Summary

Undersøkelse av hjertemetabolisme i isolert perfusert musehjerte med hyperpolarisert [1-13 C]pyruvat og 13C/31P NMR-spektroskopi

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Vi beskriver et eksperimentelt oppsett for administrering av hyperpolariserte 13C-merkede metabolitter i kontinuerlig perfusjonsmodus til et isolert perfusert musehjerte. En dedikert 13C-NMR-oppkjøpsmetode muliggjorde kvantifisering av metabolsk enzymaktivitet i sanntid, og en multiparametrisk 31P-NMR-analyse muliggjorde bestemmelse av vevets ATP-innhold og pH.

Abstract

Metabolisme er grunnlaget for viktige prosesser i cellulært liv. Karakterisering av hvordan metabolske nettverk fungerer i levende vev gir viktig informasjon for å forstå sykdomsmekanismen og utforme behandlinger. I dette arbeidet beskriver vi prosedyrer og metoder for å studere metabolsk aktivitet i celler i et retrograd perfusert musehjerte i sanntid. Hjertet ble isolert in situ i forbindelse med hjertestans for å minimere myokardiskemien og ble perfundert inne i et NMR-spektrometer (kjernemagnetisk resonans). Mens i spektrometeret og under kontinuerlig perfusjon ble hyperpolarisert [1-13 C] pyruvat administrert til hjertet, og de påfølgende hyperpolariserte [1-13 C] laktat- og [13C] bikarbonatproduksjonshastighetene tjente til å bestemme, i sanntid, hastighetene av laktatdehydrogenase og pyruvat dehydrogenaseproduksjon. Denne metabolske aktiviteten til hyperpolarisert [1-13C]pyruvat ble kvantifisert med NMR-spektroskopi på en modellfri måte ved bruk av produktselektiv metting-eksitasjoner oppkjøpsmetode. 31 P-spektroskopi ble brukt mellom de hyperpolariserte oppkjøpene for å overvåke hjerteenergien og pH. Dette systemet er unikt nyttig for å studere metabolsk aktivitet i det sunne og syke musehjertet.

Introduction

Endringer i hjertemetabolismen er forbundet med en rekke kardiomyopatier og danner ofte grunnlaget for de underliggende patofysiologiske mekanismene1. Imidlertid er det mange hindringer for å studere metabolisme i levende vev, da de fleste biokjemiske analyser krever homogenisering av vev og cellelyse og / eller radioaktiv sporing. Derfor er det et presserende behov for nye verktøy for å undersøke myokardmetabolisme i levende vev. Magnetisk resonans (MR) av hyperpolariserte 13C-merkede substrater muliggjør sanntidsmålinger av metabolisme i levende vev2, uten bruk av ioniserende stråling, ved å øke MR-signal-til-støy-forholdet (SNR) til det merkede stedet (e) med flere størrelsesordener3. Her beskriver vi et eksperimentelt oppsett, en oppkjøpsmetode og en analytisk tilnærming for å studere den raske metabolismen i det isolerte musehjertet og parallelt presentere indikatorer for generell vevsenergi og surhet. Hjertets pH er en verdifull indikator, da syrebasebalansen forstyrres i de tidlige stadier av hjertesykdommer og tilstander som myokardiskemi, maladaptiv hypertrofi og hjertesvikt6.

Hyperpolarisert [1-13 C] laktat og [13 C] bikarbonat produksjon fra hyperpolarisert [1-13C] pyruvat bidrar til å bestemme produksjonshastighetene av laktat dehydrogenase (LDH) og pyruvat dehydrogenase (PDH). De fleste av de tidligere studiene utført ved bruk av hyperpolariserte substrater i det isolerte gnagerhjertet brukte enten komplekse kinetiske modeller for å utlede den enzymatiske aktiviteten til LDH og PDH, eller rapporterte signalintensitetsforholdene til det hyperpolariserte produktet til et substrat uten å beregne de faktiske enzymaktivitetshastighetene 2,4,5,6,7,8,9,10, 11,12,13,14. Her brukte vi produktselektiv saturating-excitations tilnærming 15, som muliggjør overvåking av enzymaktiviteten på en modellfri måte15,16. På denne måten ble de absolutte enzymatiske hastighetene (dvs. antall mol produkt produsert per tidsenhet) bestemt. 31 P-spektroskopi ble brukt til å observere signalene fra uorganisk fosfat (Pi), fosfokreatin (PCr) og adenosintrifosfat (ATP). En multiparametrisk analyse ble brukt til å karakterisere pH-fordelingen i hjertet, som demonstrert av det heterogene kjemiske skiftet i vevets Pi-signal.

