Summary

Pericarditis estéril en minicerdos de Aachener como modelo para la miopatía auricular y la fibrilación auricular

Published: September 24, 2021
doi:

Summary

Describimos un modelo de pericarditis estéril en minicerdos para estudiar la miopatía auricular y la fibrilación auricular (FA). Presentamos técnicas quirúrgicas y anestésicas, estrategias de acceso vascular y un protocolo para estudiar la inducibilidad de la FA.

Abstract

La fibrilación auricular (FA) es la arritmia más común causada por la remodelación estructural de las aurículas, también llamada miopatía auricular. Las terapias actuales solo se dirigen a las anomalías eléctricas y no a la miopatía auricular subyacente. Para el desarrollo de nuevas terapias, es necesario un modelo animal grande reproducible de miopatía auricular. Este artículo presenta un modelo de miopatía auricular inducida por pericarditis estéril en minipígs de Aachener. La pericarditis estéril se indujo rociando talco estéril y dejando una capa de gasa estéril sobre la superficie epicárdica auricular. Esto condujo a la inflamación y la fibrosis, dos componentes cruciales de la fisiopatología de la miopatía auricular, lo que hace que las aurículas sean susceptibles a la inducción de la FA. Dos electrodos de marcapasos se colocaron epicárdicamente en cada aurícula y se conectaron a dos marcapasos de diferentes fabricantes. Esta estrategia permitió la estimulación programada auricular no invasiva repetida para determinar la inducibilidad de la FA en puntos de tiempo específicos después de la cirugía. Se utilizaron diferentes protocolos para probar la inducibilidad de la FA. Las ventajas de este modelo son su relevancia clínica, con la inducibilidad de la FA y la rápida inducción de la inflamación y la fibrosis -ambas presentes en la miopatía auricular- y su reproducibilidad. El modelo será útil en el desarrollo de nuevas terapias dirigidas a la miopatía auricular y la FA.

Introduction

La fibrilación auricular (FA) es la arritmia cardíaca más prevalente, lo que lleva a una morbilidad, mortalidad y gastos de atención médica significativos1. En muchos casos, la FA es simplemente el síntoma eléctrico de la miopatía auricular subyacente, que se define por la remodelación estructural, eléctrica, autónoma y contráctil de las aurículas. Esta miopatía auricular puede provocar FA y accidente cerebrovascular 2,3. La mayoría de las terapias solo se dirigen a la remodelación eléctrica, pero no se dirigen a los cambios estructurales subyacentes en las aurículas (inflamación y fibrosis)4,5,6,7. Esta es probablemente una de las razones por las que las terapias actuales son solo marginalmente efectivas, especialmente en la miopatía auricular más avanzada8.

Un modelo animal reproducible es crucial para atacar la inflamación y la fibrosis presentes en la miopatía auricular. Se han desarrollado modelos de taquipaciamiento auricular en varias especies animales grandes 9,10,11,12. En estos modelos, el tejido auricular se estimula continuamente durante largos períodos para inducir cambios eléctricos y, finalmente, estructurales. Las principales desventajas de los modelos de taquipaciamiento son la larga duración antes de que aparezcan los signos estructurales de la miopatía auricular y su relevancia solo para los síndromes clínicos en los que se desarrollan anomalías eléctricas antes de la miopatía auricular. Un riesgo teórico es el fracaso del ritmo-plomo debido a la fibrosis durante el seguimiento prolongado9.

En modelos de pericarditis estéril, se rocía talco estéril sobre la superficie epicárdica de las aurículas para inducir una reacción inflamatoria y fibrótica aguda, dando lugar a miopatía auricular13,14. Los cerdos tienen una anatomía y fisiología cardíaca similar a la de los humanos y, por lo tanto, los modelos porcinos tienen una alta relevancia traslacional. Las ventajas de usar minicerdos son que son más fáciles de manejar debido a su tamaño más pequeño que las cepas de cerdo convencionales y se pueden mantener durante un largo período sin ningún aumento significativo en el peso corporal10. Todas estas razones hacen que la pericarditis estéril en minipigs sea un excelente modelo para la investigación de la miopatía auricular y la fibrilación. Este protocolo y vídeo tienen como objetivo facilitar la configuración de este modelo en diferentes centros de investigación y estandarizar protocolos para estudiar la inducibilidad de la FA.

