Summary

Ein porcines heterotopes Herztransplantationsprotokoll für die Abgabe von Therapeutika an ein kardiales Allotransplantat

Published: February 14, 2022
doi:

Summary

Wir präsentieren ein Protokoll für die Verwendung eines normothermen ex vivo sanguinösen Perfusionssystems für die Abgabe von Therapeutika an ein ganzes kardiales Allotransplantat in einem porcinen heterotopen Herztransplantationsmodell.

Abstract

Die Herztransplantation ist die Goldstandardbehandlung für Herzinsuffizienz im Endstadium. Es bleibt jedoch durch die Anzahl der verfügbaren Spenderherzen und Komplikationen wie primäre Transplantatdysfunktion und Transplantatabstoßung begrenzt. Der jüngste klinische Einsatz eines Ex-vivo-Perfusionsgeräts bei der Herztransplantation bietet eine einzigartige Gelegenheit zur Behandlung von Herzallotransplantaten mit therapeutischen Interventionen, um die Funktion zu verbessern und schädliche Reaktionen der Empfänger zu vermeiden. Die Etablierung eines translationalen Großtiermodells für die therapeutische Verabreichung des gesamten Allotransplantats ist unerlässlich, um neuartige therapeutische Ansätze in der Herztransplantation zu testen. Das porcine, heterotope Herztransplantationsmodell in der intraabdominalen Position dient als hervorragendes Modell zur Beurteilung der Auswirkungen neuartiger Interventionen und der Immunpathologie der Transplantatabstoßung. Dieses Modell bietet dem Schwein zusätzlich ein langfristiges Überleben, da das Transplantat nicht erforderlich ist, um den Kreislauf des Empfängers aufrechtzuerhalten. Das Ziel dieses Protokolls ist es, einen reproduzierbaren und robusten Ansatz für die Ex-vivo-Abgabe eines Therapeutikums an das gesamte kardiale Allotransplantat vor der Transplantation bereitzustellen und technische Details für die Durchführung einer überlebensheterotopen Transplantation des ex vivo perfundierten Herzens bereitzustellen.

Introduction

Herzinsuffizienz ist eine Erkrankung, von der schätzungsweise 6 Millionen Erwachsene in den Vereinigten Staaten betroffen sind und die bis zum Jahr 2030 voraussichtlich auf 8 Millionen Erwachsene ansteigen wird1. Die Herztransplantation ist die Goldstandardbehandlung für Herzinsuffizienz im Endstadium. Es ist jedoch nicht ohne Einschränkungen und Komplikationen. Es bleibt begrenzt durch die Anzahl der verfügbaren Spenderherzen, die primäre Transplantatdysfunktion, die Abstoßung des Herzens und die Nebenwirkungen der langfristigen Immunsuppression2. Diese Einschränkungen sind besonders wichtig bei jungen Empfängern, bei denen ein Allotransplantatversagen auftreten kann und eine anschließende erneute Transplantation erforderlich ist, um eine normale Lebenserwartung zu erreichen.

Eine ideale Intervention zur Überwindung dieser Einschränkungen würde ganze Herzallotransplantate vor der Implantation in den Empfänger mit Therapeutika behandeln, die die Lebensfähigkeit des Allotransplantats verbessern und “Kardioprotektion” verleihen können. Solche Interventionen würden prophylaktisch verabreicht, um die Häufigkeit von ischämischen Beleidigungen, Allotransplantatabstoßung, kardialer Allotransplantatvaskulopathie zu minimieren und sogar marginale Allotransplantate zu reparieren. Translationale Studien zur Entwicklung dieser Art von Interventionen erfordern ein Großtiermodell der Herztransplantation, um die langfristige Überwachung des Herztransplantats zu ermöglichen. Das porcine, heterotope Herztransplantationsmodell in intraabdominaler Position hat sich für diesen Zweck als ideal erwiesen. Die Herztransplantation in dieser Position ermöglicht es, die Auswirkungen neuartiger Therapien zu testen und die Immunpathologie der Transplantatabstoßung zu beurteilen. Darüber hinaus ist das heterotope Modell gegenüber dem orthotopen Modell vorteilhaft, da das Gesamtüberleben des Empfängers, kein kardiopulmonaler Bypass erforderlich ist und das Transplantat nicht erforderlich ist, um den Kreislauf des Empfängers aufrechtzuerhalten3.

