Summary

Сочетание отражательной конфокальной микроскопии с оптической когерентной томографией для неинвазивной диагностики рака кожи с помощью получения изображений

Published: August 18, 2022
doi:

Summary

Здесь мы описываем протоколы получения изображений хорошего качества с использованием новых неинвазивных устройств визуализации отражательной конфокальной микроскопии (RCM) и комбинированной RCM и оптической когерентной томографии (OCT). Мы также знакомим врачей с их клиническими приложениями, чтобы они могли интегрировать методы в обычные клинические рабочие процессы для улучшения ухода за пациентами.

Abstract

Рак кожи является одним из самых распространенных видов рака во всем мире. Диагноз основывается на визуальном осмотре и дерматоскопии с последующей биопсией для гистопатологического подтверждения. В то время как чувствительность дерматоскопии высока, более низкая специфичность приводит к тому, что 70-80% биопсий диагностируются как доброкачественные поражения на гистопатологии (ложноположительные результаты при дерматоскопии).

Отражательная конфокальная микроскопия (RCM) и оптическая когерентная томография (OCT) могут неинвазивно направлять диагностику рака кожи. RCM визуализирует клеточную морфологию в слоях лица . Он удвоил диагностическую специфичность для меланомы и пигментного кератиноцитарного рака кожи по сравнению с дерматоскопией, вдвое сократив количество биопсий доброкачественных поражений. RCM приобрела коды выставления счетов в США и в настоящее время интегрируется в клиники.

Однако такие ограничения, как малая глубина (~ 200 мкм) визуализации, плохой контраст для непигментированных поражений кожи и визуализация в слоях лица , приводят к относительно более низкой специфичности для обнаружения непигментированной базально-клеточной карциномы (БКК) — поверхностных БКК, примыкающих к базально-клеточному слою, и более глубоких инфильтративных БКК. Напротив, ОКТ не имеет клеточного разрешения, но визуализирует ткань в вертикальных плоскостях на глубину ~ 1 мм, что позволяет обнаруживать как поверхностные, так и более глубокие подтипы БКК. Таким образом, оба метода по существу дополняют друг друга.

«Мультимодальное» комбинированное устройство RCM-OCT одновременно визуализирует поражения кожи как в лицевом, так и в вертикальном режимах. Это полезно для диагностики и лечения БКК (нехирургическое лечение поверхностных БКК по сравнению с хирургическим лечением более глубоких поражений). Заметное улучшение специфичности достигается при обнаружении небольших непигментированных БКК по сравнению с RCM. Устройства RCM и RCM-OCT приводят к серьезному сдвигу парадигмы в диагностике и лечении рака кожи; Однако их использование в настоящее время ограничено академическими центрами третичной медицинской помощи и некоторыми частными клиниками. Эта статья знакомит клиницистов с этими устройствами и их применением, устраняя трансляционные барьеры в рутинном клиническом рабочем процессе.

Introduction

Традиционно диагноз рака кожи основывается на визуальном осмотре поражения с последующим более пристальным взглядом на подозрительные поражения с использованием увеличительной линзы, называемой дерматоскопом. Дерматоскоп предоставляет подповерхностную информацию, которая повышает чувствительность и специфичность по сравнению с визуальным осмотром для диагностики рака кожи 1,2. Однако дерматоскопия не имеет клеточных деталей, что часто приводит к биопсии для гистопатологического подтверждения. Низкая и вариабельная (от 67% до 97%) специфичность дерматоскопии3 приводит к ложноположительным результатам и биопсиям, которые, как оказалось, показывают доброкачественные поражения при патологии. Биопсия является не только инвазивной процедурой, которая вызывает кровотечение и боль4, но также крайне нежелательна на косметически чувствительных участках, таких как лицо, из-за рубцевания.