Det retrograd perfuserte musehjertet (Langendorffhjertet)17,18,19 er en ex vivo-modell for det intakte bankende hjertet. I denne modellen er hjertets levedyktighet og pH bevart i minst 80 min20, og det har vist potensial for utvinning etter en langvarig iskemisk skade21,22. Likevel kan utilsiktet variabilitet under mikrokirurgi føre til variasjon i vevets levedyktighet på tvers av hjerter. Tidligere studier har rapportert om forverring av dette hjertet over tid19; For eksempel er det observert en reduksjon i kontraktil funksjon på 5%-10% per time18. Adenosintrifosfatsignalet (ATP) har tidligere vist seg å rapportere om myokardial energisk status og levedyktighet23. Her bemerket vi at det perfuserte hjertet noen ganger kan vise utilsiktet variasjon i levedyktighetsnivåer, som demonstrert av ATP-innholdet, til tross for at vi hadde en uavbrutt perfusjons- og oksygenforsyning. Vi demonstrerer her at normalisering av LDH- og PDH-ratene til ATP-innholdet i hjertet reduserer interhjertevariabiliteten i disse hastighetene.

I den følgende protokollen beskriver vi den kirurgiske prosedyren som brukes ved hjertekanylering, isolering og påfølgende perfusjon i NMR-spektrometeret. Det er verdt å merke seg at andre kirurgiske tilnærminger rettet mot å isolere og perfisere musehjertet har blitt beskrevet før24,25.

Metodene som brukes for å skaffe data relatert til enzymatiske hastigheter i det bankende hjertet (ved bruk av 13 C-spektroskopi og hyperpolarisert [1-13C] pyruvat) og hjertets levedyktighet og surhet (ved bruk av 31P NMR-spektroskopi) er også beskrevet. Til slutt forklares de analytiske metodene for å bestemme metabolske enzymaktiviteter og vevets levedyktighet og surhet.

Protocol

Den felles etiske komiteen (IACUC) ved Det hebraiske universitetet og Hadassah Medical Center godkjente studieprotokollen for dyrevelferd (MD-19-15827-1). 1. Krebs-Henseleit buffer forberedelse En dag før forsøket, lag en modifisert versjon av Krebs-Henseleit-bufferen (KHB) 26. Oppløs i utgangspunktet 118 mM NaCl, 4,7 mM KCl, 0,5 mM pyruvat, 1,2 mM MgSO 4, 25 mM NaHCO3 og 1,2 mM KH 2 PO4 i dobbeltdestillert H2</su…

Representative Results

31P-spektrene registrert fra et musehjerte perfusert med KHB og fra bufferen alene er vist i figur 1A. Signalene fra α-, β- og γ-ATP, PCr og Pi ble observert i hjertet. Pi-signalet var sammensatt av to hovedkomponenter: i det høyere feltet (venstre side av signalet) skyldtes Pi-signalet hovedsakelig KHB ved en pH på 7,4; i det nedre feltet (høyre side av signalet) var Pi-signalet bredere og mindre homogent på grunn av det surere miljøet. Sistnevnte mønster oppstår fra hj…

Discussion

Vi demonstrerer et eksperimentelt oppsett som er designet for å undersøke hyperpolarisert [1-13C] pyruvat metabolisme, vevsenergi og pH i en isolert musehjertemodell.

De kritiske trinnene i protokollen er som følger: 1) sikre at bufferens pH er 7,4; 2) sikre at alle komponentene i bufferen er inkludert; 3) unngå blodpropp i hjertekarene ved heparininjeksjoner; 4) unngå iskemisk skade på hjertet ved å redusere metabolsk aktivitet (KCl injeksjon og iskald buffer); 5) unngå inn…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette prosjektet mottok finansiering fra Israel Science Foundation under tilskuddsavtale nr. 1379/18; Jabotinsky-stipendiet fra det israelske departementet for vitenskap og teknologi for anvendt og ingeniørvitenskap for direkte doktorgradsstudenter nr. 3-15892 for DS; og EUs forsknings- og innovasjonsprogram Horizon 2020 under tilskuddsavtale nr. 858149 (AlternativesToGd).

