Summary

Kylling rekombinante lemmer analyse for å forstå morfogenese, mønster og tidlige trinn i celledifferensiering

Published: January 12, 2022
doi:

Summary

Rekombinante lemmer er en kraftig eksperimentell modell som gjør det mulig å studere prosessen med celledifferensiering og generering av mønstre under påvirkning av embryonale signaler. Denne protokollen presenterer en detaljert metode for å generere rekombinante lemmer med kyllinglemmet-mesodermale celler, som kan tilpasses andre celletyper hentet fra forskjellige organismer.

Abstract

Celledifferensiering er den finjusterte prosessen med celleforpliktelse som fører til dannelse av forskjellige spesialiserte celletyper under etableringen av å utvikle vev og organer. Denne prosessen opprettholdes aktivt i voksen alder. Celledifferensiering er en pågående prosess under utvikling og homeostase av organer. Å forstå de tidlige trinnene i celledifferensiering er viktig for å kjenne andre komplekse prosesser som morfogenese. Dermed er rekombinante kylling lemmer en eksperimentell modell som tillater studiet av celledifferensiering og mønstergenerering under embryonale mønstersignaler. Denne eksperimentelle modellen etterligner et in vivo-miljø ; Den monterer reaggregated celler i et ektodermalt deksel hentet fra en tidlig lemknopp. Senere overføres ektodermer og implanteres i en kyllingembryoreseptor for å tillate utviklingen. Denne analysen ble hovedsakelig brukt til å evaluere mesodermale lemknoppceller; Det kan imidlertid brukes på andre stamceller eller stamceller fra andre organismer.

Introduction

Virveldyrlemmen er en formidabel modell for å studere celledifferensiering, celleproliferasjon, celledød, mønsterdannelse og morfogenese 1,2. Under utviklingen oppstår lemmer som buler fra cellene avledet fra lateral plate mesoderm1. Limb knopper består av en sentral kjerne av mesodermale celler dekket av et ektoderm. Fra denne tidlige strukturen dukker det opp en hel og velformet lem. Etter at lemknoppen oppstår, gjenkjennes tre akser: (1) den proximo-distale aksen ([PD] skulder ved fingre), (2) dorso-ventralaksen ([DV] fra baksiden av hånden til håndflaten), og (3) den fremre bakre ([AP] tommelen til fingeren). Den proksimale distale aksen avhenger av den apikale ektodermale ryggen (AER), spesialisert ektoderm som ligger på den distale spissen av lemknoppen. AER er nødvendig for utvekst, overlevelsesvedlikehold, spredning og den uavklarte tilstanden til celler som mottar signaler 2,3. På den annen side kontrollerer sonen for polariserende aktivitet (ZPA) anteroposterior mønster4, mens dorsal og ectoderm kontrollerer dorsoventral mønster 7,8. Integrering av tredimensjonal mønster innebærer kompleks krysstale mellom disse tre aksene5. Til tross for forståelse av den molekylære banen under lemutvikling, forblir åpne spørsmål om mekanismene som kontrollerer mønster og riktig utvekst for å danne en hel lem ubesvart.

Edgar Zwilling utviklet det rekombinante lemsystemet (RL) i 1964 for å studere samspillet mellom lemmesenchymale celler og ektodermet i utviklingen av lemmer6. RL-systemet samler det dissosierte lemknopp mesodermet inn i det embryonale lemekstodermet for å transplantere det inn i den dorsale delen av et donorkyllingembryo. Signalene fra ektodermet induserer uttrykket av differensieringsgener og mønstergener på en romlig-temporal måte, og induserer dermed dannelsen av en lemlignende struktur som kan rekapitulere celleprogrammene som oppstår under lemutvikling 7,8,9.

RL-modellen er verdifull for å forstå egenskapene til lemkomponenter og samspillet mellom mesodermale og ektodermale celler6. En RL kan defineres som en lemlignende struktur skapt av den eksperimentelt montering eller rekombinasjon av lemknopp mesodermale celler inne i et ektodermalt deksel6. Morfogenesen til RL avhenger av egenskapene til mesodermale celler (eller andre typer) som vil reagere på de ektodermale mønstersignalene. En av fordelene med dette eksperimentelle systemet er allsidigheten. Denne egenskapen tillater opprettelse av flere kombinasjoner ved å variere kilden til mesodermale celler, for eksempel celler fra forskjellige utviklingsstadier, fra forskjellige stillinger langs lemmen, eller hele (udisosierte) eller reaggregaterte celler 7,8,9,10. Et annet eksempel er evnen til å skaffe det embryonale ektodermet fra andre arter enn kylling, for eksempel skilpadde11, vaktel eller mus12.

