Summary

Massaproductie van entomopathogene schimmels, Metarhizium robertsii pt Metarhizium pinghaense, voor commerciële toepassing tegen insectenplagen

Published: March 31, 2022
doi:

Summary

Entomopathogene schimmels hebben aan belang gewonnen als de biologische bestrijders van landbouwinsectenplagen. In deze studie werd de massaproductie van een voldoende aantal veerkrachtige infectieuze propagules van Zuid-Afrikaanse isolaten van zowel Metarhizium robertsii als M. pinghaense voor commerciële toepassing tegen insectenplagen met succes uitgevoerd met behulp van landbouwproducten.

Abstract

Entomopathogene schimmels van het Metarhizium anisopliae soortencomplex hebben aan belang gewonnen als de biologische bestrijders van landbouwinsectenplagen. De toename van de resistentie tegen plagen tegen chemische insecticiden, de groeiende bezorgdheid over de negatieve effecten van insecticiden op de menselijke gezondheid en de milieuvervuiling door pesticiden hebben geleid tot een wereldwijde drive om nieuwe duurzame strategieën voor gewasbescherming en ongediertebestrijding te vinden. Eerder zijn pogingen gedaan om dergelijke entomopathogene schimmels (EPF) -soorten zoals Beauveria bassiana massaal te kweken. Er zijn echter slechts beperkte pogingen ondernomen om Metarhizium robertsii pt M. pinghaense massaal te kweken voor gebruik tegen insectenplagen. Deze studie was gericht op het massaal produceren van een voldoende aantal veerkrachtige infectieuze propagules van Zuid-Afrikaanse isolaten van M. robertsii pt M. pinghaense voor commerciële toepassing. Drie landbouwproducten, haver in vlokken, gerst in vlokken en rijst, werden gebruikt als de EPF vaste gistingssubstraten. Twee inentingsmethoden, conidiale suspensies en de vloeibare schimmelcultuur van blastospores werden gebruikt om de vaste substraten te enten. Inenting met behulp van conidiale suspensies bleek relatief minder effectief te zijn, omdat verhoogde niveaus van verontreiniging werden waargenomen op de vaste substraten ten opzichte van bij gebruik van de blastospore-inentingsmethode. Vlokken haver bleken geen geschikt groeisubstraat te zijn voor zowel M. robertsii als M. pinghaense, omdat er geen droge conidia uit het substraat werden geoogst. Vlokken gerst bleek de productie van M. robertsii conidia te bevoordelen boven die van M. pinghaense, en een gemiddelde van 1,83 g ± 1,47 g droge M. robertsii conidia en nul gram M. pinghaense conidia werd geoogst van het substraat. Rijstkorrels bleken de conidiale massaproductie van zowel M. pinghaense – als M. robertsii-isolaten te bevorderen, met een gemiddelde van respectievelijk 8,2 g ± 4,38 g en 6 g ± 2 g geoogst van het substraat.

Introduction

Entomopathogene schimmels (EPF) hebben aan belang gewonnen als gewasbeschermingsmiddelen in de biologische bestrijding van belangrijke landbouwinsectenplagen 1,2. De entomopathogenen, die van nature in de bodem voorkomen, veroorzaken epizoötie in de populaties van verschillende plaagsoorten3. De soorten EPF zijn gastheerspecifiek en vormen relatief weinig risico’s in termen van het aanvallen van niet-doelsoorten, en ze zijn niet giftig voor het milieu4. EPF heeft een uniek mechanisme voor het binnendringen van hun gastheer, evenals voor het verspreiden en volharden in hun directe omgeving1. Ze vallen de gastheer voornamelijk aan via aseksuele sporen die zich hechten aan en doordringen in de nagelriem van de gastheer om binnen te dringen en zich te vermenigvuldigen in de gastheerhemocoel. De gastheer sterft uiteindelijk als gevolg van uitputting van de hemolymfe voedingsstoffen of als gevolg van de toxemie veroorzaakt door de toxische metabolieten die door de schimmel worden vrijgegeven. Na de dood, onder ideale omgevingsomstandigheden, komt de schimmel tevoorschijn op het buitenoppervlak (openlijke mycose) van het gastheerkadaver 5,6.

Groeiende bezorgdheid over de negatieve effecten van chemische residuen op de menselijke gezondheid, milieuvervuiling en de ontwikkeling van resistentie tegen plagen hebben geleid tot de wereldwijde drang om de input van insecticiden op chemische basis te verminderen en alternatieve, nieuwe en duurzame strategieën voor gewasbescherming en ongediertebestrijding te vinden 6,7,8 . Dit heeft mogelijkheden geboden om microbiële insecticiden te ontwikkelen voor gebruik in Integrated Pest Management (IPM) -programma’s, die ecologisch gunstiger strategieën zijn dan conventionele chemische bestrijding 3,8.