Materials

Equipment
HyperSense DNP Polariser Oxford Instruments 52-ZNP91000 HyperSense, 3.35 T, preclinical dissolution-DNP hyperpolarizer
NMR spectrometer  RS2D NMR Cube, 5.8 T, equiped with a 10 mm broad-band probe
Peristaltic pump  Cole-Parmer 07554-95
Temperature probe Osensa FTX-100-LUX+ NMR compatible temprature probe
Somnosuite low-flow anesthesia system Kent Scientific
Lines, tubings, suture
Platinum cured silicone tubes Cole-Parmer HV-96119-16 L/S 16 I.D. 3.1 mm 
Thin polyether ether ketone (PEEK) lines Upchurch Scientific id. 0.040”
Intravenous catheter  BD Medical 381323 22 G
Silk suture Ethicon W577H Wire diameter of 3-0
Chemicals and pharmaceuticals
[1-13C]pyruvic acid Cambridge Isotope Laboratories CLM-8077-1
Calcium chloride Sigma-Aldrich 21074 CAS: 10043-52-4
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7528 CAS: 50-99-77
Heparin sodium Rotexmedica HEP5A0130C0160
Hydrochloric acid 37% Sigma-Aldrich 258148 CAS: 7647-01-0
Insulin aspart (NovoLog) Novo Nordisk
Isoflurane Terrel
Magnesium Sulfate Sigma-Aldrich 793612 CAS: 7487-88-9
Potassium chloride Sigma-Aldrich P4504 CAS: 7447-40-7
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P9791 CAS: 7778-77-0
Sodium bicarbonate Gadot Group CAS: 144-55-8
Sodium chloride Sigma-Aldrich S9625 CAS: 7647-14-5
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 655104 CAS: 1310-73-2
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich S7907 CAS: 7558-79-4
Sodium phosphate monbasic dihydrate Merck 6345 CAS: 13472-35-0
TRIS (biotechnology grade) Amresco 0826 CAS: 77-86-1
Trityl radical OX063 GE Healthcare AS NC100136 OX063
NMR standards
13C standard sample Cambridge Isotope Laboratories DLM-72A 40% p-dioxane in benzene-D6
31P standard sample Made in house 105 mM ATP and 120 mM phenylphosphonic acid in D2O
Software
Excel 2016 Microsoft
MNova Mestrelab Research