I denne forstand bidrar RL-teknikken til å studere lemutvikling og samspillet mellom lemmesenchymale og ektodermale celler fra et evolusjonært synspunkt. Denne teknikken har også et stort potensial for å analysere evnen til forskjellige kilder til stamceller for å skille seg ut i en lemlignende struktur ved å dra nytte av signalene fra det embryonale ektodermet 12,13,14. I motsetning til in vitrokulturer tillater RL å evaluere differensierings- og morfogenetisk potensial for en cellepopulasjon ved å tolke embryonale signaler fra en utviklende lem 9,15.

I denne protokollen er det gitt en trinnvis guide til å utføre vellykket RL med reaggregated mesodermale lemknoppceller, og dermed åpne muligheten for å tilpasse denne protokollen med forskjellige kilder til reaggregated celler eller til og med forskjellige ectoderm kilder.

Protocol

Denne forskningen ble gjennomgått og godkjent av Institutional Review Board for care and use of Laboratory Animals of the Instituto de Investigaciones Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM, Mexico City, Mexico). Et skjematisk flytskjema over de generelle trinnene i denne protokollen vises i figur 1A. 1. Embryoinkubasjon og bestemmelse av levedyktighet Inkuber befruktede kyllingegg ved 38 °C og 60 % relativ fuktig…

Representative Results

Gjenkjenne en godt utført rekombinant lemEtter podning ble de manipulerte embryoene returnert til inkubatoren for å tillate RL å utvikle seg. Inkubasjonstiden korrelerte med kravene til eksperimentet. Likevel kan RL lett skille seg ut etter 12 timers implantasjon. For å avgjøre om implantasjonen var tilstrekkelig, ble RL observert som et fremspring som var sikkert festet til donorembryoens mesodermale vegg (figur 2A). Tvert imot, enten enten celle levedyktighet og /…

Discussion

Generelt kan RL-protokollen deles inn i fem trinn: (1) embryoinkubasjon, (2) å skaffe lemmesodermale celler for å fylle ektodermene, (3) oppnå ektodermer, (4) montering av mesodermale celler inne i ektodermale deksler og (5) transplantasjon av de fylte ektodermene i vertsembryoene. Den største begrensningen i RL-teknikken er den lange, detaljerte protokollen, som har mange kritiske punkter som krever tålmodighet for å utføre riktig. Kritiske øyeblikk må identifiseres for å kunne fullføre protokollen. Under mes…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Estefania Garay-Pacheco for bilder i figur 2 og maria Valeria Chimal-Montes de Oca for kunstverk. Dette arbeidet ble støttet av Dirección General de Asuntos del Personal Académico (DGAPA)-Universidad Nacional Autónoma de México [tilskuddsnumre IN211117 og IN213 og Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) [tilskuddsnummer 1887 CONACyT-Fronteras de la Ciencia] tildelt JC-M. JC M-L mottok postdoktorstipend fra Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT-Fronteras de la Ciencia-1887).

Materials

Alcian Blue 8GX Sigma A5268
Angled slit knife Alcon 2.75mm DB
Blunt forceps Fine Science Tools 11052-10
Collagenase type IV Gibco 1704-019
DMEM-HG Sigma D5796
Egg incubator Incumatic de Mexico Incumatic 1000
Fetal Bovine Serum Gibco 16000069
Fine surgical forceps Fine Science Tools 9115-10
Hanks Balanced Salt Solution Sigma H6648
Microcentrifuge Eppendorf 5417R
Micropipet NA NA
Palladium wire GoodFellow 7440 05-3
Petri dish Nest 705001
Pippette crmglobe PF1016
Stereomicroscope Zeiss Stemi DV4
Tape NA NA
Trypsin porcine Merck 9002 07-7
Tungsten needle GoodFellow E74-15096/01

