Summary

मल्टीमॉडल नॉनलाइनियर ऑप्टिकल माइक्रोस्कोपी का उपयोग करके नैनोकणों के सेलुलर अपटेक की बायोमोलेक्यूलर इमेजिंग

Published: May 16, 2022
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Summary

यह लेख एक वर्णक्रमीय-फोकसिंग मॉड्यूल और एक दोहरे-आउटपुट पल्स लेजर के एकीकरण को प्रस्तुत करता है, जो सोने के नैनोकणों और कैंसर कोशिकाओं के तेजी से हाइपरस्पेक्ट्रल इमेजिंग को सक्षम करता है। इस काम का उद्देश्य एक मानक लेजर स्कैनिंग माइक्रोस्कोप पर मल्टीमॉडल नॉनलाइनियर ऑप्टिकल तकनीकों के विवरण को प्रदर्शित करना है।

Abstract

जीवित प्रणालियों में सोने के नैनोकणों (एयूएनपी) की जांच करना एयूएनपी और जैविक ऊतकों के बीच बातचीत को प्रकट करने के लिए आवश्यक है। इसके अलावा, एक इमेजिंग प्लेटफॉर्म में उत्तेजित रमन स्कैटरिंग (एसआरएस), दो-फोटॉन उत्तेजित फ्लोरेसेंस (टीपीईएफ), और क्षणिक अवशोषण (टीए) जैसे नॉनलाइनर ऑप्टिकल सिग्नल को एकीकृत करके, इसका उपयोग सेलुलर संरचनाओं और एयूएनपी के बायोमोलेक्यूलर कंट्रास्ट को मल्टीमॉडल तरीके से प्रकट करने के लिए किया जा सकता है। यह लेख एक मल्टीमॉडल नॉनलाइनियर ऑप्टिकल माइक्रोस्कोपी प्रस्तुत करता है और इसे कैंसर कोशिकाओं में एयूएनपी की रासायनिक रूप से विशिष्ट इमेजिंग करने के लिए लागू करता है। यह इमेजिंग प्लेटफॉर्म अधिक कुशल कार्यात्मक एयूएनपी विकसित करने और यह निर्धारित करने के लिए एक नया दृष्टिकोण प्रदान करता है कि क्या वे ट्यूमर, पेरीसेलुलर या सेलुलर रिक्त स्थान के आसपास वास्कुलचर के भीतर हैं।

Introduction

सोने के नैनोकणों (एयूएनपी) ने बायोकंपैटिबल इमेजिंग जांच के रूप में बड़ी क्षमता दिखाई है, उदाहरण के लिए, विभिन्न बायोमेडिकल अनुप्रयोगों में प्रभावी सतह-संवर्धित रमन स्पेक्ट्रोस्कोपी (एसईआरएस) सब्सट्रेट के रूप में। प्रमुख अनुप्रयोगों मेंकैंसर उपचार के लिए बायोसेंसिंग, बायोइमेजिंग, सतह-संवर्धित स्पेक्ट्रोस्कोपी और फोटोथर्मल थेरेपी जैसे क्षेत्र शामिल हैं। इसके अलावा, जीवित प्रणालियों में एयूएनपी की जांच करना एयूएनपी और जैविक प्रणालियों के बीच बातचीत का आकलन और समझने के लिए महत्वपूर्ण है। फूरियर ट्रांसफॉर्म इन्फ्रारेड (एफटीआईआर) स्पेक्ट्रोस्कोपी2, लेजर एब्लेशन अपरिवर्तनीय रूप से युग्मित मास स्पेक्ट्रोमेट्री (एलए-आईसीपी-एमएस)3, और चुंबकीय अनुनाद इमेजिंग (एमआरआई)4 सहित विभिन्न विश्लेषणात्मक तकनीकें हैं जिनका उपयोग ऊतकों में एयूएनपी के वितरण की जांच के लिए सफलतापूर्वक किया गया है। फिर भी, ये विधियां कई कमियों से ग्रस्त हैं जैसे कि समय लेने वाली और जटिल नमूना तैयारी3 को शामिल करना, लंबे अधिग्रहण समय की आवश्यकता होती है, या उप-माइक्रोन स्थानिक संकल्प 2,4 की कमी होती है।

