O presente protocolo descreve um sistema personalizado de “movimento passivo da cabeça”, que reproduz acelerações mecânicas nas cabeças dos roedores geradas durante a corrida em esteira a velocidades moderadas. Permite dissecar fatores/elementos mecânicos dos efeitos benéficos do exercício físico.
O exercício é amplamente reconhecido como eficaz para várias doenças e distúrbios físicos, incluindo aqueles relacionados à disfunção cerebral. No entanto, os mecanismos moleculares por trás dos efeitos benéficos do exercício são pouco compreendidos. Muitos exercícios físicos, particularmente aqueles classificados como exercícios aeróbicos, como correr e caminhar, produzem forças impulsivas no momento do contato do pé com o solo. Portanto, especulou-se que o impacto mecânico poderia estar implicado em como o exercício contribui para a homeostase do organismo. Para testar essa hipótese no cérebro, foi desenvolvido um sistema personalizado de “movimento passivo da cabeça” (doravante referido como PHM) que pode gerar acelerações verticais com magnitudes e modos controlados e definidos e reproduzir a estimulação mecânica que pode ser aplicada às cabeças de roedores durante a corrida em esteira a velocidades moderadas, uma intervenção típica para testar os efeitos do exercício em animais. Usando este sistema, foi demonstrado que o PHM recapitula a serotonina (5-hidroxitriptamina, doravante referida como 5-HT) receptor subtipo 2A (5-HT2A) sinalizando nos neurônios do córtex pré-frontal (PFC) de camundongos. Este trabalho fornece protocolos detalhados para a aplicação de PHM e medição de suas acelerações mecânicas resultantes em cabeças de roedores.
O exercício é benéfico para tratar ou prevenir diversos distúrbios físicos, incluindo doenças do estilo de vida, como diabetes mellitus e hipertensão essencial1. Relacionado a isso, também foram acumuladas evidências sobre os efeitos positivos do exercício sobre as funções cerebrais2. No entanto, os mecanismos moleculares subjacentes aos benefícios do exercício para o cérebro permanecem principalmente não elucidados. A maioria das atividades físicas e treinos geram acelerações mecânicas na cabeça, pelo menos até certo ponto. Enquanto vários fenômenos fisiológicos são regulados mecanicamente, a importância da carga mecânica tem, na maioria dos casos, sido documentada no sistema musculoesquelético 3,4,5. Embora o cérebro também seja submetido a forças mecânicas durante as atividades físicas, particularmente os chamados exercícios de impacto, a regulação mecânica da função cerebral fisiológica raramente foi estudada. Como a geração de acelerações mecânicas na cabeça é relativamente comum aos exercícios físicos, especula-se que a regulação mecânica possa estar implicada nos benefícios do exercício para as funções cerebrais.
A sinalização do receptor 5-HT2A é essencial na regulação de emoções e comportamentos entre vários sinais bioquímicos que funcionam no sistema nervoso. Está envolvida em múltiplas doenças psiquiátricas 6,7,8, nas quais o exercício tem se mostrado terapeuticamente eficaz. O receptor 5-HT2A é um subtipo de receptor 5-HT2 que pertence à família da serotonina e também é um membro da família do receptor acoplado à proteína G (GPCR), cuja sinalização é modulada por sua internalização, dependente de ligantes ou independente9. O espasmo da cabeça é um comportamento característico dos roedores, cuja quantidade (frequência) representa explicitamente a intensidade da sinalização do receptor 5-HT2A em seus neurônios do córtex pré-frontal (PFC)10,11. Aproveitando a estrita especificidade desta resposta alucinógena à 5-HT administrada (resposta de contração da cabeça, doravante referida como HTR; ver Filme Suplementar 1), a hipótese mencionada acima sobre as implicações mecânicas nos efeitos do exercício nas funções cerebrais foi testada. Assim, analisamos e comparamos o HTR de camundongos submetidos a exercício forçado (corrida em esteira) ou intervenção mecânica que imita o exercício (PHM).
