Summary

Studie av experimentella organdonationsmodeller för lungtransplantation

Published: March 15, 2024
doi:

Summary

Den aktuella studien visar etableringen av tre olika modeller för lungdonation (donation efter hjärndöd, donation efter cirkulationsdöd och donation efter hemorragisk chock). Den jämför de inflammatoriska processer och patologiska störningar som är förknippade med dessa händelser.

Abstract

Experimentella modeller är viktiga verktyg för att förstå de etiologiska fenomen som är involverade i olika patofysiologiska händelser. I detta sammanhang används olika djurmodeller för att studera de faktorer som utlöser patofysiologin vid primär transplantatdysfunktion efter transplantation för att utvärdera potentiella behandlingar. För närvarande kan vi dela in experimentella donationsmodeller i två stora grupper: donation efter hjärndöd och donation efter cirkulationsstopp. Dessutom bör de skadliga effekter som är förknippade med hemorragisk chock beaktas när man överväger djurmodeller för organdonation. Här beskriver vi etableringen av tre olika lungdonationsmodeller (donation efter hjärndöd, donation efter cirkulationsdöd och donation efter hemorragisk chock) och jämför de inflammatoriska processer och patologiska störningar som är förknippade med dessa händelser. Målet är att förse det vetenskapliga samfundet med tillförlitliga djurmodeller för lungdonation för att studera de associerade patologiska mekanismerna och söka efter nya terapeutiska mål för att optimera antalet livskraftiga transplantat för transplantation.

Introduction

Klinisk relevans
Organtransplantation är ett väletablerat behandlingsalternativ för flera allvarliga patologier. Under de senaste åren har många framsteg gjorts inom de kliniska och experimentella områdena organtransplantation, såsom ökad kunskap om patofysiologin vid primär transplantatdysfunktion (PGD) och framsteg inom områdena intensivvård, immunologi och farmakologi 1,2,3. Trots de framsteg som gjorts och förbättringarna av kvaliteten på de kirurgiska och farmakologiska ingreppen är förhållandet mellan antalet tillgängliga organ och antalet mottagare på väntelistan fortfarande en av de största utmaningarna 2,4. I detta avseende har den vetenskapliga litteraturen föreslagit djurmodeller för att studera terapier som kan tillämpas på organdonatorer för att behandla och/eller bevara organen fram till tidpunkten för transplantation 5,6,7,8.

Genom att efterlikna de olika händelser som observerats i klinisk praxis gör djurmodeller det möjligt att studera de associerade patologiska mekanismerna och deras respektive terapeutiska metoder. Den experimentella induktionen av dessa händelser har, i de flesta isolerade fall, genererat experimentella modeller för organ- och vävnadsdonation som är allmänt undersökta i den vetenskapliga litteraturen om organtransplantation 6,7,8,9. Dessa studier använder olika metodologiska strategier, såsom de som inducerar hjärndöd (BD), hemorragisk chock (HS) och cirkulationsdöd (CD), eftersom dessa händelser är förknippade med olika skadliga processer som äventyrar funktionaliteten hos de donerade organen och vävnaderna.

Hjärndöd (BD)
BD är förknippat med en serie händelser som leder till en gradvis försämring av olika system. Det inträffar vanligtvis när en akut eller gradvis ökning av intrakraniellt tryck (ICP) inträffar på grund av hjärntrauma eller blödning. Denna ökning av ICP främjar en ökning av blodtrycket i ett försök att upprätthålla ett stabilt cerebralt blodflöde i en process som kallas Cushings reflex10,11. Dessa akuta förändringar kan leda till kardiovaskulära, endokrina och neurologiska dysfunktioner som äventyrar kvantiteten och kvaliteten på de donerade organen, förutom att de påverkar morbiditeten och mortaliteten efter transplantation 10,11,12,13.