Om een succesvol microbieel bestrijdingsmiddel voor een landbouwplaag te ontwikkelen, moet eerst een geschikt organisme worden geïsoleerd, gekarakteriseerd, geïdentificeerd en de pathogeniciteit ervan voor het doelorganisme worden bevestigd. Een eenvoudige, kosteneffectieve methode voor grootschalige productie van het microbiële agens is echter vereist om een levensvatbaar product te produceren voor gebruik in biologische bestrijdingsprogramma’s 9,10,11,12,13. Massaproductie van aanzienlijke hoeveelheden entomopathogenen van goede kwaliteit is afhankelijk van de microbiële stam, het milieu, de doelplaag, de formulering, de markt, de toepassingsstrategie en het gewenste eindproduct 14,15,16. EPF kan in massa worden geproduceerd met behulp van vloeibare substraatfermentatie om blastospores te produceren of het fermentatieproces van vaste substraten om luchtconidia 6,17,18 te produceren. Het massaproductie- en formuleringsproces van entomopathogenen heeft echter een directe invloed op de virulentie, de kosten, de houdbaarheid en de veldeffectiviteit van het eindproduct. Voor succesvol gebruik in IPM moet het productieproces van de entomopathogenen gemakkelijk te uitvoeren zijn, minimale arbeid vereisen, een hoge opbrengstconcentratie van virulente, levensvatbare en persistente propagules produceren en goedkoop zijn 4,13,14,16.

Het begrijpen van de voedingsbehoeften van entomopathogenen is belangrijk voor massateelt met alle kweekmethoden 4,12. De voedingscomponenten van het productiemedium hebben een aanzienlijke invloed op de eigenschappen van de resulterende propagules, waaronder biocontrole-werkzaamheid, opbrengst, uitdrogingstolerantie en persistentie 8,19,20,21. De optimalisatie van productieprocedures is ontworpen om dergelijke factoren aan te pakken22. Voor EPF zijn de belangrijkste vereisten voor goede groei, sporulatie en massaproductie van schimmelconidia voldoende vocht, optimale groeitemperatuur, pH, gasuitwisseling van CO2 en O2 en voeding, waaronder goede fosfor-, koolhydraat-, koolstof- en stikstofbronnen18.

Jaronski en Jackson18 beschrijven de vaste substraatfermentatiemethode als de meest efficiënte en de dichtstbijzijnde benaderingsmethode voor het natuurlijke proces voor EPF-productie ten opzichte van de vloeibare substraatfermentatiemethode, omdat onder natuurlijke omstandigheden het schimmelconidium wordt gedragen op vaste rechtopstaande structuren, zoals het oppervlak van insectenkadavers. Landbouwproducten en bijproducten die zetmeel bevatten, worden meestal gebruikt voor de massaproductie van hypocrealean schimmels, omdat de schimmels zetmeel gemakkelijk ontbinden door afscheiding van sterk geconcentreerde hydrolytische enzymen uit hun hyphale uiteinden, om de vaste stof binnen te dringen en om toegang te krijgen tot de voedingsstoffen die aanwezig zijn in de stof 11,17,18,23 . De graanproducten bieden ook de vereisten voor een gezonde biomassaproductie, omdat, wanneer ze worden gehydrateerd en gesteriliseerd, de substraten verdere voedingsstoffen uit elk vloeibaar medium kunnen opnemen 16,18,24.

Eerder probeerden verschillende studies EPF-soorten zoals Beauveria bassiana (Bals. Vuil., Cordyceps fumosorosea (Wize) Kelper B. Shrestha & Spatafora, Verticillium lecanii (Zimm.) Viegas en enkele van de Metarhizium anisopliae (Metschn.) Sorokin soortencomplex isoleert op verschillende substraten 16,23,24. Dergelijke in massa geproduceerde en commercieel ontwikkelde isolaten omvatten Green Muscle® (stam IMI 330189), ontwikkeld uit M. anisopliae var Metarhizium acridum (Driver & Milner) J.F. Bisch, Rehner & Humber, Metarhizium 69 (Meta 69 stam ICIPE69), en Real Metarhizium 69 (L9281), ontwikkeld uit M. anisopliae, en Breedband® (stam PPRI 5339) en Eco-Bb®, ontwikkeld uit B. bassiana25.26 . Er zijn echter beperkte pogingen gedaan om Metarhizium robertsii J.F. Bisch., S.A. Rehner & Humber en Metarhizium pinghaense Chen & Guo te masseren. Deze twee isolaten werden in een eerdere studie geselecteerd als de meest effectieve voor de bestrijding van de wolluis, Pseudococcus viburni Signoret (Hemiptera: Pseudococcidae)27. Daarom was de huidige studie gericht op het formuleren en massaal produceren van een voldoende aantal veerkrachtige infectieuze propagules van de lokale isolaten van M. robertsii pt M. pinghaense voor commerciële toepassing tegen insectenplagen. De vaste substraatfermentatiemethode werd gebruikt om de schimmelconidia voor beide EPF-isolaten massaal te produceren. Twee EPF-inentingsmethoden, met behulp van conidiale suspensies en de vloeibare schimmelcultuur van blastospores, werden gebruikt om de vaste substraten te enten.