Usando o sistema de aplicação PHM desenvolvido, mostramos que a sinalização 5-HT em seus neurônios PFC é regulada mecanicamente. Devido à complexidade dos efeitos do exercício, tem sido difícil dissecar com precisão as consequências do exercício no contexto da promoção da saúde. O foco está em aspectos mecânicos para impedir o envolvimento ou a contribuição de eventos metabólicos que possam ocorrer com ou posteriormente às atividades de exercício, como o consumo de energia. Espera-se que o método d…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi em parte apoiado pelo Fundo de Pesquisa Intramural do Ministério da Saúde, Trabalho e Bem-Estar do Japão; Subsídios em Auxílio à Investigação Científica da Sociedade Japonesa para a Promoção da Ciência (KAKENHI 15H01820, 15H04966, 18H04088, 20K21778, 21H04866, 21K11330, 20K19367); Programa Apoiado pelo MEXT para a Fundação de Pesquisa Estratégica em Universidades Privadas, 2015-2019 do Ministério da Educação, Cultura, Esportes, Ciência e Tecnologia do Japão (S1511017); a Fundação de Ciência e Engenharia de Naito. Esta pesquisa também recebeu financiamento da Alliance for Regenerative Rehabilitation Research & Training (AR3T), que é apoiada pelo Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development (NICHD), National Institute of Neurological Disorders and Stroke (NINDS) e National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB) dos Institutos Nacionais de Saúde sob o número de Prêmio P2CHD086843.
5-hydroxytryptophan (5-HTP) | Sigma-Aldrich | H9772 | Serotonin (5-HT) precursor |
Brushless motor driver | Oriental motor | BMUD30-A2 | Speed changer build-in motor driver |
C57BL/6 mice | Oriental yeast company | C57BL/6J | Mice used in this study |
Cryostat | Leica | CM33050S | Microtome to cut frozen samples |
DC Motor | Oriental motor | BLM230-GFV2 | Motor |
Donkey anti-goat Alexa Fluor 568 | Invitrogen | A-11057 | Secondary antibody used for immunohistochemical staining |
Donkey anti-mouse Alexa Fluor 647 | Invitrogen | A-31571 | Secondary antibody used for immunohistochemical staining |
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A-21206 | Secondary antibody used for immunohistochemical staining |
Donkey serum | Sigma-Aldrich | S30-100ML | Blocker of non-specific binding of antibodies in immunohistochemical staining |
Fluorescence microscope | Keyence | BZ-9000 | Fluorescence microscope |
Goat polyclonal anti-5-HT2A receptor | Santa Cruz Biotechnology | sc-15073 | Primary antibody used for immunohistochemical staining |
Isoflurane | Pfizer | v002139 | Inhalation anesthetic |
KimWipe | NIPPON PAPER CRECIA | S-200 | Paper cloth for cleaning surfaces, parts, instruments in labratory |
Liquid Blocker | Daido Sangyo | PAP-S | Marker used to make the slide surface water-repellent |
Mouse monoclonal anti-NeuN (clone A60) | EMD Millipore (Merck) | MAB377 | Primary antibody used for immunohistochemical staining |
NinjaScan-Light | Switchscience | SSCI-023641 | Accelerometer to measure accelerations |
OCT compound | Sakura Finetek | 45833 | Embedding agent for preparing frozen tissue sections |
ProLong Gold Antifade Mountant | Invitrogen | P36934 | Mounting medium to prevent flourscence fading |
Rabbit polyclonal anti-c-Fos | Santa Cruz Biotechnology | sc-52 | Primary antibody used for immunohistochemical staining |
Slide box | AS ONE | 03-448-1 | Opaque box to store slides |
Spike2 | Cambridge electronic design limited (CED) | N/A | Application software used to analyze acceleration |
Sprague-Dawley rats | Japan SLC | Slc:SD | Rats used in this study |
Treadmill machine | Muromachi | MK-680 | System used in experiments of forced running of rats and mice |