Hemorragisk chock (HS)
HS förknippas i sin tur ofta med organdonatorer, eftersom de flesta av dem är offer för trauma med betydande förlust av blodvolym. Vissa organ, såsom lungor och hjärta, är särskilt sårbara för HS på grund av hypovolemi och därav följande vävnadshypoperfusion14. HS inducerar lungskada genom ökad kapillärpermeabilitet, ödem och infiltration av inflammatoriska celler, mekanismer som tillsammans äventyrar gasutbytet och leder till progressiv organförsämring, vilket följaktligen får donationsprocessen att spåra ur 6,14.

Cirkulationsdöd (CD)
Användningen av post-CD-donation har ökat exponentiellt i stora världscentra, vilket har bidragit till ökningen av antalet insamlade organ. Organ som tillvaratagits från post-CD-donatorer är sårbara för effekterna av varm ischemi, som inträffar efter ett intervall med låg (agonisk fas) eller ingen blodtillförsel (asystolisk fas)8,15. Hypoperfusion eller frånvaro av blodflöde kommer att leda till vävnadshypoxi i samband med plötslig förlust av ATP och ackumulering av metaboliska toxiner i vävnader15. Trots att dessa organ för närvarande används för transplantation i klinisk praxis kvarstår många tvivel om hur användningen av dessa organ påverkar kvaliteten på transplantatet efter transplantationen och patienternas överlevnad15. Således ökar också användningen av experimentella modeller för en bättre förståelse av de etiologiska faktorer som är associerade med CD 8,15,16,17.

Experimentella modeller
Det finns olika experimentella modeller för organdonation (BD, HS och CD). Studier fokuserar dock ofta på endast en strategi i taget. Det finns en märkbar lucka i studier som kombinerar eller jämför två eller flera strategier. Dessa modeller är mycket användbara vid utveckling av behandlingar som syftar till att öka antalet donationer och därmed minska väntelistan för potentiella mottagare. De djurarter som används för detta ändamål varierar från studie till studie, där svinmodeller oftare väljs när målet är en mer direkt översättning med mänsklig morfofysiologi och mindre tekniska svårigheter vid det kirurgiska ingreppet på grund av djurets storlek. Trots fördelarna är det förknippat med svinmodellen logistiska svårigheter och höga kostnader. Å andra sidan gynnar den låga kostnaden och möjligheten till biologisk manipulation användningen av gnagarmodeller, vilket gör det möjligt för forskaren att utgå från en tillförlitlig modell för att reproducera och behandla lesioner, samt att integrera den kunskap som förvärvats inom området organtransplantation.

Här presenterar vi en gnagarmodell för hjärndöd, cirkulationsdöd och hemorragisk chockdonation. Vi beskriver inflammatoriska processer och patologiska tillstånd som är förknippade med var och en av dessa modeller.

Protocol

Djurförsöken uppfyllde kraven i den etiska kommittén för användning och skötsel av försöksdjur vid medicinska fakulteten vid universitetet i São Paulo (protokollnummer 112/16). 1. Gruppering av djur Tilldela slumpmässigt tolv hanråttor av Sprague Dawley (250-300 g) till en av tre experimentgrupper (n=4) för att analysera och jämföra effekterna i samband med djurmodellerna. Klassificera djuren i hemorragisk chockgrupp (HS, n=4): djur s…

Representative Results

Genomsnittligt artärtryck (MAP)För att bestämma de hemodynamiska konsekvenserna av BD och HS utvärderades MAP under de 360 minuter som protokollet pågick. Baslinjemätningen samlades in efter avlägsnande av hud och borrning av skallen och före insamling av alikvot av blod för djur som utsatts för BD respektive HS. Före BD- och HS-induktion var baslinje-MAP för de två grupperna liknande (BD: 110,5 ± 6,1 jämfört med HS: 105,8 ± 2,3 mmHg; p=0,5; tvåvägs ANOVA). Efter kateterinsufflatio…

Discussion

Under de senaste åren har det ökande antalet diagnoser av hjärndöd lett till att man blivit den största leverantören av organ och vävnader avsedda för transplantation. Denna tillväxt har dock åtföljts av en otrolig ökning av donationer efter cirkulationsdöd. Trots sin multifaktoriella natur börjar de flesta av de utlösande mekanismerna för dödsorsaker efter eller åtföljer trauma med omfattande förlust av blodinnehåll 4,18.