पारंपरिक इमेजिंग तकनीकों की तुलना में, नॉनलाइनियर ऑप्टिकल माइक्रोस्कोपी लाइव कोशिकाओं और एयूएनपी की जांच के लिए कई फायदे प्रदान करती है: नॉनलाइनियर ऑप्टिकल माइक्रोस्कोपी गहरी इमेजिंग गहराई प्राप्त करती है और निकट-आईआर अल्ट्राफास्ट लेजर के उपयोग के साथ आंतरिक 3 डी ऑप्टिकल सेक्शनिंग क्षमता प्रदान करती है। इमेजिंग गति और पहचान संवेदनशीलता के महत्वपूर्ण सुधार के साथ, दो-फोटॉन उत्तेजित प्रतिदीप्ति (टीपीईएफ) 5,6,7 और दूसरी हार्मोनिक पीढ़ी (एसएचजी) 8,9,10 माइक्रोस्कोपी को जीवित कोशिकाओं और ऊतकों में अंतर्जात बायोमोलेक्यूल्स के गैर-इनवेसिव इमेजिंग में और सुधार करने के लिए प्रदर्शित किया गया है। इसके अलावा, क्षणिक अवशोषण (टीए) 11,12,13,14 और उत्तेजित रमन स्कैटरिंग (एसआरएस) 15,16,17,18 जैसे नए पंप-प्रोब नॉनलाइनियर ऑप्टिकल तकनीकों का उपयोग करके, सेलुलर संरचनाओं और एयूएनपी के लेबल-मुक्त जैव रासायनिक विपरीत प्राप्त करना संभव है। बाह्य लेबल के उपयोग के बिना एयूएनपी की कल्पना करना बहुत महत्वपूर्ण है क्योंकि नैनोकणों के रासायनिक गड़बड़ी उनके भौतिक गुणों को संशोधित करेंगे और इसलिए कोशिकाओं में उनका उत्थान होगा।

यह प्रोटोकॉल दोहरी-तरंग दैर्ध्य पल्स लेजर के लिए स्पेक्ट्रल फोकसिंग टाइमिंग एंड रिकॉम्बिनेशन यूनिट (एसएफ-टीआरयू) मॉड्यूल के कार्यान्वयन को प्रस्तुत करता है, जो एयूएनपी और कैंसर कोशिकाओं की तेजी से मल्टीमॉडल इमेजिंग को सक्षम करता है। इस काम का उद्देश्य लेजर स्कैनिंग माइक्रोस्कोप पर एकीकृत टीपीईएफ, टीए और एसआरएस तकनीकों के विवरण को प्रदर्शित करना है।

Protocol

1. लेजर सिस्टम पर स्विच करना इंटरलॉक सिस्टम पर स्विच करें और सिस्टम शुरू करने से पहले आर्म लेजर का चयन करें। डुअल-आउटपुट फेम्टोसेकंड लेजर को नियंत्रित करने के लिए सॉफ्टवेयर के साथ पीसी चा?…

Representative Results

स्पेक्ट्रल फोकसिंग टाइमिंग एंड रिकॉम्बिनेशन यूनिट (एसएफ-टीआरयू) मॉड्यूल को दोहरे-आउटपुट फेम्टोसेकंड लेजर और संशोधित लेजर स्कैनिंग माइक्रोस्कोप के बीच पेश किया गया है। इस अध्ययन में उपयोग किए जाने व?…

Discussion

इस अध्ययन ने एसएफ-टीआरयू मॉड्यूल और अल्ट्राफास्ट डुअल-आउटपुट लेजर सिस्टम के संयोजन को प्रस्तुत किया है, जो मल्टीमॉडल माइक्रोस्पेक्ट्रोस्कोपी के लिए अपने अनुप्रयोगों का प्रदर्शन करता है। कैंसर कोशि…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस शोध को ईपीएसआरसी अनुदान: रमन नैनोथेरेनोस्टिक्स (ईपी / आर 020965/1) और कंट्रास्ट सुविधा (ईपी / एस 009957/1) द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