Die effektive Durchführung therapeutischer Interventionen am Herzen, wie Gen-, Zell- oder Immuntherapie, ist ein signifikantes Hindernis für die klinische Anwendung 4,5. Die von Ex-vivo-Perfusionsgeräten eingeführte Technologie ermöglicht es, Transplantate kontinuierlich zu durchbluten und sie in einem nicht funktionierenden, aber metabolisch aktiven Zustand zu halten 6,7,8,9. Dies bietet eine einzigartige Gelegenheit, ein ganzes Herz mit fortschrittlichen Therapeutika zu behandeln und gleichzeitig die möglichen Nebenwirkungen der systemischen Verabreichungzu minimieren 10,11,12,13. Ein weiterer Vorteil der Verwendung von Ex-vivo-Perfusionsgeräten für die therapeutische Verabreichung besteht darin, dass sie die Verabreichung von Medikamenten an den Koronarkreislauf über längere Zeiträume ermöglichen, die mit herkömmlichen statischen Kaltspeichermethoden nicht möglich sind. Dies ermöglicht eine globalere Abgabe der Therapeutika an das Transplantat14. Unter Verwendung des hier vorgestellten Protokolls haben wir das Glühwürmchen-Luciferase-Gen erfolgreich mit adenoviralen Vektoren15 an ein ganzes porcines Herztransplantat abgegeben. Das Ziel dieses Protokolls ist es, einen reproduzierbaren und robusten Ansatz für die Abgabe eines Therapeutikums an das gesamte kardiale Allotransplantat vor der Transplantation bereitzustellen.

Protocol

HINWEIS: Zwei weibliche Yucatan-Schweine werden ausgewählt, wobei eines als Herztransplantatspender und das andere als Empfänger bestimmt ist. Schweine im Alter von 6-8 Monaten, mit einem Gewicht von ca. 30 kg und kompatiblen Blutgruppen werden empfohlen. Die Übersicht über das Protokoll ist in Abbildung 1 dargestellt. Die Unterbringung und die Behandlungsverfahren für die Schweine werden in Übereinstimmung mit den Richtlinien des Animal Care and Use Committee des Duke University Medic…

Representative Results

Diese Gruppe hat je nach Studiendesign 9 Schweine zwischen 5 und 35 Tagen nach dem hier vorgestellten Protokoll erfolgreich überlebt. Von 10 Schweinen, die dieses Protokoll durchlaufen haben, starb nur 1 vorzeitig an chirurgischen Komplikationen, was zu einer Überlebensrate von 90% führte. In Abbildung 2 ist ein Diagramm der Konfiguration eines heterotopen Herzens dargestellt, das in die intraabdominale Position eines Schweins transplantiert wurde. Wählen Sie bei der Bestimmung der Stell…

Discussion

Die Abgabe von Therapeutika während der Ex-vivo-Perfusion bei der Herztransplantation bietet eine Strategie zur Modifikation des Allotransplantats und zur potenziellen Verbesserung der Transplantationsergebnisse. Das hier vorgestellte Protokoll beinhaltet die hochmoderne normotherme ex vivo sanguinöse Perfusionslagerung und bietet vielversprechendes Potenzial, die isolierte Abgabe von Zell-, Gen- oder Immuntherapien an das Allotransplantat11,12,13</…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Duke Large Animal Surgical Core und Duke Perfusion Services für ihre Unterstützung bei diesen Eingriffen. Wir möchten uns auch bei Paul Lezberg und TransMedics, Inc. für die Unterstützung bedanken.

