion protein in hemophilia A mice and dogs. Blood. 119 (13), 3024-3030 (2012).
  9. Pan, J., et al. Enhanced efficacy of recombinant FVIII in noncovalent complex with PEGylated liposome in hemophilia A mice. Blood. 114 (13), 2802-2811 (2009).
  10. Liu, T., et al. Improved coagulation in bleeding disorders by Non-Anticoagulant Sulfated Polysaccharides (NASP). Journal of Thrombosis and Haemostasis. 95 (1), 68-76 (2006).
  11. Brooks, A. R., et al. Glycoengineered factor IX variants with improved pharmacokinetics and subcutaneous efficacy. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 11 (9), 1699-1706 (2013).
  12. Baru, M., et al. Factor VIII efficient and specific non-covalent binding to PEGylated liposomes enables prolongation of its circulation time and haemostatic efficacy. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 93 (6), 1061-1068 (2005).
  13. Molina, E. S., Fujita, A., Sogayar, M. C., Demasi, M. A. A quantitative and humane tail bleeding assay for efficacy evaluation of antihaemophilic factors in haemophilia A mice. Haemophilia. 20 (6), 392-398 (2014).
  14. Broze, G. J., Yin, Z. F., Lasky, N. A tail vein bleeding time model and delayed bleeding in hemophiliac mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 85 (4), 747-748 (2001).
  15. Dejana, E., Callioni, A., Quintana, A., de Gaetano, G. Bleeding time in laboratory animals. II – A comparison of different assay conditions in rats. Thrombosis Research. 15 (1-2), 191-197 (1979).
  16. Girard, T. J., Lasky, N. M., Grunz, K., Broze, G. J. Suppressing protein Z-dependent inhibition of factor Xa improves coagulation in hemophilia A. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 17 (1), 149-156 (2019).
  17. Zhang, J. P., et al. Curing hemophilia A by NHEJ-mediated ectopic F8 insertion in the mouse. Genome Biology. 20 (1), 276 (2019).
  18. Sambrano, G. R., Weiss, E. J., Zheng, Y. W., Huang, W., Coughlin, S. R. Role of thrombin signalling in platelets in haemostasis and thrombosis. Nature. 413 (6851), 74-78 (2001).
  19. Tranholm, M., et al. Improved hemostasis with superactive analogs of factor VIIa in a mouse model of hemophilia A. Blood. 102 (10), 3615-3620 (2003).
  20. Mei, B., et al. Rational design of a fully active, long-acting PEGylated factor VIII for hemophilia A treatment. Blood. 116 (2), 270-279 (2010).
  21. Karpf, D. M., et al. Prolonged half-life of glycoPEGylated rFVIIa variants compared to native rFVIIa. Thrombosis Research. 128 (2), 191-195 (2011).
  22. Ivanciu, L., et al. A zymogen-like factor Xa variant corrects the coagulation defect in hemophilia. Nature Biotechnology. 29 (11), 1028-1033 (2011).
  23. Ostergaard, H., et al. Prolonged half-life and preserved enzymatic properties of factor IX selectively PEGylated on native N-glycans in the activation peptide. Blood. 118 (8), 2333-2341 (2011).
  24. Maroney, S. A., et al. Absence of hematopoietic tissue factor pathway inhibitor mitigates bleeding in mice with hemophilia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3927-3931 (2012).
  25. Holmberg, H. L., Lauritzen, B., Tranholm, M., Ezban, M. Faster onset of effect and greater efficacy of NN1731 compared with rFVIIa, aPCC and FVIII in tail bleeding in hemophilic mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 7 (9), 1517-1522 (2009).
  26. Johansen, P. B., Tranholm, M., Haaning, J., Knudsen, T. Development of a tail vein transection bleeding model in fully anaesthetized haemophilia A mice – characterization of two novel FVIII molecules. Haemophilia. 22 (4), 625-631 (2016).
  27. Ferrière, S., et al. A hemophilia A mouse model for the in vivo assessment of emicizumab function. Blood. 136 (6), 740-748 (2020).
  28. Elm, T., et al. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of a new recombinant FVIII (N8) in haemophilia A mice. Haemophilia. 18 (1), 139-145 (2012).
  29. Björkman, S. Prophylactic dosing of factor VIII and factor IX from a clinical pharmacokinetic perspective. Haemophilia. 9, 101-108 (2003).