<p class="jove_…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar FAPESP (Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo) för att ha beviljat ekonomiskt stöd.

Materials

14-gauge angiocath DB 38186714 Orotracheal intubation
2.0-silk Brasuture AA553 Tracheal tube fixation
24-gauge angiocath DB 38181214 Arterial and venous access
4.0-silk Brasuture AA551 Fixation of arterial and venous cannulas
Alcoholic chlorhexidine digluconate solution (2%). Vic Pharma Y/N Asepsis
Trichotomy apparatus Oster Y/N Clipping device
Precision balance Shimadzu D314800051 Analysis of the wet/dry weight ratio
Barbiturate (Thiopental) Cristália 18080003 DC induction
Balloon catheter (Fogarty-4F) Edwards Life Since 120804 BD induction
Neonatal extender Embramed 497267 Used as catheters with the aid of the 24 G angiocath
FlexiVent Scireq 1142254 Analysis of ventilatory parameters
Heparin Blau Farmaceutica SA 7000982-06 Anticoagulant
Isoflurane Cristália 10,29,80,130 Inhalation anesthesia
Micropipette (1000 µL) Eppendorf 347765Z Handling of small- volume liquids
Micropipette (20 µL) Eppendorf H19385F Handling of small- volume liquids
Microscope Zeiss 1601004545 Assistance in the visualization of structures for the surgical procedure
Multiparameter monitor Dixtal 101503775 MAP registration
Motorized drill Midetronic MCA0439 Used to drill a 1 mm caliber borehole
Neubauer chamber Kasvi D15-BL Cell count
Pediatric laryngoscope Oxygel Y/N Assistance during tracheal intubation
Syringe (3 mL) SR 3330N4 Hydration and exsanguination during HS protocol
Pressure transducer Edwards Life Since P23XL MAP registration
Metallic tracheal tube Biomedical 006316/12 Rigid cannula for analysis with the FlexiVent ventilator
Isoflurane vaporizer Harvard Bioscience 1,02,698 Anesthesia system
Mechanical ventilator for small animals (683) Harvard Apparatus MA1 55-0000 Mechanical ventilation
xMap methodology Millipore RECYTMAG-65K-04 Analysis of inflammatory markers

