Summary

Создание мышиной модели тяжелого острого панкреатита с использованием ретроградной инъекции таурохолата натрия в билиопанкреатический проток

Published: April 01, 2022
doi:

Summary

В настоящем описана мышиная модель тяжелого острого панкреатита. Процедура, представленная здесь, очень быстрая, простая и доступная, что потенциально позволяет изучать молекулярные механизмы и различные терапевтические вмешательства при остром панкреатите удобным способом.

Abstract

Распространенность острого панкреатита (АП), особенно тяжелого острого панкреатита (САП), ежегодно увеличивается в младших возрастных группах. Однако в современной клинической практике не хватает эффективных методов лечения. Благодаря легкой доступности трансгенных и нокаутных штаммов и их небольшому размеру, что позволяет использовать минимальные дозы препаратов, необходимых для оценки in vivo , для исследования АП предпочтительна хорошо зарекомендовавшая себя экспериментальная модель на мышах. Кроме того, SAP, индуцированный с помощью таурохолата натрия (TC), в настоящее время является одной из наиболее широко используемых и наиболее характеризуемых моделей. Эта модель была исследована для новых методов лечения и возможных молекулярных событий во время процесса AP. Здесь мы представляем поколение модели мыши AP с использованием таурохолата натрия и простого самодельного микрошприца. Кроме того, мы также предоставляем методологию для последующего гистологического и серологического тестирования.

Introduction

Острый панкреатит (АП) – острое воспаление поджелудочной железы, характеризующееся обструкцией главного протока поджелудочной железы с последующим растяжением протоков и аутоперевариванием поджелудочной железы ее аномально активированными ферментами. Его клинические проявления включают местное или системное воспаление, боль в животе и повышение уровня амилазы в сыворотке крови1,2. Согласно классификации тяжести3, АП может присутствовать в легких, умеренных и тяжелых формах, и среди них тяжелый острый панкреатит (САП) является наиболее тревожным состоянием из-за его высокой смертности более 30%4. В Соединенных Штатах AP является одной из наиболее распространенных причин госпитализации, затрагивающей более 200 000 пациентов5. Кроме того, АП, особенно САП, ежегодно увеличивается и затрагивает младшие возрастные группы6. Однако в современной клинической практике отсутствуют эффективные варианты лечения6,7. Поэтому необходимо исследовать молекулярные механизмы, участвующие в АП, тем самым способствуя улучшению лечения.

Хорошо зарекомендовавшие себя экспериментальные модели на животных необходимы для изучения механизмов, участвующих в АП, и оценки эффективности различных методов лечения. Благодаря легкой доступности трансгенных и нокаутных штаммов и их небольшому размеру, что сводит к минимуму дозы препаратов, необходимых для оценки in vivo, мыши предпочтительны для исследования AP. Поэтому на мышах было разработано несколько моделей АП8,9.

Работая с моделью крыс с легким панкреатитом, индуцированной путем внутривенного введения caerulein10, Niederau et al. разработали модель мыши SAP, представленную с некрозом ацинарных клеток, индуцированным с использованием того же препарата и инъекционного маршрута11. Хотя эта модель обладает рядом преимуществ, включая неинвазивность, быструю индукцию, широкую воспроизводимость и применимость, основным недостатком является то, что в большинстве случаев развивается только легкая форма АП, тем самым ограничивая ее клиническую значимость. Алкоголь считается одним из основных этиологических факторов АП; Однако Foitzik et al. сообщили, что он вызывает повреждение поджелудочной железы только в сочетании с другими факторами, такими как экзокринная гиперстимуляция12. Более того, хотя модели АП, индуцированные алкоголем, разработанные с помощью различных путей введения, и дозы лекарств были зарегистрированы13,14,15, их основным недостатком является трудность их воспроизведения. Внутрибрюшинное введение L-аргинина также может индуцировать AP у мышей16; однако его низкая клиническая значимость препятствует его применению. Таурохолат, желчная соль, был впервые предложен Creutzfeld et al. в 1965 году для индуцирования состояния, напоминающего человеческий AP, посредством инфузии протоков поджелудочной железы17. Хотя существуют споры относительно его клинической значимости в патофизиологии18,19, панкреатит, вызванный таурохолатом, остается незаменимой моделью для SAP.