Чтобы улучшить уход за пациентами за счет преодоления существующих ограничений, исследуются многие неинвазивные устройства визуализации in vivo 5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18 . Устройства RCM и OCT являются двумя основными оптическими неинвазивными устройствами, которые используются для диагностики поражений кожи, особенно рака кожи. В США RCM приобрела коды выставления счетов в соответствии с текущей процедурной терминологией (CPT) и все чаще используется в академических центрах третичной медицинской помощи и некоторых частных клиниках 7,8,19. RCM отображает поражения с почти гистологическим (клеточным) разрешением. Однако изображения находятся в плоскости лица (визуализация одного слоя кожи за раз), а глубина изображения ограничена ~ 200 мкм, что достаточно для достижения только поверхностной (папиллярной) дермы. Визуализация RCM основана на контрасте отражения от различных структур кожи. Меланин придает высочайший контраст, делая пигментные поражения яркими и легко поддающимися диагностике. Таким образом, РКМ в сочетании с дерматоскопией значительно улучшила диагностику (чувствительность 90% и специфичность 82%) по сравнению с дерматоскопией пигментных поражений, включая меланому20. Однако из-за недостатка контраста меланина в розовых поражениях, особенно при БКК, RCM имеет более низкую специфичность (37,5%-75,5%)21. Обычное устройство ОКТ, еще одно широко используемое неинвазивное устройство, визуализирует поражение на глубине до 1 мм в коже и визуализирует его в вертикальной плоскости (аналогично гистопатологии)9. Однако ОКТ не хватает сотового разрешения. ОКТ в основном используется для диагностики кератиноцитарных поражений, особенно БКК, но все же имеет более низкую специфичность9.

Таким образом, для преодоления существующих ограничений этих устройств было построено22 мультимодальных устройства RCM-OCT. Это устройство включает в себя RCM и OCT в одном портативном датчике визуализации, что позволяет одновременно получать совместно зарегистрированные изображения RCM на лице и вертикальные ОКТ-изображения поражения. ОКТ обеспечивает архитектурную детализацию поражений и может отображать более глубокие (до ~ 1 мм) изображения в коже. Он также имеет большее поле зрения (FOV) ~ 2 мм22 по сравнению с портативным устройством RCM (~ 0,75 мм x 0,75 мм). Изображения RCM используются для получения клеточных деталей поражения, выявленного на ОКТ. Этот прототип еще не коммерциализован и используется в качестве исследуемого устройства в клиниках23,24,25.

Несмотря на их успехи в улучшении диагностики и лечения рака кожи (что подтверждается литературой), эти устройства еще не получили широкого распространения в клиниках. В основном это связано с нехваткой экспертов, которые могут прочитать эти изображения, но также из-за отсутствия обученных техников, которые могут эффективно получать изображения диагностического качества (в течение клинического периода времени) у постелибольного 8. В этой рукописи цель состоит в том, чтобы облегчить осведомленность и возможное внедрение этих устройств в клиниках. Для достижения этой цели мы знакомим дерматологов, дерматопатологов и хирургов Мооса с изображениями нормальной кожи и рака кожи, полученными с помощью аппаратов RCM и RCM-OCT. Мы также подробно расскажем о полезности каждого устройства для диагностики рака кожи. Самое главное, что основное внимание в этой рукописи уделяется предоставлению пошагового руководства по получению изображений с использованием этих устройств, что обеспечит хорошее качество изображений для клинического использования.

Protocol

Все протоколы, описанные ниже, соответствуют руководящим принципам институционального комитета по этике исследований человека. 1. Устройство RCM и протокол визуализации ПРИМЕЧАНИЕ: В продаже vivo доступны два устройства RCM: широкозондовый RCM (WP-RCM…

Representative Results

Отражательная конфокальная микроскопия (RCM)Интерпретация изображения на RCM:Изображения RCM интерпретируются таким образом, чтобы имитировать оценку гистопатологических слайдов. Мозаики оцениваются в первую очередь, чтобы получить общую архитектурную деталь и оп…

Discussion

В этой статье мы описали протоколы получения изображений с помощью устройств in vivo RCM и RCM-OCT. В настоящее время существует два коммерчески доступных устройства RCM: устройство RCM С ШИРОКИМ ЗОНДОМ или креплением на руке (WP-RCM) и портативное устройство RCM (HH-RCM). Крайне важно понимать, когда …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Особая благодарность выражается Квами Кетосугбо и Эмили Коуэн за то, что они были волонтерами в области визуализации. Это исследование финансируется за счет гранта Национального института рака / Национальных институтов здравоохранения (P30-CA008748), предоставленного Мемориальному онкологическому центру им. Слоуна-Кеттеринга.

Materials

Crystal Plus 500FG mineral oil STE Oil Company, Inc. A food grade, high viscous mineral oil used with our various devices during in vivo imaging.
RCM-OCT Physical Science Inc. A “multi-modal” combined RCM-OCT device simultaneously images skin lesions in both horizonal and vertical modes.
Vivascope 1500 Caliber I.D. A wide-probe RCM (WP-RCM) device that attaches to the skin to campture in vivo devices.
Vivascope 3000 Caliber I.D. A hand-held RCM (HH-RCM) device that is moved across the skin to capture in vivo images.

