Summary

عزل خلايا العضلات الملساء القلبية والوعائية عن أسماك الزرد البالغة واليافعة واليرقات والجنينية للدراسات الكهروفسيولوجية

Published: February 09, 2022
doi:

Summary

يصف هذا البروتوكول العزلة الحادة لخلايا العضلات الملساء القلبية والوعائية القابلة للحياة من أسماك الزرد البالغة واليافعة واليرقات والجنينية (Danio rerio) ، وهي مناسبة للدراسات الكهربية.

Abstract

منذ فترة طويلة تستخدم أسماك الزرد ككائن فقاري نموذجي في أبحاث القلب والأوعية الدموية. كانت الصعوبات التقنية لعزل الخلايا الفردية عن أنسجة القلب والأوعية الدموية لأسماك الزرد محدودة في دراسة خصائصها الكهروفسيولوجية. تم وصف الطرق السابقة لتشريح قلوب أسماك الزرد وعزل الخلايا العضلية القلبية البطينية. ومع ذلك ، لم يتم تفصيل عزل الخلايا العضلية الأذينية والوعائية لأسماك الزرد للتوصيف الكهروفسيولوجي. يصف هذا العمل البروتوكولات الأنزيمية الجديدة والمعدلة التي توفر بشكل روتيني خلايا عضلية بطينية وأذينية معزولة من أسماك الزرد الصغرى والبالغة ، بالإضافة إلى خلايا العضلات الملساء الوعائية (VSM) من الشرايين المنتفخة ، وهي مناسبة لتجارب المشبك الرقعة. لم يكن هناك أي دليل أدبي على الدراسات الكهروفسيولوجية على أنسجة القلب والأوعية الدموية لأسماك الزرد المعزولة في مراحل التطور الجنينية واليرقات. يتم عرض تقنيات التفكك الجزئي التي تسمح بتجارب المشبك التصحيحي على الخلايا الفردية من اليرقات والقلوب الجنينية.

Introduction

الزرد هي أسماك تيليوست صغيرة تستخدم منذ فترة طويلة ككائن فقاري نموذجي1 وبرزت مؤخرا كنظام فقاري قابل للحياة لفحص الجينات والأدوية عالية الإنتاجية 2,3. ومع ذلك ، فإن التحليل الفسيولوجي لأنسجة الزرد ليس متطورا بشكل جيد. في نظام القلب والأوعية الدموية ، تم وصف طرق لتشريح قلوب الزرد4 وعزل الخلايا العضلية القلبية البطينية5،6،7. هناك عدد قليل من الأوصاف التفصيلية للعزل الفعال للخلايا العضلية الأذينية ولا توجد تقارير عن استعدادات العضلات الملساء الوعائية (VSM) لدراسات المشبك الرقعي.

يصف العمل الحالي منهجية عزل الخلايا العضلية القلبية والوعائية لأسماك الزرد ، وهي قابلة للتطبيق للدراسات الكهروفسيولوجية والوظيفية. يتضمن هذا النهج تعديلات على البروتوكولات المبلغ عنها سابقا لعزل الخلايا العضلية البطينية لأسماك الزرد 5,6 ويكيف الطرق من عزل خلايا VSM للثدييات8 ، مما يسمح بعزل خلايا العضلات الملساء الوعائية لأسماك الزرد عن الشرايين المنتفخة (BA). تؤدي البروتوكولات إلى غلة فعالة للخلايا الأذينية والبطينية و VSM المعزولة من أسماك الزرد التي يمكن استخدامها بشكل موثوق في دراسات المشبك التصحيحي لمدة تصل إلى 8 ساعاتو 9.

على الرغم من يرقاتها الشفافة تقريبا التي تتطور بالكامل خارج الكائن الحي الأبوي ، إلا أن استكشاف إمكاناتها الجينية الموعودة في دراسة تطور القلب والأوعية الدموية كان محدودا بسبب التحديات في استخراج الأنسجة وتحليلها في سن مبكرة. تتناول المقالة الحالية هذا القيد من خلال إظهار تجارب المشبك التصحيحي على قلوب الزرد المعزولة في وقت مبكر من 3 أيام بعد الإخصاب (dpf) ، باستخدام طريقة استخراج منشورة ومكيفة10.

Protocol

تم تربية جميع أسماك الزرد (سلالة من النوع البري AB ، من الذكور والإناث) وصيانتها والتعامل معها للتجارب وفقا للمبادئ التوجيهية للجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوانات بجامعة واشنطن (IACUC). 1. عزل الأذين والبطين والشرايين المنتفخة عن أسماك الزرد البالغة واليافعة واليرقات</st…

Representative Results

توفر البروتوكولات المذكورة أعلاه بشكل موثوق وروتيني ما يكفي من الخلايا العضلية القلبية والوعائية ذات الجودة المتسقة القابلة لدراسات المشبك الرقعة كما ورد مؤخرا في دراسات مكثفة لقنوات البوتاسيوم الحساسة ل ATP (KATP) في نمط الزرد البري والمتحور cardiovasculature9. تظهر الآثار التمث…

Discussion

كانت الطرق السابقة لعزل الخلايا العضلية البطينية لأسماك الزرد 5,6 ، التي تهدف إلى توليد الخلايا العضلية للزراعة أو الدراسات الكهروفسيولوجية ، توفر خلايا ذات عائد أقل وتنطوي على خطوات طويلة من أجهزة الطرد المركزي المتعددة التي تؤثر سلبا على جودة الخلية وقاب…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من خلال منح المعاهد الوطنية للصحة HL140024 إلى CGN و HL150277 إلى CMC. تم إنشاء الشكل 1 والشكل 2 مع BioRender.com.