Referências

  1. Malashichev, Y., Christ, B., Pröls, F. Avian pelvis originates from lateral plate mesoderm and its development requires signals from both ectoderm and paraxial mesoderm. Cell and Tissue Research. 331 (3), 595-604 (2008).
  2. Mahmood, R., et al. A role for FGF-8 in the initiation and maintenance of vertebrate limb bud outgrowth. Current Biology. 5 (7), 797-806 (1995).
  3. Yu, K., Ornitz, D. M. FGF signaling regulates mesenchymal differentiation and skeletal patterning along the limb bud proximodistal axis. Development. 135 (3), 483-491 (2008).
  4. Riddle, R. D., Johnson, R. L., Laufer, E., Tabin, C. Sonic hedgehog mediates the polarizing activity of the ZPA. Cell. 75 (5), 1401-1416 (1993).
  5. McQueen, C., Towers, M. Establishing the pattern of the vertebrate limb. Development. 147 (17), (2020).
  6. Zwilling, E. Development of fragmented and of dissociated limb bud mesoderm. Developmental biology. 9 (1), 20-37 (1964).
  7. Frederick, J. M., Fallon, J. F. The proportion and distribution of polarizing zone cells causing morphogenetic inhibition when coaggregated with anterior half wing mesoderm in recombinant limbs. Development. 67 (1), 13-25 (1982).
  8. Ros, M. A., Lyons, G. E., Mackem, S., Fallon, J. F. Recombinant limbs as a model to study homeobox gene regulation during limb development. Biologia do Desenvolvimento. 166 (1), 59-72 (1994).
  9. Piedra, M. E., Rivero, F. B., Fernandez-Teran, M., Ros, M. A. Pattern formation and regulation of gene expressions in chick recombinant limbs. Mechanisms of Development. 90 (2), 167-179 (2000).
  10. Crosby, G. M., Fallon, J. F. Inhibitory effect on limb morphogenesis by cells of the polarizing zone coaggregated with pre-or postaxial wing bud mesoderm. Biologia do Desenvolvimento. 46 (1), 28-39 (1975).
  11. Fallon, J. F., Simandl, B. K. Interactions between chick limb bud mesoderm and reptile ectoderm result in limb outgrowth in the limbless mutant. Anatomical Record. 208, 53-54 (1984).
  12. Kuhlman, J., Niswander, L. Limb deformity proteins: role in mesodermal induction of the apical ectodermal ridge. Development. 124 (1), 133-139 (1997).
  13. Goetinck, P. F., Abbott, U. K. Studies on limb morphogenesis. I. Experiments with the polydactylous mutant, talpid. Journal of Experimental Zoology. 155, 161-170 (1964).
  14. Carrington, J. L., Fallon, J. F. Initial limb budding is independent of apical ectodermal ridge activity; evidence from a limbless mutant. Development. 104 (3), 361-367 (1988).
  15. Fernandez-Teran, M., Piedra, M. E., Ros, M. A., Fallon, J. F. The recombinant limb as a model for the study of limb patterning, and its application to muscle development. Cell and Tissue Research. 296 (1), 121-129 (1999).
  16. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  17. Ganan, Y., Macias, D., Duterque-Coquillaud, M., Ros, M. A., Hurle, J. M. Role of TGF beta s and BMPs as signals controlling the position of the digits and the areas of interdigital cell death in the developing chick limb autopod. Development. 122 (8), 2349-2357 (1996).
  18. Ros, M. A., Simandl, B. K., Clark, A. W., Fallon, J. F. Methods for manipulating the chick limb bud to study gene expression, tissue interactions, and patterning. Developmental Biology Protocols. 137, 245-266 (2000).
  19. MacCabe, J. A., Saunders, J. W., Pickett, M. The control of the anteroposterior and dorsoventral axes in embryonic chick limbs constructed of dissociated and reaggregated limb-bud mesoderm. Biologia do Desenvolvimento. 31 (2), 323-335 (1973).
  20. Zwilling, E. Effects of contact between mutant (wingless) limb buds and those of genetically normal chick embryos: confirmation of a hypothesis. Biologia do Desenvolvimento. 39 (1), 37-48 (1974).
  21. Prahlad, K. V., Skala, G., Jones, D. G., Briles, W. E. Limbless: A new genetic mutant in the chick. Journal of Experimental Zoology. 209 (3), 427-434 (1979).
  22. Marin Llera, J. C., Lorda-Diez, C. I., Hurle, J., Chimal-Monroy, J. SCA-1/Ly6A mesodermal skeletal progenitor subpopulations reveal differential commitment of early limb bud cells. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 656999 (2021).

Play Video

Citar este artigo
Marín-Llera, J. C., Fernández-Calderón, M., Chimal-Monroy, J. Chicken Recombinant Limbs Assay to Understand Morphogenesis, Patterning, and Early Steps in Cell Differentiation. J. Vis. Exp. (179), e63183, doi:10.3791/63183 (2022).

View Video