APE SRS Detection Unit APE (Angewandte Physik & Elektronik GmbH) APE Lock-in Module Combined system containing a large area Si photo-diode for detecting the pump beam along with a Lock-In amplifier for detecting the beam modulations
Confocal Scanning Unit Olympus FV 3000 Confocal scanning unit used for imaging
CML Latex Beads, 4% w/v, 1.0 µm Invitrogen C37483 Polystyrene microspheres
Coverslips Thorlabs CG15CH2 22 mm x 22 mm coverslips for seeding cells
FBS Gibco 10500-064 Foetal Bovine Serum (Heat Inactivated)
Flouview Olympus FV31S-SW Laser scanning microscope control software
Function Generator BX precision 40543 Used to generate square wave function which is fed to EOM in SF-TRU to produce modulations in the stokes beam
FV3000 Olympus IX83P2ZF Other microscope frames can be used.
Gold Nanoparticles Nanopartz A11-60 Spherical gold nanoparticles, 60 nm diameter
Input Output Interface Olympus FV30 ANALOG This unit allows voltage readouts from PMT and LockIn to be fed into the confocal scanning software and allows timing pulses to be sent between the olympus microscope and the SF-TRU unit.
InSight X3 Newport Spectra-Physics Dual-output femtosecond pulsed laser. Tunable (680–1300 nm) and fixed (1045 nm) laser outputs with the repetition rate of 80 MHz.
Microscope Frame Olympus IX83 Inverted microscope
Mouse 4T1 cells ATCC CRL-2539 Mouse breast cancer cells
NA 1.2 Water Immersion Objective Olympus UPLSAPO60XW/IR The multiphoton 60x Objective has a 0.28 mm working distance. Other similar objectives can be used.
NA 1.4 Condenser Nikon CSC1003 Other condensers with NA higher than the excitation objective can also be used.
PMT Hamamatsu R3896 PMT used for detecting anti-stokes photos for CARS micrsocopy
PMT Connector Hamamatsu C13654-01-Y002 Connector for PMT
Power Supply RS RSPD-3303 C Programmable power supply which is used for providing the correct voltage to the PMT
RPMI-1640 Gibco A10491-01 Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 Medium has since been found suitable for a variety of mammalian cells.
SF-TRU Newport Spectra Physics SF-TRU System designed for controlling the time delay and dispersion of the 2 laser outputs and for performing the beam modulations required for SRS

