Summary

एडिपोसाइट्स से जुड़े विकारों का अध्ययन करने के लिए एडिपोसाइट्स की शुद्ध आबादी में मानव आईपीएससी का मजबूत भेदभाव

Published: February 09, 2022
doi:

Summary

प्रोटोकॉल प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (आईपीएससी) से एक शुद्ध एडिपोसाइट आबादी की पीढ़ी की अनुमति देता है। रेटिनोइक एसिड का उपयोग आईपीएससी को मेसेनकाइमल स्टेम सेल (एमएससी) में अलग करने के लिए किया जाता है जिसका उपयोग एडिपोसाइट्स के उत्पादन के लिए किया जाता है। फिर, शुद्ध एडिपोसाइट्स प्राप्त करने के लिए नील लाल धुंधलापन पर आधारित एक सॉर्टिंग दृष्टिकोण का उपयोग किया जाता है।

Abstract

प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (आईपीएससी) प्रौद्योगिकी में हालिया प्रगति ने एडिपोसाइट्स सहित विभिन्न सेल प्रकारों की पीढ़ी की अनुमति दी है। हालांकि, वर्तमान भेदभाव विधियों में कम दक्षता है और एडिपोसाइट्स की समरूप आबादी का उत्पादन नहीं करते हैं। यहां, हम उच्च उपज में मेसेनकाइमल स्टेम सेल (एमएससी) का उत्पादन करने के लिए एक ऑल-ट्रांस रेटिनोइक-आधारित विधि का उपयोग करके इस समस्या को दरकिनार करते हैं। सेल प्रसार, अस्तित्व और आसंजन को नियंत्रित करने वाले मार्गों को विनियमित करके, हमारी भेदभाव रणनीति भ्रूण निकायों (ईबी) की कुशल पीढ़ी की अनुमति देती है जो मल्टीपोटेंट एमएससी की शुद्ध आबादी में अंतर करती है। इस विधि द्वारा उत्पन्न एमएससी की उच्च संख्या एडिपोसाइट्स उत्पन्न करने के लिए एक आदर्श स्रोत प्रदान करती है। हालांकि, एडिपोसाइट्स भेदभाव से उत्पन्न नमूना विषमता एक चुनौती बनी हुई है। इसलिए, हमने एफएसीएस का उपयोग करके लिपिड-असर परिपक्व एडिपोसाइट्स को शुद्ध करने के लिए नील लाल-आधारित विधि का उपयोग किया। इस सॉर्टिंग रणनीति ने हमें कम नमूना विषमता और बढ़ी हुई सेल कार्यक्षमता के साथ एडिपोसाइट्स के पूल का उपयोग करके एडिपोसाइट्स से जुड़े चयापचय विकारों को मॉडल करने के लिए एक विश्वसनीय तरीका स्थापित करने की अनुमति दी।

Introduction

मेसेनकाइमल स्टेम सेल (एमएससी) एडिपोसाइट्स, ओस्टियोसाइट्स और चोंड्रोसाइट्स जैसे मेसोडर्मल मूल की कोशिकाओं के उत्पादन के लिए एक प्रभावी क्षणभंगुर संसाधन के रूप में कार्य करते हैं, जिनका उपयोग आगे उनके संबंधित आनुवंशिक विकारों के मॉडलिंग के लिए किया जा सकता है। हालांकि, पिछले दृष्टिकोण वयस्क ऊतकों से इन एमएससी को प्राप्त करने पर निर्भर थे1, जिसने उन्हें दाताओं से उच्च संख्या में प्राप्त करने की चुनौती दी, और उन्हें इन विट्रो कल्चर स्थितियों में कार्यात्मक रूपसे व्यवहार्य रखने की सीमा 1,2। इन बाधाओं ने इन विट्रो में एमएससी उत्पन्न करने के लिए एक प्रोटोकॉल होने की एक बड़ी मांग पैदा की है। मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (आईपीएससी) का उपयोग एमएससी के मूल्यवान स्रोत के रूप में किया जा सकता है, जो एमएससी विशेषताओं 3,4,5 का प्रदर्शन करता है। आईपीएससी-व्युत्पन्न एमएससी का उपयोग कई बीमारियों में चिकित्सीय विकल्प के रूप में किया जा सकता है। इसके अलावा, एडिपोसाइट्स उत्पन्न करने के लिए आईपीएससी-व्युत्पन्न एमएससी की क्षमता, उन्हें मानव एडिपोजेनेसिस, मोटापे और एडिपोसाइट्स से जुड़े विकारों का अध्ययन करने के लिए एक मूल्यवान इन विट्रो मानव मॉडल बनाती है।

