Summary

En retrograd implantasjonstilnærming for peritonealdialysekateterplassering hos mus

Published: July 20, 2022
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver modifikasjoner av en prosedyre for å implantere et peritonealdialysekateter i en murinmodell for å unngå store tekniske problemer observert med konvensjonelle teknikker.

Abstract

Murine modeller er ansatt for å undersøke ulike aspekter av peritonealdialyse (PD), slik som peritoneal betennelse og fibrose. Disse hendelsene driver peritonealmembransvikt hos mennesker, som fortsatt er et område med intens undersøkelse på grunn av dens dype kliniske implikasjoner ved håndtering av pasienter med nyresykdom i sluttstadiet (ESKD). Til tross for den kliniske betydningen av PD og relaterte komplikasjoner, lider nåværende eksperimentelle murinmodeller av viktige tekniske utfordringer som kompromitterer modellenes ytelse. Disse inkluderer PD-katetermigrasjon og kinking og garanterer vanligvis tidligere kateterfjerning. Disse begrensningene driver også behovet for et større antall dyr for å fullføre en studie. For å adressere disse ulempene introduserer denne studien tekniske forbedringer og kirurgiske nyanser for å forhindre vanlige observerte PD-kateterkomplikasjoner i en murinmodell. Videre er denne modifiserte modellen validert ved å indusere peritoneal betennelse og fibrose ved bruk av lipopolysakkaridinjeksjoner. I hovedsak beskriver dette papiret en forbedret metode for å lage en eksperimentell modell av PD.

Introduction

Byrde av nyresykdom i sluttstadiet
Kronisk nyresykdom (CKD) er et verdensomspennende helseproblem1. Nåværende estimater tyder på at mer enn 850 millioner mennesker over hele verden har nyresykdom. Utbredelsen av nyresykdom dobler nesten antall personer med diabetes (422 millioner) og er mer enn 20 ganger forekomsten av kreft (42 millioner) eller HIV / AIDS (36,7 millioner) pasienter over hele verden2. Omtrent en av syv amerikanere har CKD, og to av 1000 amerikanere har ESKD som krever nyretransplantasjon eller dialysestøtte3. Med tanke på den eskalerende byrden av ESKD over hele verden, er optimalisering av dialyseteknologi avgjørende3.

Peritonealdialyse
PD er en betydelig underutnyttet modalitet for behandling av ESKD i USA. I følge United States Renal Data System (USRDS) var andelen utbredte PD-pasienter bare 11% i 2020 4,5. PD gir flere fordeler over in-center hemodialyse (HD), inkludert en bedre livskvalitet, færre klinikkbesøk, og en reduksjon i Medicare utgifter 6,7. I tillegg er PD en hjemmebasert terapi og er forbundet med en mye lavere risiko for alvorlige infeksjoner som bakteriemi og endokarditt som ofte er relatert til hemodialysekatetre. Videre kan PD initieres raskt med hastestartprotokoll, noe som reduserer behovet for dialysestart med inneliggende karkatetre8. PD regnes som den foretrukne metoden for dialyse i den pediatriske ESKD-populasjonen9.

Peritoneal svekkelse indusert av peritonealdialyse
PD innebærer å tilføre PD-væske (dialyse) i bukhinnen, noe som resulterer i inflammasjon og remodellering av bukhinnen over tid. Peritoneal betennelse utløser fibrose, som kulminerer i det potensielle tapet av ultrafiltreringsevner av membranen over tid. Bevaring av peritonealmembranen er en betydelig utfordring i PD, og videre forskning er kritisk viktig for å sikre at beste kliniske praksis er tilgjengelig for utøvere. Det er veletablerte murinmodeller for å bidra til å fremme forståelsen av patofysiologiske mekanismer for peritoneal infeksjon og betennelse, løsemiddel, vanntransportkinetikk og membransvikt; Likevel begrenser tekniske problemer med kateteret ofte disse modellene10.