Protocol

Este protocolo ha sido aprobado por el Comité Ético de la Universidad de Amberes para la Experimentación con Animales (número de caso 2019-29) y sigue las directrices de cuidado animal de la Universidad de Amberes. Diecisiete minipigs Aachener de 6 meses de edad (macho, castrado) que pesan ~ 20 kg fueron seleccionados para este estudio. 1. Medicación y anestesia Premedicación Asegúrese de que los cerdos estén en ayunas durante 12 h, pero con acceso ilimitado al agua.<…

Representative Results

Morbilidad y mortalidad:Cuando comenzamos a desarrollar este modelo de pericarditis estéril en minipigs de Aachener, notamos una mortalidad perioperatoria de 4 de cada 17 cerdos (23,5%): 3 de cada 4 muertes ocurrieron en las primeras 6 cirugías debido a un “efecto de curva de aprendizaje”. Las etiologías fueron las siguientes: 2 cerdos murieron a causa de un paro respiratorio postoperatorio; este problema se resolvió reduciendo la dosis de alfentanilo. Un cerdo murió a causa de la fibrilación v…

Discussion

Un modelo animal grande confiable es un activo importante para el estudio de la miopatía auricular y la FA y el desarrollo de nuevas terapias para la FA. La implantación de derivaciones de marcapasos en el epicardio auricular permitió un seguimiento longitudinal y pruebas electrofisiológicas repetitivas, lo cual es difícil en animales pequeños. Los minipigs son fáciles de manejar, y sus corazones son estructural y fisiológicamente similares al corazón humano10.

<p class="jove_content"…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por una beca de investigación Industrieel OnderzoeksFonds/Strategisch Basisonderzoek (IOF/SBO) (PID34923) y una beca Geconcerteerde Onderzoeksactie (GOA) (PID36444) de la Universidad de Amberes; por una beca de Investigador Clínico Senior (a VFS) y subvenciones de investigación del Fondo para la Investigación Científica de Flandes (números de solicitud 1842219N, G021019N, G0D0520N y G021420N); por una beca de investigación de ERA.Net RUS Plus (2018, Project Consortium 278); por una subvención Vlaamse Interuniversitaire Raad/Interuniversitair Bijzonder OnderzoeksFonds (VLIR/iBOF) (20-VLIR-iBOF-027). Agradecemos a las firmas Abbott y Boston Scientific por patrocinar una gran parte de los líderes de marcapasos y a las firmas, Medtronic y Biotronik, por el préstamo de un programador de marcapasos. Agradecemos al personal de animales de la instalación de animales de la Universidad de Amberes por su excelente cuidado de los animales.