Referências

  1. Argenziano, G., et al. Accuracy in melanoma detection: A 10-year multicenter survey. Journal of the American Academy of Dermatology. 67 (1), 54-59 (2012).
  2. Vestergaard, M. E., Macaskill, P., Holt, P. E., Menzies, S. W. Dermoscopy compared with naked eye examination for the diagnosis of primary melanoma: A meta-analysis of studies performed in a clinical setting. British Journal of Dermatology. 159 (3), 669-676 (2008).
  3. Reiter, O., et al. The diagnostic accuracy of dermoscopy for basal cell carcinoma: A systematic review and meta-analysis. Journal of the American Academy of Dermatology. 80 (5), 1380-1388 (2019).
  4. Abhishek, K., Khunger, N. Complications of skin biopsy. Journal of Cutaneous and Aesthetic Surgery. 8 (4), 239-241 (2015).
  5. Navarrete-Dechent, C., Fischer, C., Tkaczyk, E., Jain, M., Rao, B. K. Chapter 5: Principles of non-invasive diagnostic techniques in dermatology. Moschella and Hurley’s Dermatology. 1, (2019).
  6. Wassef, C., Rao, B. K. Uses of non-invasive imaging in the diagnosis of skin cancer: An overview of the currently available modalities. International Journal of Dermatology. 52 (12), 1481-1489 (2013).
  7. Rajadhyaksha, M., Marghoob, A., Rossi, A., Halpern, A. C., Nehal, K. S. Reflectance confocal microscopy of skin in vivo: From bench to bedside. Lasers in Surgery and Medicine. 49 (1), 7-19 (2017).
  8. Jain, M., Pulijal, S. V., Rajadhyaksha, M., Halpern, A. C., Gonzalez, S. Evaluation of bedside diagnostic accuracy, learning curve, and challenges for a novice reflectance confocal microscopy reader for skin cancer detection in vivo. JAMA Dermatology. 154 (8), 962-965 (2018).
  9. Sattler, E., Kästle, R., Welzel, J. Optical coherence tomography in dermatology. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 061224 (2013).
  10. Wang, Y. -. J., Huang, Y. -. K., Wang, J. -. Y., Wu, Y. -. H. In vivo characterization of large cell acanthoma by cellular resolution optical coherent tomography. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 26, 199-202 (2019).
  11. Balu, M., et al. Distinguishing between benign and malignant melanocytic nevi by in vivo multiphoton microscopy. Pesquisa do Câncer. 74 (10), 2688-2697 (2014).
  12. Balu, M., et al. In vivo multiphoton microscopy of basal cell carcinoma. JAMA Dermatology. 151 (10), 1068-1074 (2015).
  13. Lentsch, G., et al. Non-invasive optical biopsy by multiphoton microscopy identifies the live morphology of common melanocytic nevi. Pigment Cell and Melanoma Research. 33 (6), 869-877 (2020).
  14. Dimitrow, E., et al. Sensitivity and specificity of multiphoton laser tomography for in vivo and ex vivo diagnosis of malignant melanoma. Journal of Investigative Dermatology. 129 (7), 1752-1758 (2009).
  15. Ruini, C., et al. Line-field optical coherence tomography: In vivo diagnosis of basal cell carcinoma subtypes compared with histopathology. Clinical and Experimental Dermatology. 46 (8), 1471-1481 (2021).
  16. Suppa, M., et al. Line-field confocal optical coherence tomography of basal cell carcinoma: A descriptive study. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. 35 (5), 1099-1110 (2021).
  17. Wang, Y. J., Wang, J. Y., Wu, Y. H. Application of cellular resolution full-field optical coherence tomography in vivo for the diagnosis of skin tumours and inflammatory skin diseases: A pilot study. Dermatology. 238 (1), 121-131 (2022).
  18. Jain, M., et al. Rapid evaluation of fresh ex vivo kidney tissue with full-field optical coherence tomography. Journal of Pathology Informatics. 6, 53 (2015).
  19. Mehta, P. P., et al. Patterns of use of reflectance confocal microscopy at a tertiary referral dermatology clinic. Journal of the American Academy of Dermatology. , (2021).
  20. Dinnes, J., et al. Reflectance confocal microscopy for diagnosing cutaneous melanoma in adults. Cochrane Database of Systematic Reviews. 12 (12), (2018).
  21. Dinnes, J., et al. Reflectance confocal microscopy for diagnosing keratinocyte skin cancers in adults. Cochrane Database of Systematic Reviews. 12 (12), (2018).