Referências

  1. Aquaro, G. D., Menichetti, L. Hyperpolarized 13C-magnetic resonance spectroscopy: Are we ready for metabolic imaging. Circulation. Cardiovascular Imaging. 7 (6), 854-856 (2014).
  2. Schroeder, M. A., et al. Real-time assessment of Krebs cycle metabolism using hyperpolarized 13C magnetic resonance spectroscopy. FASEB Journal. 23 (8), 2529-2538 (2009).
  3. Ardenkjaer-Larsen, J. H., et al. Increase in signal-to-noise ratio of > 10,000 times in liquid-state NMR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (18), 10158-10163 (2003).
  4. Merritt, M. E., et al. Hyperpolarized C-13 allows a direct measure of flux through a single enzyme-catalyzed step by NMR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (50), 19773-19777 (2007).
  5. Ball, D. R., et al. Hyperpolarized butyrate: A metabolic probe of short chain fatty acid metabolism in the heart. Magn Reson Med. (5), 1663-1669 (2014).
  6. Khemtong, C., Carpenter, N. R., Lumata, L. L., et al. Hyperpolarized 13C NMR detects rapid drug-induced changes in cardiac metabolism. Magnetic Resonance in Medicine. 74 (2), 312-319 (2015).
  7. Mariotti, E., et al. Modeling non-linear kinetics of hyperpolarized [1-13C] pyruvate in the crystalloid-perfused rat heart. NMR in Biomedicine. 29 (4), 377-386 (2016).
  8. Moreno, K. X., Sabelhaus, S. M., Merritt, M. E., Sherry, A. D., Malloy, C. R. Competition of pyruvate with physiological substrates for oxidation by the heart: implications for studies with hyperpolarized [1-13C]pyruvate. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 298 (5), H1556-H1564 (2010).
  9. Purmal, C., et al. Propionate stimulates pyruvate oxidation in the presence of acetate. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 307 (8), H1134-H1141 (2014).
  10. Weiss, K., et al. Developing hyperpolarized 13C spectroscopy and imaging for metabolic studies in the isolated perfused rat heart. Applied Magnetic Resonance. 43 (1), 275-288 (2012).
  11. Merritt, M. E., Harrison, C., Storey, C., Sherry, A. D., Malloy, C. R. Inhibition of carbohydrate oxidation during the first minute of reperfusion after brief ischemia: NMR detection of hyperpolarized 13CO2and H13CO3. Magnetic Resonance in Medicine. 60 (5), 1029-1036 (2008).
  12. Schroeder, M. A., et al. Measuring intracellular pH in the heart using hyperpolarized carbon dioxide and bicarbonate: a 13C and 31P magnetic resonance spectroscopy study. Cardiovascular Research. 86 (1), 82-91 (2010).
  13. Ball, D. R., et al. Metabolic imaging of acute and chronic infarction in the perfused rat heart using hyperpolarised [1-13C]pyruvate. NMR in Biomedicine. 26 (11), 1441-1450 (2013).
  14. Atherton, H. J., et al. Role of PDH inhibition in the development of hypertrophy in the hyperthyroid rat heart: a combined magnetic resonance imaging and hyperpolarized magnetic resonance spectroscopy study. Circulation. 123 (22), 2552-2561 (2011).
  15. Harris, T., et al. Hyperpolarized product selective saturating-excitations for determination of changes in metabolic reaction rates in real-time. NMR in Biomedicine. 33 (2), e4189 (2020).
  16. Shaul, D., et al. Correlation between lactate dehydrogenase/pyruvate dehydrogenase activities ratio and tissue pH in the perfused mouse heart: A potential noninvasive indicator of cardiac pH provided by hyperpolarized magnetic resonance. NMR in Biomedicine. 34 (2), e4444 (2021).
  17. Jian, Z., et al. In vivo cannulation methods for cardiomyocytes isolation from heart disease models. PLoS One. 11 (8), e0160605 (2016).
  18. Sutherland, F. J., Hearse, D. J. The isolated blood and perfusion fluid perfused heart. Pharmacological Research. 41 (6), 613-627 (2000).
  19. Lateef, R., Al-Masri, A., Alyahya, A. Langendorff’s isolated perfused rat heart technique: A review. International Journal of Basic and Clinical Pharmacology. 4, 1314-1322 (2015).
  20. Cross, H. R., Radda, G. K., Clarke, K. The role of Na+/K+ ATPase activity during low-flow ischemia in preventing myocardial injury – A 31P, 23Na and 87Rb NMR spectroscopic study. Magnetic Resonance in Medicine. 34 (5), 673-685 (1995).
  21. Cross, H. R., Clarke, K., Opie, L. H., Radda, G. K. Is lactate-induced myocardial ischaemic injury mediated by decreased pH or increased intracellular lactate. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 27 (7), 1369-1381 (1995).
  22. Clarke, K., O’Connor, A. J., Willis, R. J. Temporal relation between energy metabolism and myocardial function during ischemia and reperfusion. American Journal of Physiology. 253 (2), H412-H421 (1987).