Поскольку эта модель проста в реализации, а также эффективна на мышах, в настоящее время она является одной из наиболее часто используемых моделей AP для исследований на мелких животных in vivo. Perides et al. использовали таурохолат натрия (TC) для индуцирования SAP у мышей20, предоставляя понимание для понимания его патологии. В сочетании с методами генетической модификации эта модель позволила нам подтвердить несколько конкретных генов, участвующих в AP. Например, Bicozo et al. показали, что нокаут гена CD38 защищает от модели панкреатита TC-инфузии и приписывает механизмы изменениям во внутриклеточной передаче сигналов Ca2+21. Fanczal et al. исследовали физиологическое значение экспрессии TRPM2 в плазматической мембране ацинарных и протоковых клеток поджелудочной железы мыши и продемонстрировали снижение тяжести TC-индуцированного SAP у нокаутирующих мышей TRPM22. Кроме того, эта модель также обеспечивает простой и эффективный способ тестирования многих новых лекарств in vivo. Например, этот метод позволил валидировать терапевтические эффекты кофеина23, дегидрохолевой кислоты24 и различных антиоксидантов и антикоагулянтов25,26. Эти данные демонстрируют универсальность модели SAP, индуцированной TC. Хотя Wittel et al. описали аналогичную модель мыши27, отсутствие подробностей о процедурах реализации может привести к невозможности воспроизвести результаты. В этой статье мы сосредоточимся на методах с использованием простого самодельного микрошприца и исследуем TC-индуцированный SAP, тем самым предоставляя возможное руководство не только для дальнейшего изучения патогенеза и лечения АП, но и для идеально адаптируемого экспериментального метода для многих других веществ.

Protocol

Все эксперименты с участием животных были одобрены Комитетом по этике животных Университета Сучжоу. Все хирургические процедуры проводились под полным наркозом. Анальгетики не применялись, чтобы избежать вмешательства в естественное течение болезни согласно предыдущим ли?…

Representative Results

Тщательно следуя приведенным выше инструкциям, мы получили среднюю продолжительность операции около 40 минут. Мыши были слегка неактивны и потеряли примерно 0,5-1,75 г, 0,85-1,85 г и 0,5-4,73 г веса через 24 ч, 48 ч и 72 ч после операции соответственно (рисунок 2). С момента …

Discussion

Модель SAP, индуцированная TC, является отличным инструментом исследования. Как показано в этом исследовании, эта модель очень легко реализуется в общих лабораториях без использования конкретных устройств. При использовании в сочетании с гистологическим и биохимическим анализом он обе?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарны за поддержку со стороны следующих грантов: грант на трансляционные исследования NCRCH [2020WSA01], научный грант KJXW от Комиссии по здравоохранению Сучжоу для молодых ученых [KJXW2020002], План науки и техники города Сучжоу (SKY2021038 и SKJY2021050), грант от Приоритетной академической программы развития высших учебных заведений Цзянсу (PAPD) и План первичных исследований и социального развития провинции Цзянсу (BE2018659).

