Summary

Evaluering av leverglukoseproduksjon i en musmodell av polycystisk eggstokksyndrom

Published: March 05, 2022
doi:

Summary

Denne studien beskriver den direkte målingen av leverglukoseproduksjon i en polycystisk eggstokksyndrommusmodell ved å bruke en stabil isotopisk glukosesporer via haleåre i både faste og glukoserike tilstander i tandem.

Abstract

Polycystisk eggstokk syndrom (PCOS) er en vanlig sykdom som resulterer i forstyrrelser i glukosemetabolismen, som insulinresistens og glukoseintoleranse. Dysregulert glukosemetabolisme er en viktig manifestasjon av sykdommen og er nøkkelen til patogenesen. Derfor er studier som involverer evaluering av glukosemetabolisme i PCOS av største betydning. Svært få studier har kvantifisert leverglukoseproduksjon direkte i PCOS-modeller ved hjelp av ikke-radioaktive glukosesporere. I denne studien diskuterer vi trinnvise instruksjoner for kvantifisering av hastigheten på leverglukoseproduksjon i en PCOS-musemodell ved å måle M+2-berikelse av [6,6-2H2]glukose, en stabil isotopisk glukosesporer, via gasskromatografi – massespektrometri (GCMS). Denne prosedyren innebærer opprettelse av stabil isotopisk glukosesporerløsning, bruk av hale venekateterplassering og infusjon av glukosesporeren i både faste og glukoserike tilstander i samme mus i tandem. Berikelsen av [6,6-2H2]glukose måles ved hjelp av pentaacetatderivat i GCMS. Denne teknikken kan brukes på et bredt spekter av studier som involverer direkte måling av hastigheten på leverglukoseproduksjon.

Introduction

Polycystisk eggstokk syndrom (PCOS) er en vanlig lidelse som forekommer hos 12%-20% av reproduktive kvinner1,2. Det er en kompleks sykdom som resulterer i variable fenotyper som involverer polycystiske eggstokkene, uregelmessige mensen og kliniske eller laboratoriebevis for hyperandrogenemi, og diagnostiseres vanligvis når en kvinne oppfyller to av de tre kriteriene3. Et dominerende aspekt av PCOS, og en nøkkelfaktor i patogenesen, er metabolske derangementer som finnes hos kvinner som har sykdommen. Kvinner med PCOS har høyere forekomster av insulinresistens, glukoseintoleranse, fedme og metabolsk syndrom3,4,5,6. Insulinresistens er ikke bare en manifestasjon av sykdommen, men det antas å bidra til patogenesen ved å forsterke virkningen av luteiniserende hormon i eggstokken og dermed føre til økt androgenproduksjon7,8. Insulinresistens antas å ha flere mulige opprinnelser, men studier tyder på at det kan skyldes unormale mønstre av insulinreseptorsignalering9,10. Studier har evaluert insulinresistens hos PCOS-pasienter ved hjelp av gullstandardteknikken til hyperinsulinemisk-euglykemisk klemme11,12,13,14,15. Kvinner med PCOS, uavhengig av BMI, har høyere nivåer av insulinresistens sammenlignet med kontroller. Insulinkontroll over glukoseproduksjon er svekket i forstyrrelser av insulinresistens som fører til overflødig glukoseproduksjon. For eksempel har diabetikere økt forekomst av glukoneogenese og nedsatt undertrykkelse av glykogenolyse16. Videre er nedsatt undertrykkelse av glukoseproduksjon observert hos diabetikerrotter17. Selv om klemmestudier kan gi en måling av insulinresistens, er det få studier i PCOS som fokuserer på direkte måling av glukoseproduksjon i faste- og fed-tilstander. Dette krever bruk av en ikke-radioaktiv isotopisk glukosesporerinfusjon og måling via massespektrometri.

Dyremodeller har blitt mye brukt i PCOS-forskning. Både magre og overvektige PCOS murine modeller har blitt opprettet ved å administrere androgener prenatalt, prepubertally, eller post-pubertally18. Gnager PCOS-modeller viser også metabolske forskjeller sammenlignet med deres respektive kontroller. Tidligere data fra laboratoriet vårt viste unormale glukosetoleransetester (GTT) i PCOS-musemodeller (mager og overvektig), i samsvar med menneskelig PCOS-litteratur19. Bruk av en mager og overvektig dyremodell tillater videre undersøkelse av metabolske forskjeller. Spesielt tillater denne modellen evaluering av hastigheten på glukoseproduksjon direkte ved hjelp av isotopiske glukosesporere. En av de mest brukte stabile isotopiske glukosesporeren er [6,6-2H2]glukose. [6,6-2H2]glukoseberikelse kan måles ved hjelp av et pentaacetatderivat som tidligere beskrevet20.

I denne studien var vårt mål å måle frekvensen av leverglukoseproduksjon i faste og glukoserik tilstand hos PCOS-mus ved hjelp av isotopisk glukoseinfusjon. Disse teknikkene kan brukes på et bredt spekter av eksperimenter som involverer glukosekinetikk.