Materials

Aachener minipig, 6-months old, male, castrated, weight 15-25 kg Carfil
Anesthesia and preparation
ECG electrodes
Endotracheal tube 6.5 mm ID Covidien 115-65OR
External cardioverter-defibrillator Innomed Cardio-aid 200B
Heating pad OK. OUB 60321
Intravenous catheter 22 GA, 1 Inch BD 381323
Laryngoscope blade size 4 Miller SUS426601
Monitor GE Medical systems 2600040-003
Respirator Datex-Ohmeda 1009-9000-000
Shaver Aesculap GT 104 / REF 985203
Syringe driver pump Fresenius Kabi 082470
Arterial and central venous line placement
3-lumen central venous catheterization set, 7 French, 16 cm, 0.032 Inch guide Arrow medical EU-22703-EN
Arteral catheter 3 French, 8 cm Vygon 1,15,090
Caresite Luer access device B. Braun 415122-01
Fluids: IV bags of Plasmalyte, Glucose 5%, NaCl 0.9% (500 mL or 1000 mL)
heparinized saline
Needles: 18 Ga / 40 mm and 22 Ga / 40 mm
Pressure monitoring set, 195 cm Edwards Lifesciences T005021M
Pressure tubing 180 cm Edwards Lifesciences 50P172
suture with needle
Syringes Luerlok: 2 mL, 5 mL, 10 mL, 20 mL, 50 mL
Ultrasound gel Zealand coating 446-1
Ultrasound with vascular probe Philips healthcare EPIQ 7C / REF BZE1723
Surgical set
Blunt-tip surgical scissors Martin 11-934-25
60 degrees curved Debakey forceps Aesculap FB403
Anatomical forceps AS 13-102-16
Debakey forceps Geister 10-0634
Electrocautery module Alsa Alsatom SU 140/D MPC
Holders for stainless steel wire COBE 013-123
Mosquito Leibinger 32-01008
Needledriver, fine Delacroix-Chevalier 50302-21
Needledriver, normal Aesculap BM 77
Rib spreader Martin 24-178-01
Scalpel Swann-Morton 0511 no. 24
Scissors for stainless steel wire Jakobi 411830
Spreaders AS 16-058-00
Sternum saw Eure-Power 5000020
Sternum saw blade MicroAire ZR-032M
Surgical consumables
Disinfectant: iodine, chlorhexidine
Electrocautery pencil with push button, cable 5 m Dongguan QueenMed Equipment ESPB4001LQ
Gastric tube Vygon 390.12
Mersilene-0, 75 cm Ethicon F2505H
Monocryl 3-0, 70 cm Ethicon Y423H
Mouth masks, hair nets
Oriflex-4 vacuum flask for surgical draining Oriplast Krayer VK00352
Prolene 6-0, 75 cm Ethicon 8711H
Stainless steel monofilament non-absorbable suture Ethicon W995
Sterile drapes 3M 9010
Sterile gauze 20 x 10 cm Stella 35921
Sterile gloves
Sterile surgical gown
Steritalc PF3 Novatech 16863
Vicryl-0, 75 cm Ethicon V324H
Cardiac pacing
Bipolar pacing lead Fineline II Sterox EZ 58 cm Boston Scientific 4474
Bipolar pacing lead Tendril STS 58 cm Abbott 2088TC
Ellegaard Göttingen Minipig Frame 3 Lomir DF H1PU
Ellegaard Göttingen Minipig Sling Cover Lomir SS CEG1
Micropace cardiac stimulator Boston Scientific EPS 320
Pacemaker for pacing Medtronic Azure XT DR MRI SureScan
Pacemaker for sensing Biotronik Eluna 8 DR-T
Pacemaker programmer for pacing Medtronic CareLink Encore 29901A
Pacemaker programmer for sensing Biotronik ICS 3000 DS CD-W US
Medication
Adrenaline 1 mg/mL, 1 mL Sterop
Atropine 0.5 mg/mL, 1 mL Sterop
Catapressan 150 µg/mL, 1 ml clonidine Boehringer Ingelheim BE021402
Cefazoline 2 g powder Mylan BE319794
Cordarone 50 mg/mL, 3 mL amiodarone Sanofi
Durogesic 50 µg/h fentanyl patches Janssen-Cilag
Glucose 5%, 500 mL Baxter AE0063
Ketalar 50 mg/mL, 10 mL Pfizer 804101
Lanoxin 0.25 mg/mL, 2 mL digoxine Aspen
Marcaine 0.5% + adrenaline 1:200,000 Aspen
Midazolam 5 mg/ml, 3 mL B. Braun 3521740
Morfine 10 mg/mL, 1 mL Sterop
NaCl 0.9%, 500 mL Baxter AKE1323
Nitro Pohl 1 mg/mL, 5 mL nitroglycerine Pohl Boskamp
Noradrenaline 1 mg/mL, 4 mL Aguettant
Plasmalyte 1000 mL Baxter AKE0324
Propofol 10 mg/mL, 20 mL B. Braun 3521810
Protamine 1400 IU/mL, 5 mL Leo pharma
Rapifen 0.5 mg/mL, 2 mL Janssen-Cilag 95103
Seloken 1 mg/mL, 5 mL metoprolol AstraZeneca
Sevorane Quick Fill 100% sevoflurane, 250 mL Abbvie 1283-415
Tracrium 10 mg/mL, 5 mL atracurium Aspen