Materials

0 Looped Maxon suture Covidien GMM-341L Used to close fascia of the laparotomy incision
0 Silk ties Medtronic, Inc S346
18 G Angiocath BD 381144 Used to de-air the left ventricle of the donor heart after implantation
20 Fr LV vent Medtronic, Inc 12002
2-0 Silk sutures Ethicon, Inc. SA11G
2-0 Silk ties Ethicon, Inc. SA65H
2-0 Vicryl suture Ethicon, Inc. J259H
24 Fr venous cannula Medtronic, Inc 68124
3-0 Prolene sutures Ethicon, Inc. 8522
4-0 Monocryl suture Ethicon, Inc. Y469G
4-0 Prolene sutures Ethicon, Inc. 8521
Animal hair cutting clipper Wahl 8786-452
Aortic clamp V. Mueller CH6201
Army Navy retractor V. Mueller SU3660
ATF 40, Cell saver disposable set Fresenius Kabi 9108494 Cell saver device insert
Balfour retractor V. Mueller SU3042 Used as an abdominal wall retractor
C.A.T.S cell saver Fresenius Kabi ES0019 Cell saver device used to wash donor blood
Cardiac defibrillator Zoll M Series Cardiac defibrillator
Castro needle holder V. Mueller CH8589
CG4 iStat cartridges Abbott 03P85-25 POC testing
CG8 iStat cartridges Abbott 03P88-25 POC testing
DeBakey forceps V. Mueller CH5902
Electrocautery disposable pencil Covidien E2450H
Gerald forceps V. Mueller NL1451
Hemotherm 400CE Dual Reservoir Cooler/Heater Cincinnati Sub-Zero 86022 Heater cooler used to regulate perfusion temperature on the ex vivo perfusion device
iSTAT 1 Abbott 04P75-03 POC testing device
Kocher clamp V. Mueller SU2790
Large clip applier Sklar 50-4300
Large clips Teleflex 4200
Large soft pledgets Covidien 8886867901
Medium clip applier Sklar 50-4335
Medium clips Teleflex 2200
Metzenbaum scissor V. Mueller CH2006-001
No. 10 scalpel blade Swann-Mortan 301 Used for skin incision
No. 11 scalpel blade Kiato Plus 18111 Used for vascular incision
OCS device with base TransMedics, Inc. Ex vivo perfusion device
OCS disposable TransMedics, Inc. Ex vivo perfusion device insert with perfusion kits
Pacing cable Remington Medical FL-601-97
Pediatric cardioplegia catheter (4Fr) Medtronic, Inc 10218 Used to deliver cardioplegia to the donor aortic root
Pediatric Foley catheter Teleflex RSH170003080 Placed pre-op to decompress the recipient's bladder
Potts scissors V. Mueller CH13038
Pressure bag x2 (1,000 mL) Novaplus V4010H Used to deliver cardioplegia at a set pressure
Satinsky clamp V. Mueller CH7305 Vascular clamp used for creating anastomoses between donor heart and recipient vessels
Scissors Felco FELCO 200A-50 Used to perform sternotomy
Small hard pledgets Covidien 8886867701
Sternal retractor V. Mueller CH6950-007
Temporary cardiac pacing wires Ethicon, Inc. TPW32
Temporary dual chamber pacemaker Medtronic, Inc 5388 Cardiac pacing device
Tourniquet kit Medtronic, Inc 79005 Rummel tourniquets
Umbilical tape Covidien 8886861903
Vessel loops Covidien 31145686

