Summary

Induksjon av hjerteinfarkt og myokardiskemi-reperfusjonsskade hos mus

Published: January 19, 2022
doi:

Summary

Her beskriver vi en enkel og reproduserbar metode som kan indusere hjerteinfarkt eller myokardiskemi-reperfusjonsskade hos mus ved presisjonsligering av venstre fremre nedadgående koronararterie gjennom mikromanipulasjon.

Abstract

Akutt hjerteinfarkt er en vanlig hjerte- og karsykdom med høy dødelighet. Myokardreperfusjonsskade kan motvirke de gunstige effektene av hjertereflow og indusere sekundær myokardskade. En enkel og reproduserbar modell for hjerteinfarkt og myokardiskemi-reperfusjonsskade er et godt verktøy for forskere. Her beskrives en tilpassbar metode for å lage en myokardinfarkt (MI) modell og MIRI ved presisjonsligering av venstre fremre synkende koronararterie (LAD) gjennom mikromanipulasjon. Nøyaktig og reproduserbar ligaturposisjonering av LAD bidrar til å oppnå konsistente resultater for hjerteskade. ST-segmentendringer kan bidra til å identifisere modellens nøyaktighet. Serumnivået av hjertetroponin T (cTnT) brukes til å vurdere myokardskaden, hjerteultralyd brukes til å evaluere myokardial systolisk funksjon, og Evans-Blue / trifenyltetrazoliumkloridfarging brukes til å måle infarktstørrelse. Generelt reduserer denne protokollen prosedyrens varighet, sikrer kontrollerbar infarktstørrelse og forbedrer musens overlevelse.

Introduction

Akutt hjerteinfarkt (AMI) er en vanlig hjerte- og karsykdom på verdensbasis og bærer høy dødelighet1. Fremskritt innen teknologi gjør tidlig og effektiv revaskularisering tilgjengelig for AMI-pasienter. Etter disse behandlingene hos noen pasienter kan myokardiskemi-reperfusjonsskade (MIRI) forekomme2. Det er derfor av stor betydning å forstå virkningsmekanismene og hvordan man kan forbedre MI/MIRI. Mus er mye brukt som modeller på grunn av deres lave kostnader, raske avlstid og letthet for å gjøre genetiske endringer3. Forskere har utviklet forskjellige metoder for å modellere MIRI og MI i dyr 4,5,6,7,8,9. Denne strategien fremmer forskning, men de ulike kriteriene og metodene som brukes, kompliserer tolkningen av resultater blant forskerteam.

Hos mus har MI blitt indusert av isoproterenol10, kryoskade 11,12 eller cauterization13. MI kan lett induseres av isoproterenol, men den patofysiologiske prosessen er forskjellig fra den i klinisk MI. Kryoskadeindusert MI har dårlig konsistens, fremkaller overdreven myokardskade rundt venstre fremre nedadgående koronararterie (LAD), og kan lett indusere arytmi. Cauterization-indusert MI er ganske forskjellig fra den naturlige prosessen med hjerteinfarkt, og den inflammatoriske reaksjonen i det brennende området er mer intens; I tillegg har den kirurgiske tilnærmingen tekniske vanskeligheter. Videre er det noen laboratorier14 som utvikler MI-modell hos minigriser ved hjelp av ballongblokkering eller embolisering eller trombosemetode gjennom intervensjonsteknikk. Alle disse metodene kan forårsake okklusjon av kranspulsårene direkte, men å trenge koronar angiografi-enheter og fremfor alt de altfor tynne musekoronararteriene gjør at disse operasjonene ikke er praktiske. For MIRI var forskjellene mellom ulike modeller ganske beskjedne, for eksempel bruk av respirator/mikromanipulasjon eller ikke 5,6.

Her beskrives en enkel og pålitelig metode som kan indusere MI og MIRI-modellen, tilpasset fra tidligere publiserte metoder 4,5,6,7,8,9,15. Denne metoden kan simulere patofysiologiske prosesser ved direkte blokkering av LAD gjennom ligering. Videre, ved å lindre ligeringen, kan denne modellen også simulere reperfusjonsskade. I denne protokollen brukes et dissekerende mikroskop for LAD-visualisering. Deretter kan forskeren enkelt identifisere LAD. Deretter fører nøyaktig ligering av LAD til reproduserbar og forutsigbar blodokklusjon og ventrikulær iskemi. Videre kan elektrokardiografi (EKG) endringer brukes til å bekrefte iskemi og reperfusjon i tillegg til fargeendringene i LAD observert under et mikroskop. Denne strategien fører til kortere prosedyrevarighet, lavere risiko for kirurgiske komplikasjoner og færre eksperimentelle mus som trengs. Metodene for troponin-T-testen, hjerte ultralyd og trifenyltetrazoliumklorid (TTC) farging er også beskrevet. Samlet sett er denne protokollen nyttig for studier av MI/MIR-mekanismen, så vel som for oppdagelse av legemidler.