  22. Iftimia, N., et al. Handheld optical coherence tomography-reflectance confocal microscopy probe for detection of basal cell carcinoma and delineation of margins. Journal of Biomedical Optics. 22 (7), 76006 (2017).
  23. Monnier, J., et al. Combined reflectance confocal microscopy and optical coherence tomography to improve the diagnosis of equivocal lesions for basal cell carcinoma. Journal of the American Academy of Dermatology. 86 (4), 934-936 (2021).
  24. Navarrete-Dechent, C., et al. Management of complex head-and-neck basal cell carcinomas using a combined reflectance confocal microscopy/optical coherence tomography: a descriptive study. Archives of Dermatological Research. 313 (3), 193-200 (2021).
  25. Sahu, A., et al. Evaluation of a combined reflectance confocal microscopy-optical coherence tomography device for detection and depth assessment of basal cell carcinoma. JAMA Dermatology. 154 (10), 1175-1183 (2018).
  26. Rubinstein, G., Garfinkel, J., Jain, M. Live, remote control of an in vivo reflectance confocal microscope for diagnosis of basal cell carcinoma at the bedside of a patient 2500 miles away: A novel tele-reflectance confocal microscope approach. Journal of the American Academy of Dermatology. 81 (2), 41-42 (2019).
  27. Scope, A., et al. In vivo reflectance confocal microscopy imaging of melanocytic skin lesions: Consensus terminology glossary and illustrative images. Journal of the American Academy of Dermatology. 57 (4), 644-658 (2007).
  28. Calzavara-Pinton, P., Longo, C., Venturini, M., Sala, R., Pellacani, G. Reflectance confocal microscopy for in vivo skin imaging. Photochemistry and Photobiology. 84 (6), 1421-1430 (2008).
  29. Rajadhyaksha, M., Grossman, M., Esterowitz, D., Webb, R. H., Anderson, R. R. In vivo confocal scanning laser microscopy of human skin: Melanin provides strong contrast. Journal of Investigative Dermatology. 104 (6), 946-952 (1995).
  30. Gonzalez, S., Gonzalez, E., White, W. M., Rajadhyaksha, M., Anderson, R. R. Allergic contact dermatitis: Correlation of in vivo confocal imaging to routine histology. Journal of the American Academy of Dermatology. 40 (5), 708-713 (1999).
  31. Sahu, A., et al. Combined PARP1-targeted nuclear contrast and reflectance contrast enhances confocal microscopic detection of basal cell carcinoma. Journal of Nuclear Medicine. 63 (6), 912-918 (2021).
  32. González, S., Sackstein, R., Anderson, R. R., Rajadhyaksha, M. Real-time evidence of in vivo leukocyte trafficking in human skin by reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 117 (2), 384-386 (2001).
  33. Navarrete-Dechent, C., et al. Reflectance confocal microscopy terminology glossary for nonmelanocytic skin lesions: A systematic review. Journal of the American Academy of Dermatology. 80 (5), 1414-1427 (2019).
  34. Navarrete-Dechent, C., et al. Reflectance confocal microscopy terminology glossary for melanocytic skin lesions: A systematic review. Journal of the American Academy of Dermatology. 84 (1), 102-119 (2021).
  35. Sattler, E., Kastle, R., Welzel, J. Optical coherence tomography in dermatology. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 061224 (2013).
  36. Park, E. S. Skin-layer analysis using optical coherence tomography. Medical Lasers. 3 (1), 1-4 (2014).
  37. Marra, D. E., Torres, A., Schanbacher, C. F., Gonzalez, S. Detection of residual basal cell carcinoma by in vivo confocal microscopy. Dermatologic Surgery. 31 (5), 538-541 (2005).
  38. Alarcon, I., et al. In vivo reflectance confocal microscopy to monitor the response of lentigo maligna to imiquimod. Journal of the American Academy of Dermatology. 71 (1), 49-55 (2014).
  39. Guitera, P., et al. Surveillance for treatment failure of lentigo maligna with dermoscopy and in vivo confocal microscopy: new descriptors. British Journal of Dermatology. 170 (6), 1305-1312 (2014).
  40. Menge, T. D., Hibler, B. P., Cordova, M. A., Nehal, K. S., Rossi, A. M. Concordance of handheld reflectance confocal microscopy (RCM) with histopathology in the diagnosis of lentigo maligna (LM): A prospective study. Journal of the American Academy of Dermatology. 74 (6), 1114-1120 (2016).