Analysere peritoneale membranendringer
Hos ESKD-pasienter blir dialysat tradisjonelt introdusert i bukhulen gjennom et Tenkhoff-kateter med en dyp og overfladisk mansjett. Pasientene kan potensielt oppleve kateterrelaterte komplikasjoner, inkludert katetermigrasjon, infusjonssmerter og dårlig drenasje av dialysatet11,12,13. To hovedtyper av peritoneale katetre har blitt introdusert for mennesker, kveilet eller rett, for å minimere disse komplikasjonene12. Flere modifikasjoner, inkludert en ekstra mansjett til de konvensjonelle to-mansjettkatetrene, har blitt lagt til de originale katetrene for å forlenge PD-kateteroverlevelse11. Innføringsteknikken varierer med flere faktorer ved å hindre at katetermigrasjon legges til etter overlevelse, inkludert ressursenes tilgjengelighet og kompetansenivå14.

I motsetning til dette har murinmodellene for peritonealdialyse grunnleggende forskjeller i teknikker og formål sammenlignet med humane peritonealkatetre. For eksempel brukes peritoneale katetre i murinmodeller primært til å studere membranendringer og er mindre beregnet på toveis dreneringsfunksjoner. Den nåværende teknikken lider av potensiell havneløsing og katetermigrasjon på grunn av håndtering av dyrene. I de konvensjonelle murinmodellene var ikke tilgangsportene festet til huden. Dette aspektet skapte en ustabil tilgangsport, som hos våkne dyr kunne løsne, noe som resulterte i katetermigrasjon. Gitt viktigheten av murine modeller i peritoneal membranforskning, er det viktig å skape effektive kirurgiske teknikker for å generere pålitelige modeller. Derfor bestemte vi oss for å optimalisere den konvensjonelle modellen for PD-kateterplassering. Det er viktig å merke seg at kateteret i seg selv forårsaker histopatologiske forandringer i peritonealmembranen, og derfor må eventuelle konklusjoner om effekten av PD-løsninger i dyrestudier tolkes i sammenheng med PD-kateteret som fremmedlegeme15,16,17.

Peritoneal membranhistopatologi
PD-svikt er hovedsakelig relatert til fibrose og overflødig angiogenese som resulterer i tap av en osmolær konsentrasjonsgradient. I tillegg kan peritonealmembranfiltreringskapasiteten påvirkes av peritonitt. I tillegg er infeksiøs peritonitt en veletablert årsak til endring i dialysemodaliteten fra peritonealdialyse til hemodialyse. 18.

Protocol

For denne studien ble åtte kvinnelige C57BL / 6J-mus, 8-12 uker i alder og en gjennomsnittlig vekt på 20 g brukt. Musene ble plassert under vanlige forhold og ble matet med chow og vann ad libitum. Denne studien ble utført med godkjenning av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC), Boston University Medical Center (AN-1549). Prosedyrene beskrevet her ble utført under sterile forhold. 1. Bedøv musen i et isofluran kammer, og injiser det smertestillende subkutant<…

Representative Results

Alle de implanterte katetrene var funksjonelle til slutten av studien, og kateterløsing eller kinking kompliserte ingen av de implanterte katetrene. Den nåværende, modifiserte teknikken ble videre validert med en peritonittindusert modell ved hjelp av LPS. Kontrollmusene fikk 200 μL daglige normale saltvannsinjeksjoner, mens forsøksmusene ble injisert med 200 μL LPS, som omtalt i protokolltrinn 11, i totalt 7 dager etter kateterimplantasjon. Peritonealmembranen ble evaluert for histopato…

Discussion

Tre murinmodeller av PD er beskrevet. Dette inkluderer en blind punktering av bukhinnens overflate, et åpent permanent system og et lukket system10. Den blinde punkteringen av peritonealoverflaten innebærer direkte peritoneal tilgang som ligner på intraperitoneale injeksjoner, men tillater ikke drenering av dialysat. Å være en blindet prosedyre, kan denne metoden skade de abdominale viscerale organene. Den åpne-permanente systemmodellen holder dialysekateteret og instillasjonsporten utenfor …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH 1R01HL132325 og R21 DK119740-01 (VCC) og AHA Cardio-oncology SFRN CAT-HD Center grant 857078 (VCC og SL).