Materials

0.5% iodophor Shanghai Likang Disinfectant 310102 4 mL/mouse
0.9% sodium chloride Sinopharm Group Co., Ltd. 10019318 0.8 mL/mouse
1% Pentobarbital sodium Sigma P3761 0.2 -0.25 mL/mouse
25 μL flat tip Microliter syringe Gaoge, Shanghai A124019
4% Paraformaldehyde Beyotime, Nantong, China P0099-500ml
5% sodium taurocholate (TC) Aladdin S100834-5g 10 μL/SAP mouse
6-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (1/2 circle) Cheng-He 20093
75% alcohol Sinopharm Group Co., Ltd. 10009218 4 mL/mouse
8-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (3/8 circle) Cheng-He 19064
ALT Activity Assay Kit EPNK, Anhui, China ALT0012
Amylase Assay Kit EPNK, Anhui, China AMY0012
Angled small bulldog clamp with 12 mm jaw (3 cm) Cheng-He HC-X022
aspen shavings or shreds for mouse bedding Beijing Vital River Laboratory Animal Technology VR03015
AST Activity Assay Kit EPNK, Anhui, China AST0012
Blood Urea Nitrogen (BUN) Assay Kit EPNK, Anhui, China BUN0011
C57BL/6 mouse Beijing Vital River Laboratory Animal Technology 213
Creatine Assay Kit EPNK, Anhui, China CRE0012
Feature microtome blade Beyotime, Nantong, China E0994
Hemostatic Forceps (9.5 cm, Curved) JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd. JC3901
Lipase Assay Kit Jiancheng, Nanjing, China A054-2-1
Microtome Leica biosystem, Germany RM2245
Mindray biochemistry analyzer Mindray, Shenzhen, China BS-420
MPO Assay Kit Jiancheng, Nanjing, China A044-1-1
Normal mouse chow Trophic, Nantong, China LAD 1000
Phosphate buffered saline Beyotime, Nantong, China C0221A
Straight micro-bulldog clamp with 5 mm jaw (1.5 cm) JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd. W40130
Straight or curved forceps (11.0 cm) Cheng-He HC-X091A or HC-X090A
Straight Scissors (10.0 cm) Cheng-He, Ningbo, China HC-J039102
Thermo Scientific Centrifuge Thermo Scientific, USA Multifuge X1R