एडिपोसाइट्स के वर्तमान विभेदन प्रोटोकॉल को दो समूहों में वर्गीकृत किया जा सकता है, जिसमें से एक में रासायनिक या प्रोटीन-आधारित कॉकटेल का उपयोग करके एडिपोसाइट्स के भेदभाव को शामिल किया जाता है, जिससे 30% -60% 6,7,8,9 की परिणामी उपज मिलती है, जबकि दूसरे में 80% -90% की उपज देने के लिए एडिपोसाइट्स विकास को नियंत्रित करने वाले प्रमुख प्रतिलेखन कारकों के मजबूत प्रेरण के लिए आनुवंशिक हेरफेर शामिल है11. हालांकि, आनुवंशिक हेरफेर एडिपोसाइट्स भेदभाव की प्राकृतिक प्रक्रिया को पुन: उत्पन्न नहीं करता है, और अक्सर एडिपोजेनेसिस के दौरान आने वाले सूक्ष्म प्रतिमानों को मुखौटा करता है, जिससे यह रोग मॉडलिंग उद्देश्यों के लिए अप्रभावी हो जाता है12,13. इसलिए, हम नील लाल रंग का उपयोग करके लिपिड-असर एडिपोसाइट्स को फ्लोरोसेंटली टैग करके अपरिपक्व लोगों से रासायनिक रूप से व्युत्पन्न परिपक्व एडिपोसाइट्स को सॉर्ट करने का एक तरीका प्रस्तुत करते हैं।

यहां हम एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जिसमें सभी ट्रांस रेटिनोइक एसिड के साथ आईपीएससी व्युत्पन्न भ्रूण निकायों (ईबी) के क्षणिक इनक्यूबेशन शामिल हैं ताकि तेजी से प्रसार एमएससी की एक उच्च संख्या का उत्पादन किया जा सके, जिसका उपयोग एडिपोसाइट्स14 उत्पन्न करने के लिए किया जा सकता है। हम लिपोफिलिक डाई का उपयोग करके उनके लिपिड बूंदों को फ्लोरोसेंटली टैग करके विषम भेदभाव पूल से रासायनिक रूप से व्युत्पन्न परिपक्व एडिपोसाइट्स को सॉर्ट करने का एक तरीका भी प्रस्तुत करते हैं; नील लाल। यह परिपक्व एडिपोसाइट्स की शुद्ध आबादी की पीढ़ी को बढ़ी हुई कार्यक्षमता के साथ एडिपोसाइट्स से जुड़े चयापचय विकारों को सटीक रूप से मॉडल करने की अनुमति देगा।

Protocol

अध्ययन को उचित संस्थागत अनुसंधान नैतिकता समिति द्वारा अनुमोदित किया गया है और हेलसिंकी की 1964 की घोषणा और इसके बाद के संशोधनों या तुलनीय नैतिक मानकों में निर्धारित नैतिक मानकों का पालन किया गया है। प्र…

Representative Results

मेसेनकाइमल भेदभाव के दौरान कोशिकाओं की योजनाबद्ध और आकृति विज्ञान: एमएससी में आईपीएससी के भेदभाव में ईबी गठन, एमएससी भेदभाव और एमएससी विस्तार (चित्रा 1) में फैले विकास के विभिन्न चरण शामिल ह…