Materials

1.5 mL Centrifuge Tubes Eppendorf 22364111
10 mL Syringe Fisher Scientific 14-955-459
19 Guage Needle BD 305187
2,3-Butanedione Monoxime (BDM) Sigma-Aldrich B0753
5 mL Centrifuge Tubes Sigma-Aldrich EP0030119479 For embryonic heart isolation
Axopatch 200B amplifier and Digidata 1200 digitizer Molecular Devices Used for action potential recordings
Benchtop Mini Centrifuge Southern Labware MLX-106
Blebbistatin Sigma-Aldrich 203390
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A9418
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C4901
Cell-Strainer Sieve Cole-Parmer EW-06336-71 100 μm sieve for embryonic heart isolation
Collagenase Type H Sigma-Aldrich C8051
Collagenase Type II Worthington LS004176
Collagenase Type IV Worthington LS004188
Curved Forceps Fisher Scientific 16-100-110
DTT Sigma-Aldrich D0632
EGTA Sigma-Aldrich 324626
Elastase Worthington LS003118
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma-Aldrich F2442
Fine Forceps Dumont Style #5 Ceramic-coated forceps for adult and juvenile CV tissue isolation (Need two)
Glucose Sigma-Aldrich G8270
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Insulin Sigma-Aldrich I2643
K2ATP Sigma-Aldrich A8937
Large Petri Dish Sigma-Aldrich P5981 For dissociation
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M8266
Micro-Hematocrit Capillary Tubes Kimble Chase 41A2502 Soda lime glass for patch pipettes
Papain Worthington LS003118
Pasteur Pipettes Fisher Scientific 13-678-6A
Petri Dish Sigma-Aldrich P5606 100 mm x 20 mm, for embryonic heart isolation
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich 806552
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P3911
Scissors Fine Science Tools 14090-09 For adult and juvenile zebrafish decapitation
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S9888
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich S8045
Super Fine Forceps Dumont Style #SF For isolating larval CV tissues (Need two)
Taurine Sigma-Aldrich T0625
Thermoshaker ThermoFisher Scientific 13687711
Tricaine Methanesulfonate (MS222) For anaesthetizing zebrafish larvae
Trypsin Inhibitor Sigma-Aldrich T6522

Referências

  1. Vascotto, S. G., Beckham, Y., Kelly, G. M. The zebrafish’s swim to fame as an experimental model in biology. Biochemistry and Cell Biology. 75 (5), 479-485 (1997).
  2. Love, D. R., Pichler, F. B., Dodd, A., Copp, B. R., Greenwood, D. R. Technology for high-throughput screens: The present and future using zebrafish. Current Opinion in Biotechnology. 15 (6), 564-571 (2004).
  3. Keßler, M., Rottbauer, W., Just, S. Recent progress in the use of zebrafish for novel cardiac drug discovery. Expert Opinion on Drug Discovery. 10 (11), 1231-1241 (2015).
  4. Singleman, C., Holtzman, N. G. Heart dissection in larval, juvenile and adult zebrafish, Danio rerio. Journal of Visualized Experiments. (55), e3165 (2011).
  5. Brette, F., et al. Characterization of isolated ventricular myocytes from adult zebrafish (Danio rerio). Biochemical and Biophysical Research Communications. 374 (1), 143-146 (2008).
  6. Sander, V., Sune, G., Jopling, C., Morera, C., Izpisua Belmonte, J. C. Isolation and in vitro culture of primary cardiomyocytes from adult zebrafish hearts. Nature protocol. 8, 800-809 (2013).
  7. Nemtsas, P., Wettwer, E., Christ, T., Weidinger, G., Ravens, U. Adult zebrafish heart as a model for human heart? An electrophysiological study. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 48 (1), 161-171 (2010).
  8. Huang, Y., et al. Cardiovascular consequences of KATP overactivity in Cantu syndrome. JCI insight. 3 (15), 137799 (2018).
  9. Singareddy, S. S., et al. ATP-sensitive potassium channels in zebrafish cardiac and vascular smooth muscle. The Journal of Physiology. , (2021).
  10. Burns, C. G., MacRae, C. A. Purification of hearts from zebrafish embryos. BioTechniques. 40 (3), 274-282 (2006).
  11. Seiler, C., Abrams, J., Pack, M. Characterization of zebrafish intestinal smooth muscle development using a novel sm22α-b promoter. Developmental Dynamics. 239, 2806-2812 (2010).
  12. Yang, X. Y., et al. Whole amount in situ hybridization and transgene via microinjection in zebrafish. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 36 (3), 243-247 (2003).
  13. Kompella, S. N., Brette, F., Hancox, J. C., Shiels, H. A. Phenanthrene impacts zebrafish cardiomyocyte excitability by inhibiting IKr and shortening action potential duration. The Journal of General Physiology. 153 (2), 202012733 (2021).
  14. Jou, C. J., Spitzer, K. W., Tristani-Firouzi, M. Blebbistatin effectively uncouples the excitation-contraction process in zebrafish embryonic heart. Cellular Physiology and Biochemistry. 25 (4-5), 419-424 (2010).
check_url/pt/63225?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Singareddy, S. S., McClenaghan, C., Roessler, H. I., Tryon, R., Nichols, C. G. Isolation of Cardiac and Vascular Smooth Muscle Cells from Adult, Juvenile, Larval and Embryonic Zebrafish for Electrophysiological Studies. J. Vis. Exp. (180), e63225, doi:10.3791/63225 (2022).

View Video