Protocol

Dyrestudier er godkjent av Animal Care and Utilization Committee ved Huazhong University of Science and Technology (Wuhan, Kina). MERK: Hannmus C57BL/6J (8-10 uker) brukes som modeller. Mus har fri tilgang til mat og vann og er avlet i spesifikke patogenfrie forhold. Rommet holdes under kontrollert temperatur (22 °C ± 2 °C) og fuktighet (45 %-65 %). Mus blir utsatt for et 12-timers lys / mørkt miljø på Animal Care Facility of Tongji Medical School (Wuhan, Kina) i henhold til retningslinj…

Representative Results

Den eksperimentelle arbeidsflyten er vist i figur 1A. Forskeren kan planlegge tidsnodene i henhold til eksperimentelt design ved studiestart. Varigheten av LAD ligering er i henhold til forskningsformålet. For MI kan forskningen ignorere reperfusjonstrinnet. Hjerte ultralyd er tilgjengelig på ulike stadier av studien fordi den er ikke-invasiv, mens Evans-Blue / TTC-farging kun kan utføres når musen ofres. For forskning som fokuserer på fibrose og ventrikulær remodellering, er observasj…

Discussion

De siste årene har etableringen av modeller for MI og MIRI i klinisk og vitenskapelig forskning utviklet seg raskt20,21. Imidlertid er det fortsatt noen spørsmål, for eksempel handlingsmekanismer og hvordan man kan forbedre MI/MIRI, som må løses. Her beskrives en modifisert protokoll for etablering av en murinmodell av MI og MIRI. Flere sentrale punkter må vurderes nøye.

Det første hovedpunktet er endotrakeal intubasjon. Noen p…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (82070317, 81700390 til Jibin Lin, 8210021880 til Bingjie Lv og 82000428 til Boyuan Wang) og National Key R &D Program of China (2017YFA0208000 til Shaolin He).

Materials

0.9 % sodium chloride solution Kelun Industry Group,China
4% paraformaldehyde fixing solution Servicebio,China G1101
4-0 silk suture Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products,China C412
8-0 suture Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products,China H801
Buprenorphine IsoReag,China IR-11190
Camera Canon,Japan EOS 80D
Depilatory cream Veet,French
Elecsys Troponin T hs STAT Roche,Germany
Electrochemical luminescence immunoanalyzer Roche,Germany Elecsys 2010
Evans blue Sigma,America E2129
Eye scissors Shanghai Medical Instruments,China JC2303
Haemostatic forceps Shanghai Medical Instruments,China J31020
High frequency in vivo imaging systems Visualsonics,Canada Vevo2100
Ibuprofen PerFeMiKer,China CLS-12921
Intravenous catheter Introcan,Germany 4254090B
Ketamine Sigma-Aldrich,America  K2753
Medical alcohol Huichang ,China
Microneedle holders Shanghai Medical Instruments,China WA2040
Microscopic shears Shanghai Medical Instruments,China WA1040
Microsurgical forceps Shanghai Medical Instruments,China WA3020
Mouse electrocardiograph Techman,China BL-420F
Needle holders Shanghai Medical Instruments,China JC3202
operating floor Chico,China ZK-HJPT
PE-10 tube Huamei,China
Pentobarbital Merck,America 1030001
Rodent Ventilator Shanghai Alcott Biotech,China ALC-V8S-P
Stereo microscope Aomei Industry,China SZM0745-STL3-T3
Surgical thermostatic heating pad Globalebio, China GE0-20W
Triphenyltetrazolium chloride Servicebio,China G1017
Xylazine Huamaike Biochemicals and Life Science Research Prouducts,China 323004