Referências

  1. Hindricks, G., et al. 2020 ESC Guidelines for the diagnosis and management of atrial fibrillation developed in collaboration with the European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS): The Task Force for the diagnosis and management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC) Developed with the special contribution of the European Heart Rhythm Association (EHRA) of the ESC. European Heart Journal. 42 (5), 373 (2021).
  2. Sajeev, J. K., Kalman, J. M., Dewey, H., Cooke, J. C., Teh, A. W. The atrium and embolic stroke: myopathy not atrial fibrillation as the requisite determinant. JACC. Clinical Electrophysiology. 6 (3), 251-261 (2020).
  3. Shen, M. J., Arora, R., Jalife, J. Atrial myopathy. JACC: Basic to Translational Science. 4 (5), 640-654 (2019).
  4. Jalife, J., Kaur, K. Atrial remodeling, fibrosis, and atrial fibrillation. Trends in Cardiovascular Medicine. 25 (6), 475-484 (2015).
  5. Fu, X. X., et al. Interleukin-17A contributes to the development of post-operative atrial fibrillation by regulating inflammation and fibrosis in rats with sterile pericarditis. International Journal of Molecular Medicine. 36 (1), 83-92 (2015).
  6. Liao, J., et al. TRPV4 blockade suppresses atrial fibrillation in sterile pericarditis rats. JCI Insight. 5 (23), 137528 (2020).
  7. Zhang, Y., et al. Role of inflammation in the initiation and maintenance of atrial fibrillation and the protective effect of atorvastatin in a goat model of aseptic pericarditis. Molecular Medicine Reports. 11 (4), 2615-2623 (2015).
  8. Vizzardi, E., et al. Risk factors for atrial fibrillation recurrence: a literature review. Journal of Cardiovascular Medicine. 15 (3), 235-253 (2014).
  9. Dosdall, D. J., et al. Chronic atrial fibrillation causes left ventricular dysfunction in dogs but not goats: experience with dogs, goats, and pigs. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 305 (5), 725-731 (2013).
  10. Schuttler, D., et al. Animal models of atrial fibrillation. Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).
  11. Wijffels, M. C., Kirchhof, C. J., Dorland, R., Allessie, M. A. Atrial fibrillation begets atrial fibrillation. A study in awake chronically instrumented goats. Circulation. 92 (7), 1954-1968 (1995).
  12. Willems, R., Ector, H., Holemans, P., Van De Werf, F., Heidbuchel, H. Effect of different pacing protocols on the induction of atrial fibrillation in a transvenously paced sheep model. Pacing and Clinical Electrophysiology. 24 (6), 925-932 (2001).
  13. Pagé, P. L., Plumb, V. J., Okumura, K., Waldo, A. L. A new animal model of atrial flutter. Journal of the American College of Cardiology. 8 (4), 872-879 (1986).
  14. Schwartzman, D., et al. A plasma-based, amiodarone-impregnated material decreases susceptibility to atrial fibrillation in a post-cardiac surgery model. Innovations. 11 (1), 59-63 (2016).
  15. BCFI vzw. Vetcompendium BCFIvet Available from: https://www.vetcompendium.be/nl (2021)
  16. Swindle, M. M., Smith, A. C. . Swine in the laboratory. Surgery, anesthesia, imaging, and experimental techniques, Third edition. , (2016).
  17. Unit for Laboratory Animal Medicine. Guidelines on anesthesia and analgesia in swine Available from: https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-swine (2021)
  18. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (52), e2652 (2011).
check_url/pt/63094?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Tubeeckx, M. R. L., Laga, S., Jacobs, C., Stroe, M., Van Cruchten, S., Goovaerts, B., Van fraeyenhove, J., Miljoen, H., De Meyer, G. R. Y., De Keulenaer, G. W., Heidbuchel, H., Segers, V. F. M. Sterile Pericarditis in Aachener Minipigs As a Model for Atrial Myopathy and Atrial Fibrillation. J. Vis. Exp. (175), e63094, doi:10.3791/63094 (2021).

View Video