Protocol

Alle dyreprosedyrer ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) fra Baylor College of Medicine. 1. Tilberedning av [6,6-2H2]glukose En dag før prosedyren, lag den stabile isotopglukosesporeren i normal saltvann. For dette eksperimentet ble [6,6-2H2]glukose brukt som sporstoff for å måle plasmaglukoseutseende.MERK: I dette eksperimentet ble glukoseproduksjon under faste og glukoserike forhold m…

Representative Results

Ved hjelp av tidligere beskrevne isotopfortynningsligninger ble den totale plasmaglukosehastigheten (glukoseRa) beregnet fra M+2 berikelse av [6,6-2H2]glukose i faste og glukoserike forhold ved hjelp av pentaacetatderivatet21. Under steady-state forhold antas det at utseendet av glukose er lik hastigheten på forsvinning av glukose. I kontrollgruppen var den totale glukoseRa 19,98 ± 2,53 mg/(kg·min) etter 6 timers faste og 25,80 ± 1,76 mg/(kg·min) un…

Discussion

Hyperglykemi og unormal glukosemetabolisme / homeostase er funksjoner i PCOS. Blodsukkernivået opprettholdes av en kombinasjon av glukose fra kosthold og glukoseproduksjon via glykogenolyse og glukonogenese og glykogenese, under kontroll av hormon og enzymer. Leverglukoseproduksjon undertrykkes av tilstedeværelsen av økte sirkulerende glukosenivåer. Ved forstyrrelser i unormal glukosemetabolisme er regulering av undertrykkelse av glukoseproduksjon kompromittert, noe som fører til hyperglykemi. Mens mange st…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av opplæringsstipend fra Institutt for obstetrikk og gynekologi, Baylor College of Medicine (ALG) og R-01 forskningsstipend (Grant # DK114689) for CSB, SC og JM fra National Institutes of Health.

Materials

0.9% sodium chloride solution McKesson 275595
10 mL BD Luer-Lok tip syringe VWR 75846-756 Two syringes per animal (one for isotopic glucose solution, one for glucose-rich isotopic solution)
1-inch clear transpore tape 3M 70200400169
1-inch Labeling tape Fisher GS07F161BA Brand is example
5 mL syringe containing heparanized saline flush McKesson 191-MIH-2235 One can also prepare a heparin flush solution (10 units/mL heparin in 0.9% sodium chloride)
5 mm Medipoint Goldenrod animal lancets Fisher Scientific NC9891620 5 mm if animal is between 2 and 6 months
Acetone Sigma-Aldrich 650501
Advanced hot plate stirrer VWR 97042-602 Brand is example
BD 27 gauge 0.5 inch needles Health Warehouse A283952
BD 30 gauge 0.5 inch needles Medvet 305106
BD Intramedic Polyethylene (PE) tubing 0.28 mm ID x 0.61 mm VWR 63019-004
BD Intramedic Polyethylene (PE) tubing 0.28 mm ID x 0.61 mm VWR 63019-004
Beaker, 1000 mL Any brand
Caging pellets
Clear VOA glass vials with closed-top cap Fisher Scientific 05-719-120 For storage of acetone and blood draw samples
Copper toothless alligator clamp for tourniquet Amazon Any Brand; smooth toothless alligator clips made of solid copper
D-(+)-glucose >99.5% Sigma-Aldrich G8270
D-glucose (6,6-D2, 99%) Cambridge Isotope Laboratories, Inc. DLM-349-PK
Dow Corning silastic tubing 0.3 mm ID x 0.64 mm OD VWR 62999-042
Magnifying glass Amazon Any brand; similar to LANCOSC Magnifying Glass with Light and Stand
Microbalance Ohaus Adventurer Pro AV264C Any similar model with 0.0001g accuracy can be used
Nalgene bottle, 500 mL Sigma-Aldrich B0158-12EA Or any Similar brand; saw in half (including lid) and cut tail-sized notch in the bottom
PHD Ultra multi-syringe pump Harvard Apparatus 70-3024A
Plexiglass sheet Any brand; to stabalize mouse during catheter insertion
Plexiglass sheets and dividers Any brand; used to cage mice during infusion