Materials

10% heparin  Canada Inc., Boucherville, QC, Canada) Pharmaceutical product
     Buprenorphine 0.3 mg/mL      PAR Pharmaceutical            NDC 42023-179-05
C57BL/6J mice The Jackson Lab IMSR_JAX:000664
CD31 Abcam Ab9498
            Clamp      Fine Science Tools                13002-10
            Forceps      Fine Science Tools                11002-12
Dumont #5SF Forceps Fine Science Tools 11252-00
Dumont Vessel Cannulation Forceps Fine Science Tools 11282-11
Fine Scissors – Large Loops Fine Science Tools 14040-10
Fisherbrand Animal Ear-Punch Fisher Scientific 13-812-201
Hill Hemostat Fine Science Tools 13111-12
Huber point needle  Access  technologies  PG25-500 Needle for injections
            Isoflurane, USP             Covetrus             NDC 11695-6777-2
       Lipopolysaccharide from E.coli             SIGMA               L4391
Microscope Nikon Eclipse Inverted Microscope TE2000
Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes     Access  technologies         MMP-4S-061108A
 Posi-Grip Huber point needles 25 G x 1/2´´    Access  technologies                PG25-500
            Scissors      Fine Science Tools                14079-10
Vicryl Suture AD-Surgical #L-G330R24