Protocol

1. Bron van schimmelstammen Gebruik Zuid-Afrikaanse geïsoleerde schimmelstammen van zowel M. pinghaense 5 HEID (GenBank Toetredingsnummer: MT367414/MT895630) als M. robertsii 6EIKEN (MT378171/MT380849), verzameld uit appelboomgaarden in de provincie West-Kaap, Zuid-Afrika. Kweekculturen van elk EPF-isolaat op 60 g Sabouraud dextrose-agarmedium, aangevuld met 1 g gistextract (SDAY) en 10 μL streptomycine.OPMERKING: Incubeer EPF-culturen bij een gecontro…

Representative Results

Een afname van de inhoudsmassa van de culturen op rijst voor zowel de M. pinghaense als de M. robertsii werd in de loop van de tijd waargenomen tijdens het droogstadium van de schimmelculturen, waarbij geen of weinig verandering werd waargenomen in de massa zodra de culturen droog waren (figuur 5). Het geoogste droge schimmel conidia poeder van zowel de M. pinghaense als de M. robertsii is weergegeven in figuur 6. <p class…

Discussion

De succesvolle integratie van microbiële agentia voor de biologische bestrijding van belangrijke landbouwinsectenplagen in een agro-ecosysteem hangt af van zowel succes als gemak van massaproductie van de entomopathogenen als eerste stap onder laboratoriumomstandigheden. De massaproductie van EPF is belangrijk voor de grootschalige toepassing en beschikbaarheid van EPF-producten voor IPM-programma’s met behulp van biologische bestrijding 9,10,11,12,13.</sup…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen Hort Pome, Hort Stone en het Technology and Human Resources for Industry Programme (THRIP: TP14062571871) bedanken voor de financiering van het project.

