Summary

Økonomisk og effektiv protokol til isolering og dyrkning af knoglemarvsafledte dendritiske celler fra mus

Published: July 01, 2022
doi:

Summary

Her præsenterer vi en økonomisk og effektiv metode til at isolere og generere knoglemarvsafledte dendritiske celler med høj renhed fra mus efter 7 dages dyrkning med 10 ng/ml GM-CSF/IL-4.

Abstract

Efterspørgslen efter dendritiske celler (LLC’er) stiger gradvist, efterhånden som immunologiforskningen skrider frem. DCs er dog sjældne i alle væv. Den traditionelle metode til isolering af DC’er involverer primært inducering af knoglemarvsdifferentiering (BM) i DC’er ved at injicere store doser (>10 ng / ml) granulocyt-makrofagkolonistimulerende faktor / interleukin-4 (GM-CSF / IL-4), hvilket gør proceduren kompleks og dyr. I denne protokol blev der ved anvendelse af alle BM-celler dyrket i 10 ng / ml GM-CSF / IL-4-medium efter 3-4 halvkulturudvekslinger høstet op til 2,7 x 107 CD11c + celler (DC’er) pr. Mus (to lårben) med en renhed på 80% -95%. Efter 10 dage i kultur steg ekspressionen af CD11c, CD80 og MHC II, mens antallet af celler faldt. Antallet af celler toppede efter 7 dages dyrkning. Desuden tog denne metode kun 10 minutter at høste alle knoglemarvsceller, og et stort antal LLC’er blev opnået efter 1 uges dyrkning.

Introduction

Dendritiske celler (DC’er) er de mest kraftfulde antigenpræsenterende celler (APC’er) til aktivering af naive T-celler og inducering af specifikke cytotoksiske T-lymfocytresponser (CTL) mod infektionssygdomme, allergisygdomme og tumorceller 1,2,3. DCs er den primære forbindelse mellem medfødt immunitet og adaptiv immunitet og spiller en væsentlig rolle i immunologisk forsvar og opretholdelse af immuntolerance. I de sidste 40 år har mange forskere forsøgt at definere delmængderne af LLC’er og deres funktioner i betændelse og immunitet. I henhold til disse undersøgelser udviklerDC’er sig langs myeloide og lymfoide slægter fra knoglemarvsceller. Tumorvacciner har fået betydelige milepæle i de senere år og har en lovende fremtid. Mekanisk modulerer tumorvacciner immunresponsen og forhindrer tumorvækst ved at aktivere cytotoksiske T-lymfocytter ved anvendelse af tumorantigener. Vaccinen baseret på DCs spiller en vigtig rolle i tumorimmunterapi og er blevet identificeret som en af de mest lovende antitumorterapier 1,4. Derudover erDC’er blevet anvendt i vid udstrækning til test af nye molekylære målrettede lægemidler og immun checkpoint-hæmmere5.

Forskere har akut brug for et stort antalDC’er med høj renhed for yderligere at studereDC’ernes rolle. DCs er imidlertid sjældne i forskellige væv og blod, der kun tegner sig for 1% af blodlegemer hos mennesker og dyr. In vitro-dyrkning af knoglemarvsdendritiske celler (BMDC) er en vigtig metode til opnåelse af store mængder DC-celler. I mellemtiden er Lutz-protokollen til generering af VC’er fra knoglemarv blevet brugt i vid udstrækning af forskere6. Selvom protokollen er effektiv til opnåelse af DC-celler, er den kompleks og dyr, hvilket involverer tilsætning af høje koncentrationer af cytokiner og lysis af røde blodlegemer.

I denne undersøgelse rapporterer vi en metode til isolering af næsten alle knoglemarvsceller fra museknoglemarv (BM) og inducering af differentiering i BMDC efter 7-9 dages inkubation in vitro med en lavere koncentration af GM-CSF og IL-4. Denne procedure tager kun 10 minutter at høste næsten alle knoglemarvsceller og suspendere dem i et komplet medium. Kort fortalt leverer vi en effektiv og omkostningseffektiv dyrkningsmetode til BMDC i denne forskning.

Protocol

Alle procedurer blev godkendt af Nanjing Medical University Animal Care and Use Committee. 1. Isolering af knoglemarv og forberedelse af BM-celler Ofre C57BL/6 mus (18-22 g, 6-8 uger gamle) via CO2 kvælning. Fastgør musen på musens operationsbord. Desinficer overfladerne med 70% ethanol. Skær benets hud for at udsætte musklerne og lårbensarterien. Klem og riv lårbensarterien ved hjælp af to tang, og træk derefter den proksimale ende mod …

Representative Results

De 1 x 10 7-1,7 x 107 celler blev ekstraheret fra to lårben og blev genophængt i 24 ml medium, før de blev plantet i en 6-brønds plade (figur 1A). Efter 2 dage blev ikke-klæbende celler fjernet ved fuldstændigt at ændre kulturmediet. Før mediet blev skiftet, blev der observeret et betydeligt antal suspenderede celler (figur 1B). Efter 3 dages kultur begyndte småcellekolonier at danne sig. På den sjette dag steg størrelsen og anta…

Discussion

Mennesker og mus har forskellige DC-undergrupper, herunder klassiske DC’er (cDC’er, herunder cDC1’er og cDC2’er) plasmacytoid-DC’er (pDC’er) og monocytafledte DC’er (MoDC’er)9,10,11. Det er generelt accepteret, at cDC1’er regulerer cytotoksiske T-lymfocyt (CTL) reaktioner på intracellulære patogener og kræft, og cDC2’er regulerer immunresponser på ekstracellulære patogener, parasitter og allergener12

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Program of Tianjin Science and Technology Plan (20JCQNJC00550), Tianjin Health Science and Technology Project (TJWJ202021QN033 og TJWJ202021QN034).