References

  1. Saran, R., et al. US Renal Data System 2019 Annual Data Report: Epidemiology of Kidney Disease in the United States. American Journal of Kidney Diseases. 75, 6-7 (2020).
  2. ESRD, U.S.R.D.S.M. 2017 USRDS Annual Data Report: Epidemiology of Kidney Disease in the United States, Bethesda, MD, National Institutes of Health, National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases. USRD. , (2017).
  3. Center of Disease Control, U.S.D.o.H.a.H.S. Chronic Kidney Disease in the United States, 2019. CDC Publications and Resources. , (2019).
  4. Cho, Y., et al. Peritoneal dialysis use and practice patterns: An international survey study. American Journal of Kidney Diseases. 77 (3), 315-325 (2021).
  5. Xieyi, G., Xiaohong, T., Xiaofang, W., Zi, L. Urgent-start peritoneal dialysis in chronic kidney disease patients: A systematic review and meta-analysis compared with planned peritoneal dialysis and with urgent-start hemodialysis. Peritoneal Dialysis International. 41 (2), 179-193 (2021).
  6. Gokal, R., Figueras, M., Olle, A., Rovira, J., Badia, X. Outcomes in peritoneal dialysis and haemodialysis–a comparative assessment of survival and quality of life. Nephrology Dialysis Transplantation. 14, 24-30 (1999).
  7. Gardezi, A. I., Sequeira, A., Narayan, R. Going home: Access for home modalities. Advances in Chronic Kidney Disease. 27 (3), 253-262 (2020).
  8. van de Luijtgaarden, M. W., et al. Trends in dialysis modality choice and related patient survival in the ERA-EDTA Registry over a 20-year period. Nephrology Dialysis Transplantation. 31 (1), 120-128 (2016).
  9. Schaefer, F., Warady, B. A. Peritoneal dialysis in children with end-stage renal disease. Nature Reviews. Nephrology. 7 (11), 659-668 (2011).
  10. Gonzalez-Mateo, G. T., Pascual-Anton, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., Lopez-Cabrera, M. Surgical techniques for catheter placement and 5/6 nephrectomy in murine Models of Peritoneal Dialysis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (137), e56746 (2018).
  11. Chow, K. M., et al. Straight versus coiled peritoneal dialysis catheters: A randomized controlled trial. American Journal of Kidney Diseases. 75 (1), 39-44 (2020).
  12. LaPlant, M. B., et al. Peritoneal dialysis catheter placement, outcomes and complications. Pediatric Surgery International. 34 (11), 1239-1244 (2018).
  13. Al-Hwiesh, A. K. A modified peritoneal dialysis catheter with a new technique: Farewell to catheter migration. Saudi Journal of Kidney Diseases and Transplantation. 27 (2), 281-289 (2016).
  14. Crabtree, J. H., Chow, K. M. Peritoneal dialysis catheter insertion. Seminars Nephrology. 37 (1), 17-29 (2017).
  15. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).
  16. Kowalewska, P. M., Margetts, P. J., Fox-Robichaud, A. E. Peritoneal dialysis catheter increases leukocyte recruitment in the mouse parietal peritoneum microcirculation and causes Fibrosis. Peritonial Dialysis International: Journal of the International Society for Peritonial Dialysis. 36 (1), 7-15 (2016).
  17. Kowalewska, P. M., Patrick, A. L., Fox-Robichaud, A. E. Syndecan-1 in the mouse parietal peritoneum microcirculation in inflammation. PLoS One. 9 (9), 104537 (2014).
  18. Yanez-Mo, M., et al. Peritoneal dialysis and epithelial-to-mesenchymal transition of mesothelial cells. The New England Journal of Medicine. 348 (5), 403-413 (2003).
  19. Arinze, N. V., et al. Tryptophan metabolites suppress Wnt pathway and promote adverse limb events in CKD patients. The Journal of Clinical Investigation. 132 (1), (2021).
  20. Belghasem, M., et al. Metabolites in a mouse cancer model enhance venous thrombogenicity through the aryl hydrocarbon receptor-tissue factor axis. Blood. 134 (26), 2399-2413 (2019).
  21. Krediet, R. T. The peritoneal membrane in chronic peritoneal dialysis. Kidney International. 55 (1), 341-356 (1999).
  22. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritonial Dialysis International: Journal of the International Society for Peritonial Dialysis. 29 (2), 227-230 (2009).
  23. Sukul, N., et al. Patient-reported advantages and disadvantages of peritoneal dialysis: results from the PDOPPS. BMC Nephrology. 20 (1), 116 (2019).
  24. Lu, Y., et al. A method for islet transplantation to the omentum in mouse. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (143), e57160 (2019).
  25. Gotloib, L., Wajsbrot, V., Shostak, A. A short review of experimental peritoneal sclerosis: from mice to men. The International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 97-104 (2005).
  26. Tateda, K., Matsumoto, T., Miyazaki, S., Yamaguchi, K. Lipopolysaccharide-induced lethality and cytokine production in aged mice. Infection and Immunity. 64 (3), 769-774 (1996).
  27. Vila Cuenca, M., et al. Differences in peritoneal response after exposure to low-GDP bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution compared to conventional dialysis solution in a uremic mouse model. International Urology and Nephrology. 50 (6), 1151-1161 (2018).
  28. Penar, J., et al. Selected indices of peritoneal fibrosis in patients undergoing peritoneal dialysis. Postepy Higieny Medycyny Doswiadczalnej (Online). 63, 200-204 (2009).
  29. Yung, S., Chan, T. M. Pathophysiological changes to the peritoneal membrane during PD-related peritonitis: the role of mesothelial cells. Mediators of Inflammation. 2012, 484167 (2012).
check_url/63689?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lotfollahzadeh, S., Zhang, M., Napoleon, M. A., Yin, W., Orrick, J., Elzind, N., Morrissey, A., Sellinger, I. E., Stern, L. D., Belghasem, M., Francis, J. M., Chitalia, V. C. A Retrograde Implantation Approach for Peritoneal Dialysis Catheter Placement in Mice. J. Vis. Exp. (185), e63689, doi:10.3791/63689 (2022).

View Video