Referências

  1. Reed, G. W., Rossi, J. E., Cannon, C. P. Acute myocardial infarction. Lancet. 389 (10065), 197-210 (2017).
  2. Ibanez, B., Heusch, G., Ovize, M., Van de Werf, F. Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury. Journal of the American College of Cardiology. 65 (14), 1454-1471 (2015).
  3. Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Missouri Medicine. 110 (3), 207-211 (2013).
  4. Kim, S. C., et al. A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e3896 (2012).
  5. Xu, Z., Alloush, J., Beck, E., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (86), e51329 (2014).
  6. Xu, Z., McElhanon, K. E., Beck, E. X., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury. Methods in Molecular Biology. 1717, 145-153 (2018).
  7. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: a model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (94), e52206 (2014).
  8. Reichert, K., et al. Murine left anterior descending (LAD) coronary artery ligation: An improved and simplified model for myocardial infarction. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (122), e55353 (2017).
  9. Lugrin, J., Parapanov, R., Krueger, T., Liaudet, L. Murine myocardial infarction model using permanent ligation of left anterior descending coronary artery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (150), e59591 (2019).
  10. Li, X., et al. Cardioprotective effects of Puerarin-V on isoproterenol-induced myocardial infarction mice is associated with regulation of PPAR-Y/NF-Kappa B pathway. Molecules. 23 (12), 3322 (2018).
  11. Vanden Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: A comparison with coronary artery ligation. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).
  12. Wang, D., et al. A cryoinjury model to study myocardial infarction in the mouse. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (151), e59958 (2019).
  13. Brooks, W. W., Garibaldi, B. A., Conrad, C. H. Myocardial injury in the mouse induced by transthoracic cauterization. Laboratory Animal Science. 48 (4), 374-378 (1998).
  14. Tao, B., et al. Preclinical modeling and multimodality imaging of chronic myocardial infarction in minipigs induced by novel interventional embolization technique. EJNMMI Research. 6 (1), 59 (2016).
  15. Gao, E., et al. A novel and efficient model of coronary artery ligation and myocardial infarction in the mouse. Circulation Research. 107 (12), 1445-1453 (2010).
  16. Scofield, S. L., Singh, K. Confirmation of myocardial ischemia and reperfusion injury in mice using surface pad electrocardiography. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (117), e54814 (2016).
  17. Gnyawali, S. C., et al. High-frequency high-resolution echocardiography: First evidence on non-invasive repeated measure of myocardial strain, contractility, and mitral regurgitation in the ischemia-reperfused murine heart. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (41), e1781 (2010).
  18. Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. Murine echocardiography and ultrasound imaging. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (42), e2100 (2010).
  19. Shibata, R., et al. Adiponectin protects against myocardial ischemia-reperfusion injury through AMPK- and COX-2-dependent mechanisms. Nature Medicine. 11 (10), 1096-1103 (2005).
  20. Anderson, J. L., Morrow, D. A. Acute myocardial infarction. New England Journal of Medicine. 376 (21), 2053-2064 (2017).
  21. Frank, A., et al. Myocardial ischemia reperfusion injury: From basic science to clinical bedside. Seminars in Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 16 (3), 123-132 (2012).
  22. Mares, R. G., et al. Studying the innate immune response to myocardial infarction in a highly efficient experimental animal model. Romanian Journal of Cardiology. 31 (3), 573-585 (2021).
  23. Fernandez, B., et al. The coronary arteries of the C57bl/6 mouse strains: Implications for comparison with mutant models. Journal of Anatomy. 212 (1), 12-18 (2008).
  24. Zhang, R., Hess, D. T., Reynolds, J. D., Stamler, J. S. Hemoglobin S-nitrosylation plays an essential role in cardioprotection. Journal of Clinical Investigation. 126 (12), 4654-4658 (2016).
  25. Sorop, O., et al. Experimental animal models of coronary microvascular dysfunction. Cardiovascular Research. 116 (4), 756-770 (2020).
  26. Sicard, P., et al. Right coronary artery ligation in mice: A novel method to investigate right ventricular dysfunction and biventricular interaction. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 316 (3), 684-692 (2019).
  27. Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Fish, K., Hajjar, R. J. Variability in coronary artery anatomy affects consistency of cardiac damage after myocardial infarction in mice. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 313 (2), 275-282 (2017).
  28. Kato, R., Foex, P. Myocardial protection by anesthetic agents against ischemia-reperfusion injury: An update for anesthesiologists. Canadian Journal of Anaesthesia. 49 (8), 777-791 (2002).
check_url/pt/63257?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lv, B., Zhou, J., He, S., Zheng, Y., Yang, W., Liu, S., Liu, C., Wang, B., Li, D., Lin, J. Induction of Myocardial Infarction and Myocardial Ischemia-Reperfusion Injury in Mice. J. Vis. Exp. (179), e63257, doi:10.3791/63257 (2022).

View Video