Referências

  1. Paterno, F., et al. Clinical implications of donor warm and cold ischemia time in donor after circulatory death liver transplantation. Liver Transplantation. 25 (9), 1342-1352 (2019).
  2. Yusen, R. D., et al. The registry of the International Society for heart and lung transplantation: thirty-third adult lung and heart-lung transplant report-2016; focus theme: primary diagnostic indications for transplant. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 35 (10), 1170-1184 (2016).
  3. Jung, H. Y., et al. Comparison of transplant outcomes for low-level and standard-level tacrolimus at different time points after kidney transplantation. Journal of Korean Medical Science. 34 (12), e103 (2019).
  4. Cypel, M., et al. The International Society for heart and lung transplantation donation after circulatory death registry report. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 34 (10), 1278-1282 (2015).
  5. Drake, M., Bernard, A., Hessel, E. Brain death. Surgical Clinics of North America. 97 (6), 1255-1273 (2017).
  6. Nepomuceno, N. A., et al. Effect of hypertonic saline in the pretreatment of lung donors with hemorrhagic shock. Journal of Surgical Research. 225, 181-188 (2018).
  7. Menegat, L., et al. Evidence of bone marrow downregulation in brain-dead rats. International Journal of Experimental Pathology. (3), 158-165 (2017).
  8. Iskender, I., et al. Effects of warm versus cold ischemic donor lung preservation on the underlying mechanisms of injuries during ischemia and reperfusion. Transplantation. (5), 760-768 (2018).
  9. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo perfusion prevents lung injury compared to extended cold preservation for transplantation. American Journal of Transplantation. 9 (10), 2262-2269 (2009).
  10. Wauters, S., et al. Evaluating lung injury at increasing time intervals in a murine brain death model. Journal of Surgical Research. 183 (1), 419-426 (2013).
  11. Smith, M. Physiologic changes during brain stem death–lessons for management of the organ donor. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 23 (9), S217-S222 (2004).
  12. Belhaj, A., et al. Mechanical versus humoral determinants of brain death-induced lung injury. PLoS One. 12 (7), e0181899 (2017).
  13. Kolkert, J. L., et al. The gradual onset brain death model: a relevant model to study organ donation and its consequences on the outcome after transplantation. Laboratory Animals. 41 (3), 363-371 (2007).
  14. Rocha-E-Silva, M. Cardiovascular effects of shock and trauma in experimental models: A review. Revista Brasileira de Cirurgia Cardiovascular. 31 (1), 45-51 (2016).
  15. Manara, A. R., Murphy, P. G., O’Callaghan, G. Donation after circulatory death. British Journal of Anaesthesia. 108, i108-i121 (2012).
  16. Dhital, K. K., et al. Adult heart transplantation with distant procurement and ex-vivo preservation of donor hearts after circulatory death: a case series. The Lancet. 385 (9987), 2585-2591 (2015).
  17. Boucek, M. M., et al. Pediatric heart transplantation after declaration of cardiocirculatory death. The New England Journal of Medicine. 359 (7), 709-714 (2008).
  18. Kramer, A. H., Baht, R., Doig, C. J. Time trends in organ donation after neurologic determination of death: a cohort study. CMAJ Open. 5 (1), E19-E27 (2017).
  19. Reino, D. C., et al. Trauma hemorrhagic shock-induced lung injury involves a gut-lymph-induced TLR4 pathway in mice. PLoS One. 6 (8), e14829 (2011).
  20. Pascual, J. L., et al. Hypertonic saline resuscitation of hemorrhagic shock diminishes neutrophil rolling and adherence to endothelium and reduces in vivo vascular leakage. Annals of Surgery. 236 (5), 634-642 (2002).
  21. Van Zanden, J. E., et al. Rat donor lung quality deteriorates more after fast than slow brain death induction. PLoS One. 15 (11), e0242827 (2020).
  22. Shivalkar, B., et al. Variable effects of explosive or gradual increase of intracranial pressure on myocardial structure and function. Circulation. 87 (1), 230-239 (1993).
  23. López-Aguilar, J., et al. Massive brain injury enhances lung damage in an isolated lung model of ventilator-induced lung injury. Critical Care Medicine. 33 (5), 1077-1083 (2005).