ORCID:
http://orcid.org/0000-0002-5118-3578 Letodi L. Mathulwe

Antoinette P. Malan http://orcid.org/0000-0002-9257-0312

Nomakholwa F. Stokwe http://orcid.org/0000-0003-2869-5652

Materials

0.05% Tween 20 Lasec Added to conidial suspensions to allow fungal spores to mix with water
20 mL McCartney bottles Lasec Used to make conidial suspensions
Aluminium foil Used as a cover of the cotton wool plugs on 250-mL flask
Autoclave Used to sterilize materials and ingredients used for the conidia production process
Autoclave bags Lasec Fermentation bags or solid substrate containers
Autoclave tape Lasec To secure PVC pipes on the fermentation bags
Brown Kraft paper bags Used to dry conidia cultures on agricultural grains
Bunsen burnner Labnet (Labnet International, Inc.) Used to flame equipment (surgical blades,inoculating loops and rims of flasks)
Clear edge test sieve Used to separate fungal conidia from agricultural grain substrates
Corn steep liquor SIGMA 66071-94-1 Ingredient of the blastospore liquid medium
Cotton Wool Lasec Used as plug of the neck for fermentation bags
Duran laboratory bottles Neolab Used to autoclave SDA medium and distilled water
Electrical tape Used to tape and seal the sieve joints to prevent the escape of conidial dust
ENDECOTTS test sieve Used to separate fungal conidia from agricultural grain substrates
Erlenmeyer Flasks, Narrow neck,250-mL flask Lasec Carrier of the blastospore liquid medium
Ethanol (99%) Lasec Used to sterilize surgical blades and inoculating loops
Flaked barley Health Connection Wholefoods Agricultural grain used as a solid substrate growth medium for conidia of both M. pinghaense and M. robertsii
Flaked oats Tiger brands Agricultural grain used as a solid substrate growth medium for conidia of both M. pinghaense and M. robertsii
Glucose Merck Ingredient of the blastospore liquid medium
Growth Chamber/ incubators For growing fungal conidia culture
Haemocytometer Used to determine conidial concentrations
Inoculating loops Lasec For harvesting spores to innoculate liquid medium for blastospores growth
Kitchen rolling pin Used to manipulate the solid grain substrate bed
Laminar flow Cabinet ESCO Laminar Flow Cabinet Provide as sterile environment during substrate inoculation
Metarhizium pinghaense conidia Stellenbosch University 5HEID Cultures used to mass culture conidia of Metarhizium pinghaense
Metarhizium robertsii conidia Stellenbosch University 6EIKEN Cultures used to mass culture conidia of Metarhizium robertsii
Microscope ZEIZZ (Scope. A1) Used to determine conidial concentrations and conidial viability
Orbital shaker IncoShake- LABOTEC Used for the blastospore production process
Parboiled rice Spekko Agricultural grain used as a solid substrate growth medium for conidia of both M. pinghaense and M. robertsii
Penicillin-Streptomycin SIGMA Added to the SDA medium to prevent bacterial contamination
Petri-dishes Lasec Containers for the SDA medium
Pipettes and pipette tips Labnet (BioPette PLUS) Used to measure liquids ingredients
Polyvinylchloride Marley waste pipe Used to create a neck for the fermentation bag
Potassium phosphate dibasic (K2HPO4) SIGMA-ALDRICH Ingredient of the blastospore liquid medium
Rubber band Used to secure the secure the surgical paper over the fermentation bag PVC pipe necks
Sabaroud dextrose agar (SDA) NEOGEN Culture Media Medium used to culture spores of both Metarhizium pinghaense and Metarhizium robertsii
Sterile distilled water To hydrate agricultural grains, to make conidial suspensions
Sticky pad Used to secure the seives on the vibratory shaker
Surgical blade Lasec Used to scrape off spores from fungal cultures
Surgical paper Lasec Used to cover the PVC necks and cotton wool plugs of the fermentation bag
Vibratory shaker Used to shake conidia off the agricultural grain substrates
Vortex mixer Labnet (Labnet International, Inc.) Used to mix conidial suspensions in Mc Cartney bottles
Yeast extract Biolab Added to the SDA medium to improve spore germination and growth
Zipper-lock bags GLAD Used to to store harvested fungal conidia