Materials

β-Mercaptoethanol Solarbio M8211
6-well plate Corning 3516
APC-MHC II Biolegend 116417
FBS Gibco 10100
PE-CD80 Biolegend 104707
Penicillin-Streptomycin Solarbio P1400
Percp/cy5.5-CD11c Biolegend 117327
PRMI-1640 Thermo 11875093
Recombinant Mouse GM-CSF Solarbio P00184
Recombinant Mouse IL-4 Solarbio P00196
TruStain Fc PLUS (anti-mouse CD16/32) Antibody Biolegend 156603

Referências

  1. Huang, M. N., et al. Antigen-loaded monocyte administration induces potent therapeutic antitumor T cell responses. Journal of Clinical Investigation. 130 (2), 774-788 (2020).
  2. Wang, P., Dong, S., Zhao, P., He, X., Chen, M. Direct loading of CTL epitopes onto MHC class I complexes on dendritic cell surface in vivo. Biomaterials. 182, 92-103 (2018).
  3. Banchereau, J., Steinman, R. M. Dendritic cells and the control of immunity. Nature. 392 (6673), 245-252 (1998).
  4. Jiang, P. L., et al. Galactosylated liposome as a dendritic cell-targeted mucosal vaccine for inducing protective anti-tumor immunity. Acta Biomaterialia. 11, 356-367 (2015).
  5. Shi, Y., et al. Next-generation immunotherapies to improve anticancer immunity. Frontiers in Pharmacology. 11, 566401 (2020).
  6. Lutz, M. B., et al. An advanced culture method for generating large quantities of highly pure dendritic cells from mouse bone marrow. Journal of Immunological Methods. 223 (1), 77-92 (1999).
  7. Son, Y. I., et al. A novel bulk-culture method for generating mature dendritic cells from mouse bone marrow cells. Journal of Immunological Methods. 262 (1-2), 145-157 (2002).
  8. Guo, L., et al. Fusion protein vaccine based on Ag85B and STEAP1 induces a protective immune response against prostate cancer. Vaccines. 9 (7), 786 (2021).
  9. Olweus, J., et al. Dendritic cell ontogeny: A human dendritic cell lineage of myeloid origin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (23), 12551-12556 (1997).
  10. Martin, P., et al. Concept of lymphoid versus myeloid dendritic cell lineages revisited: both CD8alpha(-) and CD8alpha(+) dendritic cells are generated from CD4(low) lymphoid-committed precursors. Blood. 96 (-), 2511-2519 (2000).
  11. Anderson, D. A., Dutertre, C. A., Ginhoux, F., Murphy, K. M. Genetic models of human and mouse dendritic cell development and function. Nature Reviews: Immunology. 21 (2), 101-115 (2021).
  12. Vu Manh, T. P., Bertho, N., Hosmalin, A., Schwartz-Cornil, I., Dalod, M. Investigating evolutionary conservation of dendritic cell subset identity and functions. Frontiers in Immunology. 6, 260 (2015).
  13. Scheicher, C., Mehlig, M., Zecher, R., Reske, K. Dendritic cells from mouse bone marrow: in vitro differentiation using low doses of recombinant granulocyte-macrophage colony-stimulating factor. Journal of Immunological Methods. 154 (2), 253-264 (1992).
  14. Brasel, K., De Smedt, T., Smith, J. L., Maliszewski, C. R. Generation of murine dendritic cells from flt3-ligand-supplemented bone marrow cultures. Blood. 96 (9), 3029-3039 (2000).
  15. Mayordomo, J. I., et al. marrow-derived dendritic cells pulsed with synthetic tumour peptides elicit protective and therapeutic antitumour immunity. Nature Medicine. 1 (12), 1297-1302 (1995).
  16. Condon, C., Watkins, S. C., Celluzzi, C. M., Thompson, K., Falo, L. D. DNA-based immunization by in vivo transfection of dendritic cells. Nature Medicine. 2 (10), 1122-1128 (1996).
  17. Brunner, G. A., et al. Post-prandial administration of the insulin analogue insulin aspart in patients with type 1 diabetes mellitus. Diabetic Medicine. 17 (5), 371-375 (2000).
  18. Koido, S., et al. Induction of antitumor immunity by vaccination of dendritic cells transfected with MUC1 RNA. Journal of Immunology. 165 (10), 5713-5719 (2000).
  19. Jonasson, P. S., et al. Strength of the porcine proximal femoral epiphyseal plate: The effect of different loading directions and the role of the perichondrial fibrocartilaginous complex and epiphyseal tubercle – An experimental biomechanical study. Journal of Experimental Orthopaedics. 1 (1), 4 (2014).
  20. Labeur, M. S., et al. Generation of tumor immunity by bone marrow-derived dendritic cells correlates with dendritic cell maturation stage. Journal of Immunology. 162 (1), 168-175 (1999).
  21. Hinkel, A., et al. Immunomodulatory dendritic cells generated from nonfractionated bulk peripheral blood mononuclear cell cultures induce growth of cytotoxic T cells against renal cell carcinoma. Journal of Immunotherapy. 23 (1), 83-93 (2000).
check_url/pt/63125?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Tang, H., Xie, H., Wang, Z., Peng, S., Ni, W., Guo, L. Economical and Efficient Protocol for Isolating and Culturing Bone Marrow-derived Dendritic Cells from Mice. J. Vis. Exp. (185), e63125, doi:10.3791/63125 (2022).

View Video