  23. Yabe, T., Mitsunami, K., Inubushi, T., Kinoshita, M. Quantitative measurements of cardiac phosphorus metabolites in coronary artery disease by 31P magnetic resonance spectroscopy. Circulation. 92 (1), 15-23 (1995).
  24. Bakrania, B., Granger, J. P., Harmancey, R. Methods for the determination of rates of glucose and fatty acid oxidation in the isolated working rat heart. Journal of Visualized Experiments. (115), e54497 (2016).
  25. Cordeiro, B., Clements, R. Murine isolated heart model of myocardial stunning associated with cardioplegic arrest. Journal of Visualized Experiments. (102), e52433 (2015).
  26. Kolwicz, S. C., Tian, R. Assessment of cardiac function and energetics in isolated mouse hearts using 31P NMR spectroscopy. Journal of Visualized Experiments. (42), e2069 (2010).
  27. Nakadate, Y., et al. Glycemia and the cardioprotective effects of insulin pre-conditioning in the isolated rat heart. Cardiovascular Diabetology. 16 (1), 43 (2017).
  28. Lauritzen, M. H., et al. Enhancing the C-13 bicarbonate signal in cardiac hyperpolarized 1-C-13 pyruvate MRS studies by infusion of glucose, insulin and potassium. NMR in Biomedicine. 26 (11), 1496-1500 (2013).
  29. Adler-Levy, Y., et al. In-cell determination of lactate dehydrogenase activity in a luminal breast cancer model – ex vivo investigation of excised xenograft tumor slices using dDNP hyperpolarized [1-13C]pyruvate. Sensors. 19 (9), 2089 (2019).
  30. Young, A. A., Barnes, H., Davison, D., Neubauer, S., Schneider, J. E. Fast left ventricular mass and volume assessment in mice with three-dimensional guide-point modeling. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 30 (3), 514-520 (2009).
  31. Bailey, I. A., Williams, S. R., Radda, G. K., Gadian, D. G. Activity of phosphorylase in total global ischaemia in the rat heart. A phosphorus-31 nuclear-magnetic-resonance study. Biochemical Journal. 196 (1), 171-178 (1981).
  32. Lutz, N. W., Le Fur, Y., Chiche, J., Pouyssegur, J., Cozzone, P. J. Quantitative in vivo characterization of intracellular and extracellular pH profiles in heterogeneous tumors: A novel method enabling multiparametric pH analysis. Pesquisa do Câncer. 7 (15), 4616-4628 (2013).
  33. Harris, T., Gamliel, A., Sosna, J., Gomori, J. M., Katz-Brull, R. Impurities of [1-13C]pyruvic acid and a method to minimize their signals for hyperpolarized pyruvate metabolism studies. Applied Magnetic Resonance. 49 (10), 1085-1098 (2018).
  34. Cunningham, C. H., et al. Hyperpolarized 13C metabolic MRI of the human heart initial experience. Circulation Research. 119 (11), 1177-1182 (2016).
  35. Kurhanewicz, J., et al. Hyperpolarized 13C MRI: Path to clinical translation in oncology. Neoplasia. 21 (1), 1-16 (2019).
  36. Miloushev, V. Z., et al. Metabolic imaging of the human brain with hyperpolarized 13C pyruvate demonstrates 13C lactate production in brain tumor patients. Pesquisa do Câncer. 78 (14), 3755-3760 (2018).
  37. Park, I., et al. Development of methods and feasibility of using hyperpolarized carbon-13 imaging data for evaluating brain metabolism in patient studies. Magnetic Resonance in Medicine. 80 (3), 864-873 (2018).
  38. Grist, J. T., et al. Quantifying normal human brain metabolism using hyperpolarized [1-13C]pyruvate and magnetic resonance imaging. Neuroimage. 189, 171-179 (2019).
  39. Nelson, S. J., et al. Metabolic imaging of patients with prostate cancer using hyperpolarized [1-C]pyruvate. Science Translational Medicine. 5 (198), (2013).
  40. Stødkilde-Jørgensen, H., et al. Pilot study experiences with hyperpolarized [1-13C]pyruvate MRI in pancreatic cancer patients. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 51 (3), 961-963 (2019).
  41. Autry, A. W., et al. Measuring tumor metabolism in pediatric diffuse intrinsic pontine glioma using hyperpolarized carbon-13 MR metabolic imaging. Contrast Media and Molecular Imaging. 2018, 3215658 (2018).
  42. Chung, B. T., et al. First hyperpolarized [2-13C]pyruvate MR studies of human brain metabolism. Journal of Magnetic Resonance. 309, 106617 (2019).
  43. Rider, O. J., et al. Noninvasive in vivo assessment of cardiac metabolism in the healthy and diabetic human heart using hyperpolarized 13C MRI. Circulation Research. 126 (6), 725-736 (2020).
check_url/pt/63188?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Shaul, D., Sapir, G., Lev-Cohain, N., Sosna, J., Gomori, J. M., Katz-Brull, R. Investigating Cardiac Metabolism in the Isolated Perfused Mouse Heart with Hyperpolarized [1-13C]Pyruvate and 13C/31P NMR Spectroscopy. J. Vis. Exp. (194), e63188, doi:10.3791/63188 (2023).

View Video