Discussion

यह प्रोटोकॉल उच्च उपज और दक्षता में एमएससी प्रदान करने की अपनी क्षमता के कारण सर्वोपरि महत्व रखता है। एमएससी का यह बड़े पैमाने पर उत्पादन आरए14,15 के 10 μM के साथ आईपीएससी-व्युत्पन्न ई…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को कतर राष्ट्रीय अनुसंधान कोष (क्यूएनआरएफ) (अनुदान संख्या एनपीआरपी 10-1221-160041) से अनुदान द्वारा वित्त पोषित किया गया था। मरियम अघाड़ी को कतर नेशनल रिसर्च फंड (क्यूएनआरएफ) से जीएसआरए छात्रवृत्ति द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

Adiponectin Abcam ab22554 Adipocyte maturation marker
anti-CD105 BD Pharmingen 560839 MSC differentiation marker
anti-CD14 BD Pharmingen 561712 MSC differentiation marker
anti-CD19 BD Pharmingen 555415 MSC differentiation marker
anti-CD34 BD Pharmingen 555824 MSC differentiation marker
anti-CD44 abcam ab93758 MSC differentiation marker
anti-CD45 BD Pharmingen
560975
MSC differentiation marker
anti-CD73 BD Pharmingen 550256 MSC differentiation marker
anti-CD90 BD Pharmingen 555596 MSC differentiation marker
bFGF R&D 233-FP MSC culture media supplement
C/EBPA Abcam ab40761 Adipocyte maturation marker
Dexamethasone Torics 1126 Adipocyte differentiation media supplement
FABP4 Abcam ab93945 Adipocyte maturation marker
Fetal bovine serum ThermoFisher 10082147 MSC culture media supplement
Glutamax ThermoFisher 35050-061 MSC culture media supplement
IBMX Sigma Aldrich I5879 Adipocyte differentiation media supplement
Indomethacin Sigma Aldrich I7378 Adipocyte differentiation media supplement
Insulin Sigma Aldrich 91077C Adipocyte differentiation media supplement
Knockout DMEM ThermoFisher 12660012 Basal media for preparing matrigel
Low glucose DMEM ThermoFisher 11885084 MSC culturing media
Matrigel Corning 354230 Coating matrix
MEM-alpha ThermoFisher 12561056 Adipocyte differentiation media
Nilered Sigma Aldrich 19123 Sorting marker for adipocyte
Penicillin ThermoFisher 15140122 MSC/Adipocyte media supplement
Phosphate-buffered saline ThermoFisher 14190144 wash buffer
Pierce™ 20X TBS Buffer Thermo Fisher 28358 wash buffer
PPARG Cell Signaling Technology 2443 Adipocyte maturation marker
ReLeSR Stem Cell Technologies 5872 Dissociation reagent
Retinoic acid Sigma Aldrich R2625 MSC differentiation media supplement
Rock inhibitor Tocris 1254/10 hPSC culture media supplement
Roziglitazone Sigma Aldrich R2408 Adipocyte differentiation media supplement
StemFlex ThermoFisher A334901 hPSC culture media
Triton Thermo Fisher 28314 Permebealization reagent
Trypsin ThermoFisher 25200072 Dissociation reagent
Tween 20 Sigma Aldrich P7942 Wash buffer