  30. Pastoft, A. E., et al. A sensitive venous bleeding model in haemophilia A mice: effects of two recombinant FVIII products (N8 and Advate). Haemophilia. 18 (5), 782-788 (2012).
  31. Saito, M. S., et al. New approaches in tail-bleeding assay in mice: improving an important method for designing new anti-thrombotic agents. International Journal of Experimental Pathology. 97 (3), 285-292 (2016).
  32. Liu, Y., Jennings, N. L., Dart, A. M., Du, X. J. Standardizing a simpler, more sensitive and accurate tail bleeding assay in mice. World Journal of Experimental Medicine. 2 (2), 30-36 (2012).
  33. Greene, T. K., et al. Towards a standardization of the murine tail bleeding model. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 8 (12), 2820-2822 (2010).
  34. Cerullo, V., et al. Correction of murine hemophilia A and immunological differences of factor VIII variants delivered by helper-dependent adenoviral vectors. Molecular Therapy. 15 (12), 2080-2087 (2007).
  35. Shi, Q., et al. Factor VIII ectopically targeted to platelets is therapeutic in hemophilia A with high-titer inhibitory antibodies. Journal of Clinical Investigation. 116 (7), 1974-1982 (2006).
  36. Parker, E. T., Lollar, P. A quantitative measure of the efficacy of factor VIII in hemophilia A mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 89 (3), 480-485 (2003).
  37. Stokes, W. S. Reducing Unrelieved Pain and Distress in Laboratory Animals Using Humane Endpoints. ILAR Journal. 41 (2), 59-61 (2000).
  38. Stagaard, R., et al. Abrogating fibrinolysis does not improve bleeding or rFVIIa/rFVIII treatment in a non-mucosal venous injury model in haemophilic rodents. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 16 (7), 1369-1382 (2018).
  39. Stagaard, R., et al. Absence of functional compensation between coagulation factor VIII and plasminogen in double-knockout mice. Blood Advances. 2 (22), 3126-3136 (2018).
  40. Bolton-Maggs, P. H., Pasi, K. J. Haemophilias A and B. Lancet. 361 (9371), 1801-1809 (2003).
  41. Lloyd Jones, M., Wight, J., Paisley, S., Knight, C. Control of bleeding in patients with haemophilia A with inhibitors: a systematic review. Haemophilia. 9 (4), 464-520 (2003).
  42. Sixma, J. J., vanden Berg, A. The haemostatic plug in haemophilia A: a morphological study of haemostatic plug formation in bleeding time skin wounds of patients with severe haemophilia A. British Journal of Haematology. 58 (4), 741-753 (1984).
  43. Proulle, V., et al. Recombinant activated factor VII-induced correction of bleeding tendency in genetically engineered von Willebrand disease type 2B mice evaluated using new tail transection bleeding models. International Society on Thrombosis and Haemostasis Congress. , (2017).
  44. Rode, F., et al. Preclinical pharmacokinetics and biodistribution of subcutaneously administered glycoPEGylated recombinant factor VIII (N8-GP) and development of a human pharmacokinetic prediction model. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 16 (6), 1141-1152 (2018).
  45. Holmberg, H., et al. GlycoPEGylated rFVIIa (N7-GP) has a prolonged hemostatic effect in hemophilic mice compared with rFVIIa. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 9 (5), 1070-1072 (2011).
  46. Kawecki, C., et al. Posters Abstracts – Thrombin-mediated Activation of Factor VIII is Insufficient to Produce All Necessary Cofactor Activity in vivo. Research and Practice in Thrombosis and Haemostasis. 3, 1 (2019).
  47. Johansen, P., et al. In vivo effect of recombinant FVIIA (NOVOSEVEN®) and RFIX in a refined tail vein transection bleeding model in mice with haemophilia A and B: PO147-MON. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 13, (2015).
  48. Enoksson, M., et al. Enhanced potency of recombinant factor VIIa with increased affinity to activated platelets. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 18 (1), 104-113 (2020).
check_url/pt/62952?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Carol Illa, A., Baumgarten, S., Danielsen, D., Larsen, K., Elm, T., Johansen, P. B., Knudsen, T., Lauritzen, B., Tranholm, M., Ley, C. D. Tail Vein Transection Bleeding Model in Fully Anesthetized Hemophilia A Mice. J. Vis. Exp. (175), e62952, doi:10.3791/62952 (2021).

View Video