  41. Chen, C. S., Elias, M., Busam, K., Rajadhyaksha, M., Marghoob, A. A. Multimodal in vivo optical imaging, including confocal microscopy, facilitates presurgical margin mapping for clinically complex lentigo maligna melanoma. British Journal of Dermatology. 153 (5), 1031-1036 (2005).
  42. Yelamos, O., et al. Handheld reflectance confocal microscopy for the detection of recurrent extramammary Paget disease. JAMA Dermatology. 153 (7), 689-693 (2017).
  43. Ardigo, M., Longo, C., Gonzalez, S. Multicentre study on inflammatory skin diseases from The International Confocal Working Group: Specific confocal microscopy features and an algorithmic method of diagnosis. British Journal of Dermatology. 175 (2), 364-374 (2016).
  44. Moscarella, E., Argenziano, G., Lallas, A., Pellacani, G., Longo, C. Confocal microscopy: A new era in understanding the pathophysiologic background of inflammatory skin diseases. Experimental Dermatology. 23 (5), 320-321 (2014).
  45. Bertrand, C., Corcuff, P. In vivo spatio-temporal visualization of the human skin by real-time confocal microscopy. Scanning. 16 (3), 150-154 (1994).
  46. Saknite, I., et al. Features of cutaneous acute graft-versus-host disease by reflectance confocal microscopy. British Journal of Dermatology. 181 (4), 829-831 (2019).
  47. Aleissa, S., et al. Presurgical evaluation of basal cell carcinoma using combined reflectance confocal microscopy-optical coherence tomography: A prospective study. Journal of the American Academy of Dermatology. 82 (4), 962-968 (2020).
  48. Bang, A. S., et al. Noninvasive, in vivo, characterization of cutaneous metastases using a novel multimodal RCM-OCT imaging device: A case-series. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. , (2022).
  49. Dickensheets, D. L., Kreitinger, S., Peterson, G., Heger, M., Rajadhyaksha, M. Wide-field imaging combined with confocal microscopy using a miniature f/5 camera integrated within a high NA objective lens. Optics Letters. 42 (7), 1241-1244 (2017).
  50. Kose, K., et al. Automated video-mosaicking approach for confocal microscopic imaging in vivo: an approach to address challenges in imaging living tissue and extend field of view. Scientific Reports. 7 (1), 10759 (2017).
  51. Zhao, J., et al. Deep learning-based denoising in high-speed portable reflectance confocal microscopy. Lasers in Surgery and Medicine. 53 (6), 880-891 (2021).
  52. Curiel-Lewandrowski, C., Stratton, D. B., Gong, C., Kang, D. Preliminary imaging of skin lesions with near-infrared, portable, confocal microscopy. Journal of the American Academy of Dermatology. 85 (6), 1624-1625 (2021).
  53. Freeman, E. E., et al. Feasibility and implementation of portable confocal microscopy for point-of-care diagnosis of cutaneous lesions in a low-resource setting. Journal of the American Academy of Dermatology. 84 (2), 499-502 (2021).
  54. Peterson, G., et al. Feasibility of a video-mosaicking approach to extend the field-of-view for reflectance confocal microscopy in the oral cavity in vivo. Lasers in Surgery and Medicine. 51 (5), 439-451 (2019).
  55. Kurugol, S., et al. Automated delineation of dermal-epidermal junction in reflectance confocal microscopy image stacks of human skin. Journal of Investigative Dermatology. 135 (3), 710-717 (2015).
  56. Kose, K., et al. Utilizing machine learning for image quality assessment for reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 140 (6), 1214-1222 (2020).
  57. Campanella, G., et al. Deep learning for basal cell carcinoma detection for reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 142 (1), 97-103 (2022).
  58. Wodzinski, M., Skalski, A., Witkowski, A., Pellacani, G., Ludzik, J. Convolutional neural network approach to classify skin lesions using reflectance confocal microscopy. 41st Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society EMBC 2019. , (2019).
check_url/pt/63789?article_type=t&slug=combining-reflectance-confocal-microscopy-with-optical-coherence

Play Video

Citar este artigo
Harris, U., Rajadhyaksha, M., Jain, M. Combining Reflectance Confocal Microscopy with Optical Coherence Tomography for Noninvasive Diagnosis of Skin Cancers via Image Acquisition. J. Vis. Exp. (186), e63789, doi:10.3791/63789 (2022).

View Video