  24. Catania, A., Lonati, C., Sordi, A., Gatti, S. Detrimental consequences of brain injury on peripheral cells. Brain, Behavior, and Immunity. 23 (7), 877-884 (2009).
  25. McKeating, E. G., Andrews, P. J., Mascia, L. Leukocyte adhesion molecule profiles and outcome after traumatic brain injury. Acta Neurochirurgica Supplement. 71, 200-202 (1998).
  26. Ott, L., McClain, C. J., Gillespie, M., Young, B. Cytokines and metabolic dysfunction after severe head injury. Journal of Neurotrauma. 11 (5), 447-472 (1994).
  27. Avlonitis, V. S., Wigfield, C. H., Kirby, J. A., Dark, J. H. The hemodynamic mechanisms of lung injury and systemic inflammatory response following brain death in the transplant donor. American Journal of Transplantation. 5 (4), 684-693 (2005).
  28. De Jesus Correia, C., et al. Hypertonic saline reduces cell infiltration into the lungs after brain death in rats. Pulmonary Pharmacology & Therapeutics. 61, 101901 (2020).
  29. Kalsotra, A., Zhao, J., Anakk, S., Dash, P. K., Strobel, H. W. Brain trauma leads to enhanced lung inflammation and injury: evidence for role of P4504Fs in resolution. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 27 (5), 963-974 (2007).
  30. Simas, R., Zanoni, F. L., Silva, R., Moreira, L. F. P. Brain death effects on lung microvasculature in an experimental model of lung donor. Journal Brasileiro de Pneumologia. 46 (2), e20180299 (2020).
  31. Moore, K. The physiological response to hemorrhagic shock. Journal of Emergency Nursing. 40 (6), 629-631 (2014).
  32. Fülöp, A., Turóczi, Z., Garbaisz, D., Harsányi, L., Szijártó, A. Experimental models of hemorrhagic shock: a review. European Surgical Research. 50 (2), 57-70 (2013).
  33. Hillen, G. P., Gaisford, W. D., Jensen, C. G. Pulmonary changes in treated and untreated hemorrhagic shock. I. Early functional and ultrastructural alterations after moderate shock. The American Journal of Surgery. 122 (5), 639-649 (1971).
  34. Sprung, J., Mackenzie, C. F., Green, M. D., O’Dwyer, J., Barnas, G. M. Chest wall and lung mechanics during acute hemorrhage in anesthetized dogs. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 11 (5), 608-612 (1997).
  35. Liu, X., et al. Inhibition of BTK protects lungs from trauma-hemorrhagic shock-induced injury in rats. Molecular Medicine Reports. 16 (1), 192-200 (2017).
  36. Maeshima, K., et al. Prevention of hemorrhagic shock-induced lung injury by heme arginate treatment in rats. Biochemical Pharmacology. 69 (11), 1667-1680 (2005).
  37. Gao, J., et al. Effects of different resuscitation fluids on acute lung injury in a rat model of uncontrolled hemorrhagic shock and infection. The Journal of Trauma. 67 (6), 1213-1219 (2009).
  38. Wohlauer, M., et al. Nebulized hypertonic saline attenuates acute lung injury following trauma and hemorrhagic shock via inhibition of matrix metalloproteinase-13. Critical Care Medicine. 40 (9), 2647-2653 (2012).
  39. Morrissey, P. E., Monaco, A. P. Donation after circulatory death: current practices, ongoing challenges, and potential improvements. Transplantation. 97 (3), 258-264 (2014).
  40. Snell, G. I., Levvey, B. J., Levin, K., Paraskeva, M., Westall, G. Donation after brain death versus donation after circulatory death: lung donor management issues. Seminars in Respiratory and Critical Care Medicine. 39 (2), 138-147 (2018).
  41. Iskender, I., et al. Effects of warm versus cold ischemic donor lung preservation on the underlying mechanisms of injuries during ischemia and reperfusion. Transplantation. 102 (5), 760-768 (2018).
  42. Yamamoto, S., et al. Activations of mitogen-activated protein kinases and regulation of their downstream molecules after rat lung transplantation from donors after cardiac death. Transplantation Proceedings. 43 (10), 3628-3633 (2011).
  43. Kang, C. H., et al. Transcriptional signatures in donor lungs from donation after cardiac death vs after brain death: a functional pathway analysis. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 30 (3), 289-298 (2011).

Play Video

Citar este artigo
Nepomuceno, N. A., Moreira Ruiz, L., Oliveira-Melo, P., Ikeoka Eroles, N. C., Gomes Viana, I., Pêgo-Fernandes, P. M., de Oliveira Braga, K. A. Study of Experimental Organ Donation Models for Lung Transplantation. J. Vis. Exp. (205), e62975, doi:10.3791/62975 (2024).

View Video