Referências

  1. Hass, R., Kasper, C., Bohm, S., Jacobs, R. Different populations and sources of human mesenchymal stem cells (MSC): A comparison of adult and neonatal tissue-derived MSC. Cell Communication and Signaling: CCS. 9, 12 (2011).
  2. Wagner, W., et al. Aging and replicative senescence have related effects on human stem and progenitor cells. PLoS One. 4 (6), 5846 (2009).
  3. Brown, P. T., Squire, M. W., Li, W. J. Characterization and evaluation of mesenchymal stem cells derived from human embryonic stem cells and bone marrow. Cell and Tissue Research. 358 (1), 149-164 (2014).
  4. Trivedi, P., Hematti, P. Derivation and immunological characterization of mesenchymal stromal cells from human embryonic stem cells. Experimental Hematology. 36 (3), 350-359 (2008).
  5. Barberi, T., Willis, L. M., Socci, N. D., Studer, L. Derivation of multipotent mesenchymal precursors from human embryonic stem cells. PLoS Medicine. 2 (6), 161 (2005).
  6. Xiong, C., et al. Derivation of adipocytes from human embryonic stem cells. Stem Cells and Development. 14 (6), 671-675 (2005).
  7. Cuaranta-Monroy, I., et al. Highly efficient differentiation of embryonic stem cells into adipocytes by ascorbic acid. Stem Cell Research. 13 (1), 88-97 (2014).
  8. van Harmelen, V., et al. Differential lipolytic regulation in human embryonic stem cell-derived adipocytes. Obesity (Silver Spring). 15 (4), 846-852 (2007).
  9. Noguchi, M., et al. In vitro characterization and engraftment of adipocytes derived from human induced pluripotent stem cells and embryonic stem cells. Stem Cells and Development. 22 (21), 2895-2905 (2013).
  10. Ahfeldt, T., et al. Programming human pluripotent stem cells into white and brown adipocytes. Nature Cell Biology. 14 (2), 209-219 (2012).
  11. Lee, Y. K., Cowan, C. A. Differentiation of white and brown adipocytes from human pluripotent stem cells. Methods in Enzymology. 538, 35-47 (2014).
  12. Abdelalim, E. M. Modeling different types of diabetes using human pluripotent stem cells. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 78 (6), 2459-2483 (2021).
  13. Abdelalim, E. M., Bonnefond, A., Bennaceur-Griscelli, A., Froguel, P. Pluripotent stem cells as a potential tool for disease modelling and cell therapy in diabetes. Stem Cell Reviews and Reports. 10 (3), 327-337 (2014).
  14. Karam, M., Younis, I., Elareer, N. R., Nasser, S., Abdelalim, E. M. Scalable Generation of mesenchymal stem cells and adipocytes from human pluripotent stem cells. Cells. 9 (3), (2020).
  15. Karam, M., Abdelalim, E. M. Robust and highly efficient protocol for differentiation of human pluripotent stem cells into mesenchymal stem cells. Methods in Molecular Biology. , (2020).
  16. Li, L., Bennett, S. A., Wang, L. Role of E-cadherin and other cell adhesion molecules in survival and differentiation of human pluripotent stem cells. Cell Adhesion & Migration. 6 (1), 59-70 (2012).
  17. Lai, L., Bohnsack, B. L., Niederreither, K., Hirschi, K. K. Retinoic acid regulates endothelial cell proliferation during vasculogenesis. Development. 130 (26), 6465-6474 (2003).
  18. Chanchevalap, S., Nandan, M. O., Merlin, D., Yang, V. W. All-trans retinoic acid inhibits proliferation of intestinal epithelial cells by inhibiting expression of the gene encoding Kruppel-like factor 5. FEBS Letters. 578 (1-2), 99-105 (2004).
  19. di Masi, A., et al. Retinoic acid receptors: from molecular mechanisms to cancer therapy. Molecular Aspects of Medicine. 41, 1 (2015).
  20. Simandi, Z., Balint, B. L., Poliska, S., Ruhl, R., Nagy, L. Activation of retinoic acid receptor signaling coordinates lineage commitment of spontaneously differentiating mouse embryonic stem cells in embryoid bodies. FEBS Letters. 584 (14), 3123-3130 (2010).