Referências

  1. March, W. A., et al. The prevalence of polycystic ovary syndrome in a community sample assessed under contrasting diagnostic criteria. Human Reproduction. 25 (2), 544-551 (2009).
  2. Yildiz, B. O., et al. Prevalence, phenotype and cardiometabolic risk of polycystic ovary syndrome under different diagnostic criteria. Human Reproduction. 27 (10), 3067-3073 (2012).
  3. . Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome. Fertility and Sterility. 81 (1), 19-25 (2004).
  4. Goodarzi, M. O., et al. Polycystic ovary syndrome: etiology, pathogenesis and diagnosis. Nature Reviews. Endocrinology. 7 (4), 219-231 (2011).
  5. Azziz, R. Introduction: Determinants of polycystic ovary syndrome. Fertility and Sterility. 106 (1), 4-5 (2016).
  6. Baskind, N. E., Balen, A. H. Hypothalamic-pituitary, ovarian and adrenal contributions to polycystic ovary syndrome. Best Practice and Research. Clinical Obstetrics & Gynaecology. 37, 80-97 (2016).
  7. Burghen, G. A., Givens, J. R., Kitabchi, A. E. Correlation of hyperandrogenism with hyperinsulinism in polycystic ovarian disease. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 50 (1), 113-116 (1980).
  8. Bremer, A. A. Polycystic ovary syndrome in the pediatric population. Metabolic Syndrome and Related Disorders. 8 (5), 375-394 (2010).
  9. Dunaif, A., et al. Excessive insulin receptor serine phosphorylation in cultured fibroblasts and in skeletal muscle. A potential mechanism for insulin resistance in the polycystic ovary syndrome. The Journal of Clinical Investigation. 96 (2), 801-810 (1995).
  10. Højlund, K., et al. Impaired insulin-stimulated phosphorylation of Akt and AS160 in skeletal muscle of women with polycystic ovary syndrome is reversed by pioglitazone treatment. Diabetes. 57 (2), 357-366 (2008).
  11. Moghetti, P., et al. Divergences in insulin resistance between the different phenotypes of the polycystic ovary syndrome. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 98 (4), 628-637 (2013).
  12. Ovalle, F., Azziz, R. Insulin resistance, polycystic ovary syndrome, and type 2 diabetes mellitus. Fertility and Sterility. 77 (6), 1095-1105 (2002).
  13. Dunaif, A., et al. Profound peripheral insulin resistance, independent of obesity, in polycystic ovary syndrome. Diabetes. 38 (9), 1165-1174 (1989).
  14. Hutchison, S. K., et al. Effects of exercise on insulin resistance and body composition in overweight and obese women with and without polycystic ovary syndrome. The Journal of Clinical Endocrinology Metabolism. 96 (1), 48-56 (2011).
  15. Stepto, N. K., et al. Women with polycystic ovary syndrome have intrinsic insulin resistance on euglycaemic-hyperinsulaemic clamp. Human Reproduction. 28 (3), 777-784 (2013).
  16. Basu, R., Schwenk, W. F., Rizza, R. A. Both fasting glucose production and disappearance are abnormal in people with "mild" and "severe" type 2 diabetes. American Journal of Physiology, Endocrinology and Metabolism. 287 (1), 55-62 (2004).
  17. Blesson, C. S., et al. Sex dependent dysregulation of hepatic glucose production in lean Type 2 diabetic rats. Frontiers in Endocrinology. 10, 538 (2019).
  18. Caldwell, A. S., et al. Characterization of reproductive, metabolic, and endocrine features of polycystic ovary syndrome in female hyperandrogenic mouse models. Endocrinology. 155 (8), 3146-3159 (2014).
  19. Chappell, N. R., et al. Prenatal androgen induced lean PCOS impairs mitochondria and mRNA profiles in oocytes. Endocrine Connections. 9 (3), 261-270 (2020).
  20. Chacko, S. K., et al. Measurement of gluconeogenesis using glucose fragments and mass spectrometry after ingestion of deuterium oxide. Journal of Applied Physiology. 104 (4), 944-951 (2008).
  21. Bier, D. M., et al. Measurement of "true" glucose production rates in infancy and childhood with 6,6-dideuteroglucose. Diabetes. 26 (11), 1016-1023 (1977).
  22. Chacko, S. K., Sunehag, A. L. Gluconeogenesis continues in premature infants receiving total parenteral nutrition. Archives of Disease in Childhood. Fetal and Neonatal Edition. 95 (6), 413-418 (2010).
  23. Chacko, S. K., et al. Effect of ghrelin on glucose regulation in mice. American Journal of Physiology, Endocrinology and Metabolism. 302 (9), 1055-1062 (2012).
  24. Marini, J. C., Lee, B., Garlick, P. J. Non-surgical alternatives to invasive procedures in mice. Laboratory Animals. 40 (3), 275-281 (2006).
  25. Jacobs, J. D., Hopper-Borge, E. A. Carotid artery infusions for pharmacokinetic and pharmacodynamic analysis of taxanes in mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (92), e51917 (2014).
  26. Ayala, J. E., et al. Hyperinsulinemic-euglycemic clamps in conscious, unrestrained mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (57), e3188 (2011).
  27. Kmiotek, E. K., Baimel, C., Gill, K. J. Methods for Intravenous Self Administration in a Mouse Model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (70), e3739 (2012).
  28. Marini, J. C., Lee, B., Garlick, P. J. In vivo urea kinetic studies in conscious mice. The Journal of Nutrition. 136 (1), 202-206 (2006).
  29. Choukem, S. -. P., Gautier, J. -. F. How to measure hepatic insulin resistance. Diabetes Metabolism. 34 (6), 664-673 (2008).
check_url/pt/62991?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Gannon, A. L., Chacko, S. K., Didelija, I. C., Marini, J. C., Blesson, C. S. Evaluation of Hepatic Glucose Production in a Polycystic Ovary Syndrome Mouse Model. J. Vis. Exp. (181), e62991, doi:10.3791/62991 (2022).

View Video