Referências

  1. Lee, P. J., Papachristou, G. I. New insights into acute pancreatitis. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 16 (8), 479-496 (2019).
  2. Mandalia, A., Wamsteker, E. J., DiMagno, M. J. Recent advances in understanding and managing acute pancreatitis. F1000Research. 7, 959 (2018).
  3. Banks, P. A., et al. Classification of acute pancreatitis-2012: revision of the Atlanta classification and definitions by international consensus. Gut. 62 (1), 102-111 (2013).
  4. Munir, F., et al. Advances in immunomodulatory therapy for severe acute pancreatitis. Immunology Letters. 217, 72-76 (2020).
  5. Peery, A. F., et al. Burden of gastrointestinal disease in the United States: 2012 update. Gastroenterology. 143 (5), 1179-1187 (2012).
  6. Hines, O. J., Pandol, S. J. Management of severe acute pancreatitis. BMJ. 367, 6227 (2019).
  7. James, T. W., Crockett, S. D. Management of acute pancreatitis in the first 72 hours. Current Opinion in Gastroenterology. 34 (5), 330-335 (2018).
  8. Silva-Vaz, P., et al. Murine models of acute pancreatitis: a critical appraisal of clinical relevance. International Journal of Molecular Sciences. 20 (11), 2794 (2019).
  9. Hyun, J. J., Lee, H. S. Experimental models of pancreatitis. Clinical Endoscopy. 47 (3), 212-216 (2014).
  10. Renner, I. G., Wisner, J. R., Rinderknecht, H. Protective effects of exogenous secretin on ceruletide-induced acute pancreatitis in the rat. Journal of Clinical Investigation. 72 (3), 1081-1092 (1983).
  11. Niederau, C., Ferrell, L. D., Grendell, J. H. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 88 (5), 1192-1204 (1985).
  12. Foitzik, T., et al. Exocrine hyperstimulation but not pancreatic duct obstruction increases the susceptibility to alcohol-related pancreatic injury. Archives in Surgery. 129 (10), 1081-1085 (1994).
  13. Schneider, L., Dieckmann, R., Hackert, T., Gebhard, M. M., Werner, J. Acute alcohol-induced pancreatic injury is similar with intravenous and intragastric routes of alcohol administration. Pancreas. 43 (1), 69-74 (2014).
  14. Huang, W., et al. Fatty acid ethyl ester synthase inhibition ameliorates ethanol-induced Ca2+-dependent mitochondrial dysfunction and acute pancreatitis. Gut. 63 (8), 1313-1324 (2014).
  15. Sun, J., et al. NRF2 mitigates acute alcohol-induced hepatic and pancreatic injury in mice. Food and Chemical Toxicology. 121, 495-503 (2018).
  16. Kui, B., et al. New insights into the methodology of L-arginine-induced acute pancreatitis. PLoS One. 10 (2), 0117588 (2015).
  17. Creutzfeldt, W., Schmidt, H., Horbach, I. Studies on the effects of a trypsin inhibitor (Trasylol) on Enzyme activities and morphology in taurocholate and calciphylaxis pancreatitis of the rat (a contribution to the pathogenesis of pancreatitis). Klin Wochenschr. 43, 15-22 (1965).
  18. Liu, Z. H., et al. A simple taurocholate-induced model of severe acute pancreatitis in rats. World Journal of Gastroenterology. 15 (45), 5732-5739 (2009).
  19. Cavdar, F., et al. Controversial issues in biliary pancreatitis: when should we perform MRCP and ERCP. Pancreatology. 14 (5), 411-414 (2014).
  20. Perides, G., van Acker, G. J., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct. Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).
  21. Orabi, A. I., et al. Cluster of differentiation 38 (CD38) mediates bile acid-induced acinar cell injury and pancreatitis through cyclic ADP-ribose and intracellular calcium release. Journal of Biological Chemistry. 288 (38), 27128-27137 (2013).
  22. Fanczal, J., et al. TRPM2-mediated extracellular Ca(2+) entry promotes acinar cell necrosis in biliary acute pancreatitis. Journal of Physiology. 598 (6), 1253-1270 (2020).
  23. Huang, W., et al. Caffeine protects against experimental acute pancreatitis by inhibition of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor-mediated Ca2+ release. Gut. 66 (2), 301-313 (2017).
  24. Zhang, X., et al. Dehydrocholic acid ameliorates sodium taurocholate-induced acute biliary pancreatitis in mice. Biology and Pharmaceutical Bulletin. 43 (6), 985-993 (2020).
  25. Hagiwara, S., et al. Antithrombin III prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Pancreas. 38 (7), 746-751 (2009).
  26. Hagiwara, S., et al. Danaparoid sodium prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Shock. 32 (1), 94-99 (2009).
  27. Wittel, U. A., et al. Taurocholate-induced pancreatitis: a model of severe necrotizing pancreatitis in mice. Pancreas. 36 (2), 9-21 (2008).
  28. Barlass, U., et al. Morphine worsens the severity and prevents pancreatic regeneration in mouse models of acute pancreatitis. Gut. 67 (4), 600-602 (2018).
  29. Wu, D., et al. A systematic review of NSAIDs treatment for acute pancreatitis in animal studies and clinical trials. Clinical Research in Hepatology and Gastroenterology. 44, 100002 (2020).
  30. Schmidt, J., et al. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy. Annals in Surgery. 215 (1), 44-56 (1992).
  31. Junyuan, Z., et al. Quercetin protects against intestinal barrier disruption and inflammation in acute necrotizing pancreatitis through TLR4/MyD88/p38MAPK and ERS inhibition. Pancreatology. 18 (7), 742-752 (2018).
  32. Waldron, R. T., et al. The Orai Ca(2+) channel inhibitor CM4620 targets both parenchymal and immune cells to reduce inflammation in experimental acute pancreatitis. Journal of Physiology. 597 (12), 3085-3105 (2019).
  33. Petersen, O. H., Gerasimenko, J. V., Gerasimenko, O. V., Gryshchenko, O., Peng, S. The roles of calcium and ATP in the physiology and pathology of the exocrine pancreas. Physiological Reviews. 101 (4), 1691-1744 (2021).
check_url/pt/63129?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhou, X., Chen, H., Wei, X., He, Y., Xu, C., Weng, Z. Establishment of a Mouse Severe Acute Pancreatitis Model using Retrograde Injection of Sodium Taurocholate into the Biliopancreatic Duct. J. Vis. Exp. (182), e63129, doi:10.3791/63129 (2022).

View Video