  21. De Angelis, M. T., Parrotta, E. I., Santamaria, G., Cuda, G. Short-term retinoic acid treatment sustains pluripotency and suppresses differentiation of human induced pluripotent stem cells. Cell Death & Disease. 9 (1), 6 (2018).
  22. Li, L., Dong, L., Wang, Y., Zhang, X., Yan, J. Lats1/2-mediated alteration of hippo signaling pathway regulates the fate of bone marrow-derived mesenchymal stem cells. BioMed Research International. 2018, 4387932 (2018).
  23. Moldes, M., et al. Peroxisome-proliferator-activated receptor gamma suppresses Wnt/beta-catenin signalling during adipogenesis. The Biochemical Journal. 376, 607-613 (2003).
  24. Ross, S. E., et al. Inhibition of adipogenesis by Wnt signaling. Science. 289 (5481), 950-953 (2000).
  25. Wang, Y. K., Chen, C. S. Cell adhesion and mechanical stimulation in the regulation of mesenchymal stem cell differentiation. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 17 (7), 823-832 (2013).
  26. Mohsen-Kanson, T., et al. Differentiation of human induced pluripotent stem cells into brown and white adipocytes: role of Pax3. Stem Cells. 32 (6), 1459-1467 (2014).
  27. Billon, N., et al. The generation of adipocytes by the neural crest. Development. 134 (12), 2283-2292 (2007).
  28. Li, N., Kelsh, R. N., Croucher, P., Roehl, H. H. Regulation of neural crest cell fate by the retinoic acid and Pparg signalling pathways. Development. 137 (3), 389-394 (2010).
  29. Ussar, S., et al. ASC-1, PAT2, and P2RX5 are cell surface markers for white, beige, and brown adipocytes. Science Translational Medicine. 6 (247), (2014).
  30. Festy, F., et al. Surface protein expression between human adipose tissue-derived stromal cells and mature adipocytes. Histochemistry and Cell Biology. 124 (2), 113-121 (2005).
  31. Cai, L., Wang, Z., Ji, A., Meyer, J. M., vander Westhuyzen, D. R. Scavenger receptor CD36 expression contributes to adipose tissue inflammation and cell death in diet-induced obesity. PLoS One. 7 (5), 36785 (2012).
  32. Mesuret, G., et al. A neuronal role of the Alanine-Serine-Cysteine-1 transporter (SLC7A10, Asc-1) for glycine inhibitory transmission and respiratory pattern. Scientific Reports. 8 (1), 8536 (2018).
  33. Silverstein, R. L., Febbraio, M. CD36, a scavenger receptor involved in immunity, metabolism, angiogenesis, and behavior. Science Signaling. 2 (72), (2009).
  34. Brooimans, R. A., van Wieringen, P. A., van Es, L. A., Daha, M. R. Relative roles of decay-accelerating factor, membrane cofactor protein, and CD59 in the protection of human endothelial cells against complement-mediated lysis. European Journal of Immunology. 22 (12), 3135-3140 (1992).
  35. Davies, A., et al. CD59, an LY-6-like protein expressed in human lymphoid cells, regulates the action of the complement membrane attack complex on homologous cells. The Journal of Experimental Medicine. 170 (3), 637-654 (1989).
  36. Lapid, K., Graff, J. M. Form(ul)ation of adipocytes by lipids. Adipocyte. 6 (3), 176-186 (2017).
  37. Aldridge, A., et al. Assay validation for the assessment of adipogenesis of multipotential stromal cells–a direct comparison of four different methods. Cytotherapy. 15 (1), 89-101 (2013).
  38. Schaedlich, K., Knelangen, J. M., Navarrete Santos, A., Fischer, B., Navarrete Santos, A. A simple method to sort ESC-derived adipocytes. Cytometry A. 77 (10), 990-995 (2010).
  39. Costa, L. A., et al. Functional heterogeneity of mesenchymal stem cells from natural niches to culture conditions: implications for further clinical uses. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 78 (2), 447-467 (2021).
check_url/pt/63311?article_type=t

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Citar este artigo
Aghadi, M., Karam, M., Abdelalim, E. M. Robust Differentiation of Human iPSCs into a Pure Population of Adipocytes to Study Adipocyte-Associated Disorders. J. Vis. Exp. (180), e63311, doi:10.3791/63311 (2022).

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