Referências

  1. Tabish, T. A., et al. Smart gold nanostructures for light mediated cancer theranostics: Combining optical diagnostics with photothermal therapy. Advanced Science. 7 (15), 1903441 (2020).
  2. Tian, F., et al. Gold nanostars for efficient in vitro and in vivo real-time SERS detection and drug delivery via plasmonic-tunable Raman/FTIR imaging. Biomaterials. 106, 87-97 (2016).
  3. Jenkins, S. V., et al. Enhanced photothermal treatment efficacy and normal tissue protection via vascular targeted gold nanocages. Nanotheranostics. 3 (2), 145-155 (2019).
  4. Huang, J., et al. Rational design and synthesis of gammaFe2 O3 @Au magnetic gold nanoflowers for efficient cancer theranostics. Advanced Materials. 27 (34), 5049-5056 (2015).
  5. Dilipkumar, A., et al. Label-free multiphoton endomicroscopy for minimally invasive in vivo imaging. Advanced science. 6 (8), 1801735 (2019).
  6. Wang, C. -. C., et al. Differentiation of normal and cancerous lung tissues by multiphoton imaging. Journal of Biomedical Optics. 14 (4), 044034 (2009).
  7. Chrabaszcz, K., et al. Comparison of standard and HD FT-IR with multimodal CARS/TPEF/SHG/FLIMS imaging in the detection of the early stage of pulmonary metastasis of murine breast cancer. The Analyst. 145 (14), 4982-4990 (2020).
  8. Tsai, T. H., et al. Visualizing radiofrequency-skin interaction using multiphoton microscopy in vivo. Journal of Dermatological Science. 65 (2), 95-101 (2012).
  9. Wang, C. -. C., et al. Early development of cutaneous cancer revealed by intravital nonlinear optical microscopy. Applied Physics Letters. 97 (11), 113702 (2010).
  10. Li, F. -. C., et al. Dorsal skin fold chamber for high resolution multiphoton imaging. Optical and Quantum Electronics. 37 (13), 1439-1445 (2005).
  11. Tong, L., et al. Label-free imaging of semiconducting and metallic carbon nanotubes in cells and mice using transient absorption microscopy. Nature Nanotechnology. 7 (1), 56-61 (2011).
  12. Chong, S., Min, W., Xie, X. S. Ground-state depletion microscopy: Detection sensitivity of single-molecule optical absorption at room temperature. The Journal of Physical Chemistry Letters. 1 (23), 3316-3322 (2010).
  13. Chen, T., et al. Transient absorption microscopy of gold nanorods as spectrally orthogonal labels in live cells. Nanoscale. 6 (18), 10536-10539 (2014).
  14. Liu, J., Irudayaraj, J. M. Non-fluorescent quantification of single mRNA with transient absorption microscopy. Nanoscale. 8 (46), 19242-19248 (2016).
  15. Freudiger, C. W., et al. Label-free biomedical imaging with high sensitivity by stimulated Raman scattering microscopy. Science. 322 (5909), 1857-1861 (2008).
  16. Wang, C. -. C., et al. In situ chemically specific mapping of agrochemical seed coatings using stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Biophotonics. 11 (11), 201800108 (2018).
  17. Wang, C. -. C., Yoong, F. -. Y., Penfield, S., Moger, J. Visualization of active ingredients uptake in seed coats with stimulated Raman scattering microscopy. Proceedings SPIE 10069, Multiphoton Microscopy the Biomedical Sciences XVII. , 1006928 (2017).
  18. Hu, F., Shi, L., Min, W. Biological imaging of chemical bonds by stimulated Raman scattering microscopy. Nature Methods. 16 (9), 830-842 (2019).
  19. Zeytunyan, A., Baldacchini, T., Zadoyan, R. Module for multiphoton high-resolution hyperspectral imaging and spectroscopy. Proceedings SPIE 10498, Multiphoton Microscopy in the Biomedical Sciences XVIII. , 104980 (2018).
  20. Wang, C. -. C., Wu, R. -. J., Lin, S. -. J., Chen, Y. -. F., Dong, C. -. Y. Label-free discrimination of normal and pulmonary cancer tissues using multiphoton fluorescence ratiometric microscopy. Applied Physics Letters. 97 (4), 043706 (2010).
  21. Wang, C. -. C., Chandrappa, D., Smirnoff, N., Moger, J. Monitoring lipid accumulation in the green microalga botryococcus braunii with frequency-modulated stimulated Raman scattering. Proceedings SPIE 9329, Multiphoton Microscopy in the Biomedical Sciences XV. , 9329 (2015).
  22. Figueroa, B., et al. Broadband hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy with a parabolic fiber amplifier source. Biomedical Optics Express. 9 (12), 6116-6131 (2018).
  23. Cui, L., et al. In situ plasmon-enhanced CARS and TPEF for Gram staining identification of non-fluorescent bacteria. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 264, 120283 (2022).
  24. Ma, J., Sun, M. Nonlinear optical microscopies (NOMs) and plasmon-enhanced NOMs for biology and 2D materials. Nanophotonics. 9 (6), 1341-1358 (2020).
  25. Sun, L., Chen, Y., Sun, M. Exploring nonemissive excited-state intramolecular proton transfer by plasmon-enhanced hyper-Raman scattering and two-photon excitation fluorescence. The Journal of Physical Chemistry C. 126 (1), 487-492 (2022).
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Wang, C., Mansfield, J. C., Stone, N., Moger, J. Biomolecular Imaging of Cellular Uptake of Nanoparticles using Multimodal Nonlinear Optical Microscopy. J. Vis. Exp. (183), e63637, doi:10.3791/63637 (2022).

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