Referências

  1. Shah, P. A., Pell, J. K. Entomopathogenic fungi as biological control agents. Applied Microbiology and Biotechnology. 61 (5), 413-423 (2003).
  2. Mathulwe, L. L., Malan, A. P., Stokwe, N. F. A review of the biology and control of the obscure mealybug, Pseudococcus viburni (Hemiptera: Pseudococcidae), with special reference to biological control using entomopathogenic fungi and nematodes. African Entomology. 29 (1), 1-16 (2020).
  3. Ibrahim, L., Laham, L., Touma, A., Ibrahim, S. Mass production, yield, quality, formulation and efficacy of entomopathogenic Metarhizium anisopliae conidia. Current Journal of Applied Science and Technology. 9 (5), 427-440 (2015).
  4. Banu, J. G., Rajalakshmi, S. Standardisation of media for mass multiplication of entomopathogenic fungi. Indian Journal of Plant Protection. 42 (1), 91-93 (2014).
  5. Roberts, D. W., Humber, R. A., Cole, G. T., Kendrick, W. B. Entomogenous fungi. Biology of Conidial Fungi. , 201-236 (1981).
  6. Feng, M. G., Poprawski, T. J., Khachatourians, G. G. Production, formulation and application of the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana for insect control. Current status. Biocontrol Science and Technology. 4 (1), 3-34 (1994).
  7. Karanja, L. W., Phiri, N. A., Oduor, G. I. Effect of different solid substrates on mass production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae entomopathogens. The Proceedings of the12th KARI Biennial Scientific Conference. , 8-12 (2010).
  8. Prasad, C. S., Pal, R. Mass production and economics of entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae and Verticillium lecanii on agricultural and industrial waste. Scholars Journal of Agriculture and Veterinary Sciences. 1 (1), 28-32 (2014).
  9. Ehlers, R. U. Mass production of entomopathogenic nematodes for plant protection. Applied Microbiology and Biotechnology. 56 (5), 623-633 (2001).
  10. Pham, T. A., Kim, J. J., Kim, S. G., Kim, K. Production of blastospore of entomopathogenic Beauveria bassiana in a submerged batch culture. Mycobiology. 37 (3), 218-224 (2009).
  11. Bhadauria, B. P., Puri, S., Singh, P. K. Mass production of entomopathogenic fungi using agricultural products. The Bioscan. 7 (2), 229-232 (2012).
  12. Latifian, M., Rad, B., Amani, M. Mass production of entomopathogenic fungi Metarhizium anisopliae by using agricultural products based on liquid-solid diphasic method for date palm pest control. International Journal of Farming and Allied Sciences. 3 (4), 368-372 (2014).
  13. Agale, S. V., Gopalakrishnan, S., Ambhure, K. G., Chandravanshi, H., Gupta, R., Wani, S. P. Mass production of entomopathogenic fungi (Metarhizium anisopliae) using different grains as a substrate. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 7 (1), 2227-2232 (2018).
  14. Jackson, M. A. Optimizing nutritional conditions for the liquid culture production of effective fungal biological control agents. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology. 19 (3), 180-187 (1997).
  15. Deshpande, M. V. Mycopesticides production by fermentation. Potential and challenges. Critical Reviews in Microbiology. 25 (3), 229-243 (1999).
  16. Sahayaraj, K., Namasivayam, S. K. R. Mass production of entomopathogenic fungi using agricultural products and by products. African Journal of Biotechnology. 7 (12), 1907-1910 (2008).
  17. Feng, K. C., Liu, L. B., Tzeng, Y. M. Verticillium lecanii spore production in solid-state and liquid-state fermentations. Bioprocess Engineering. 23 (1), 25-29 (2000).
  18. Jaronski, S. T., Jackson, M. A., Lacey, L. A. Mass production of entomopathogenic Hypocreales. Manual of Techniques in Invertebrate Pathology 2nd edition. , 255-284 (2012).
  19. Vega, F. E., Jackson, M. A., Mercandier, G., Poprawski, T. J. The impact of nutrition on spore yields for various fungal entomopathogens in liquid culture. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 19 (4), 363-368 (2003).
  20. El Damir, M. Effect of growing media and water volume on conidial production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. Journal of Biological Sciences. 6 (2), 269-274 (2006).
  21. Pandey, A. K., Kanaujia, K. R. Effect of different grains as solid substrates on sporulation, viability and pathogenicity of Metarhizium anisopliae (Metschnikoff) Sorokin. Journal of Biological Control. 22 (2), 369-374 (2008).
  22. Kassa, A., et al. Whey for mass production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. Mycological Research. 112 (5), 583-591 (2008).
  23. Sharma, S., Gupta, R. B. L., Yadavam, C. P. S. Selection of a suitable medium for mass multiplication of entomofungal pathogens. Indian Journal of Entomology. 64 (3), 254-261 (2002).
  24. Bich, G. A., Castrillo, M. L., Villalba, L. L., Zapata, P. D. Evaluation of rice by-products, incubation time, and photoperiod for solid state mass multiplication of the biocontrol agents Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. Agronomy Research. 16 (5), 1921-1930 (2018).
  25. Price, R. E., Müller, E. J., Brown, H. D., D’Uamba, P., Jone, A. A. The first trial of a Metarhizium anisopliae var. acridum mycoinsecticide for the control of the red locust in a recognised outbreak area. International Journal of Tropical Insect Science. 19 (4), 323-331 (1999).
  26. Hatting, J. L., Moore, S. D., Malan, A. P. Microbial control of phytophagous invertebrate pests in South Africa. Current status and future prospects. Journal of Invertebrate Pathology. 165, 54-66 (2019).
  27. Mathulwe, L. L., Malan, A. P., Stokwe, N. F. Laboratory screening of entomopathogenic fungi and nematodes for pathogenicity against the obscure mealybug, Pseudococcus viburni (Hemiptera: Pseudococcidae). Biocontrol Science and Technology. , (2021).
  28. Inglis, G. D., Enkerli, J., Goettel, M. S. Laboratory techniques used for entomopathogenic fungi: Hypocreales. Manual of Techniques in Invertebrate Pathology. , 189-253 (2012).
  29. Mehta, J., et al. Impact of carbon & nitrogen sources on the Trichoderma viride (Biofungicide) and Beauveria bassiana (entomopathogenic fungi). European Journal of Experimental Biology. 2 (6), 2061-2067 (2012).
  30. Burges, H. D. Formulation of mycoinsecticides. Formulation of Microbial Biopesticides. , 131-185 (1998).
check_url/pt/63246?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Mathulwe, L. L., Malan, A. P., Stokwe, N. F. Mass Production of Entomopathogenic Fungi, Metarhizium robertsii and Metarhizium pinghaense, for Commercial Application Against Insect Pests. J. Vis. Exp. (181), e63246, doi:10.3791/63246 (2022).

View Video