Referências

  1. Virani, S. S., et al. Heart disease and stroke statistics-2021 update: A report from the American Heart Association. Circulation. 143 (8), 254 (2021).
  2. Stehlik, J., Kobashigawa, J., Hunt, S. A., Reichenspurner, H., Kirklin, J. K. Honoring 50 years of clinical heart transplantation in circulation: in-depth state-of-the-art review. Circulation. 137 (1), 71-87 (2018).
  3. Kadner, A., Chen, R. H., Adams, D. H. Heterotopic heart transplantation: experimental development and clinical experience. European Journal of Cardiothorac Surgery. 17 (4), 474-481 (2000).
  4. Hastings, C. L., et al. Drug and cell delivery for cardiac regeneration. Advanced Drug Delivery Reviews. 84, 85-106 (2015).
  5. Sahoo, S., Kariya, T., Ishikawa, K. Targeted delivery of therapeutic agents to the heart. Nature Reviews. Cardiology. 18 (6), 389-399 (2021).
  6. Stamp, N. L., et al. Successful heart transplant after ten hours out-of-body time using the TransMedics Organ Care System. Heart, Lung & Circulation. 24 (6), 611-613 (2015).
  7. Ragalie, W. S., Ardehali, A. Current status of normothermic ex-vivo perfusion of cardiac allografts. Current Opinion in Organ Transplantation. 25 (3), 237-240 (2020).
  8. Koerner, M. M., et al. Normothermic ex vivo allograft blood perfusion in clinical heart transplantation. Heart Surgery Forum. 17 (3), 141-145 (2014).
  9. Rosenbaum, D. H., et al. Perfusion preservation versus static preservation for cardiac transplantation: effects on myocardial function and metabolism. Journal of Heart and Lung Transplantation. 27 (1), 93-99 (2008).
  10. Cullen, P. P., Tsui, S. S., Caplice, N. M., Hinchion, J. A. A state-of-the-art review of the current role of cardioprotective techniques in cardiac transplantation. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 32 (5), 683-694 (2021).
  11. Rurik, J. G., Aghajanian, H., Epstein, J. A. Immune cells and immunotherapy for cardiac injury and repair. Circulation Research. 128 (11), 1766-1779 (2021).
  12. Rincon, M. Y., VandenDriessche, T., Chuah, M. K. Gene therapy for cardiovascular disease: advances in vector development, targeting, and delivery for clinical translation. Cardiovascular Research. 108 (1), 4-20 (2015).
  13. Kieserman, J. M., Myers, V. D., Dubey, P., Cheung, J. Y., Feldman, A. M. Current landscape of heart failure gene therapy. Journal of the American Heart Association. 8 (10), 012239 (2019).
  14. Perin, E. C., Perin, E. C., Miller, L. W., Taylor, D. A., Wilkerson, J. T. . Stem cell and gene therapy for cardiovascular disease. , 279-287 (2016).
  15. Bishawi, M., et al. A normothermic ex vivo organ perfusion delivery method for cardiac transplantation gene therapy. Scientific Reports. 9 (1), 8029 (2019).
  16. Hulot, J. S., Ishikawa, K., Hajjar, R. J. Gene therapy for the treatment of heart failure: promise postponed. European Heart Journal. 37 (21), 1651-1658 (2016).
  17. Ho, C. S., et al. Molecular characterization of swine leucocyte antigen class I genes in outbred pig populations. Animal Genetics. 40 (4), 468-478 (2009).
  18. Ho, C. S., et al. Molecular characterization of swine leucocyte antigen class II genes in outbred pig populations. Animal Genetics. 41 (4), 428-432 (2010).
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Citar este artigo
Mendiola Pla, M., Evans, A., Lee, F. H., Chiang, Y., Bishawi, M., Vekstein, A., Kang, L., Zapata, D., Gross, R., Carnes, A., Gault, L. E., Balko, J. A., Bonadonna, D., Ho, S., Lezberg, P., Bryner, B. S., Schroder, J. N., Milano, C. A., Bowles, D. E. A Porcine Heterotopic Heart Transplantation Protocol for Delivery of Therapeutics to a Cardiac Allograft. J. Vis. Exp. (180), e63114, doi:10.3791/63114 (2022).

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