Summary

Mikrofluidisk anordning för separation av icke-metastatiska (MCF-7) och icke-tumör (MCF-10A) bröstcancerceller med AC-dielektrofores

Published: August 11, 2022
doi:

Summary

Bröstcancerceller uppvisar olika dielektriska egenskaper jämfört med icke-tumörbröstepitelceller. Det har antagits att de två populationerna, baserat på denna skillnad i dielektriska egenskaper, kan separeras för immunterapiändamål. För att stödja detta modellerar vi en mikrofluidisk enhet för att sortera MCF-7- och MCF-10A-celler.

Abstract

Dielektroforetiska anordningar kan detektera och manipulera cancerceller på ett etikettfritt, kostnadseffektivt, robust och exakt sätt med hjälp av principen om polarisering av cancercellerna i provvolymen genom att applicera ett externt elektriskt fält. Denna artikel visar hur en mikrofluidisk plattform kan användas för kontinuerlig sortering med hög genomströmning av icke-metastatiska bröstcancerceller (MCF-7) och icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A) med hjälp av hydrodynamisk dielektrofores (HDEP) från cellblandningen. Genom att generera ett elektriskt fält mellan två elektroder placerade sida vid sida med ett mikronstort gap mellan dem i ett HDEP-mikrofluidiskt chip, kan icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A) skjutas bort och uppvisa negativ DEP inuti huvudkanalen, medan de icke-metastatiska bröstcancercellerna följer sin kurs opåverkade när de suspenderas i cellmedium på grund av att de har konduktivitet högre än membranledningsförmågan. För att demonstrera detta koncept utfördes simuleringar för olika värden av medelledningsförmåga, och sortering av celler studerades. En parametrisk studie genomfördes och en lämplig cellblandningsledningsförmåga visade sig vara 0,4 S/m. Genom att hålla medelledningsförmågan fixerad fastställdes en adekvat växelströmsfrekvens på 0,8 MHz, vilket gav maximal sorteringseffektivitet genom att variera den elektriska fältfrekvensen. Med hjälp av den demonstrerade metoden, efter val av lämplig cellblandningssuspensionsmediumledningsförmåga och frekvens för den applicerade AC, kan maximal sorteringseffektivitet uppnås.

Introduction

En malign tumör som utvecklas i och runt bröstvävnaden är en vanlig orsak till bröstcancer hos kvinnor över hela världen och orsakar ett kritiskt hälsoproblem1. Brösttumörer före metastasering kan behandlas genom kirurgi om de upptäcks i ett tidigt skede, men om de ignoreras kan de få allvarliga konsekvenser för patientens liv genom att sprida sig till lungorna, hjärnan och benen. De behandlingar som erbjuds i senare skeden, såsom strålning och kemikaliebaserade terapier, har allvarliga biverkningar2. Nya studier har rapporterat att en tidig diagnos av bröstcancer minskar dödligheten med 60%3. Därför är det absolut nödvändigt att arbeta mot personliga metoder för tidig upptäckt. För detta ändamål har forskare som arbetar inom olika vetenskaps- och teknikområden använt mikrofluidik för att utveckla enheter för tidig diagnos av bröstcancer4. Dessa metoder inkluderar mikrokromatografi med cellaffinitet, magnetaktiverade mikrocellsorterare, storleksbaserad infångning och separation av cancerceller och dielektrofores på chip (DEP)5,6. Dessa mikrofluidiska tekniker som rapporteras i litteraturen möjliggör exakt cellmanipulation, realtidsövervakning och sortering av väldefinierade prover, som fungerar som ett mellansteg i många diagnostiska och terapeutiska tillämpningar5. Integrationen av dessa sorteringsmekanismer med mikrofluidik erbjuder flexibel och tillförlitlig manipulation av målcellerna 7,8,9,10. En av de främsta fördelarna med en sådan integration är förmågan att arbeta med vätskeprover i nano till mikrolitervolymer och även att kunna manipulera provvätskans elektriska egenskaper. Genom att justera konduktiviteten hos suspenderande vätskan inuti mikrofluidiska anordningar kan de biologiska cellerna sorteras baserat på deras storlekar och skillnader i deras dielektriska egenskaper11,12.

Bland dessa tekniker är on-chip DEP ofta att föredra eftersom det är en etikettfri cellsorteringsteknik som utnyttjar de biologiska provernas elektriska egenskaper. DEP har rapporterats manipulera bioprover som DNA 13, RNA 14, proteiner 15, bakterier 16, blodkroppar17, cirkulerande tumörceller (CTC)18 och stamceller 19. Mikrofluidiska anordningar som använder DEP för sortering av biologiska prover har rapporterats utförligt i litteratur20. Reservoarbaserade DEP-mikrofluidiska (rDEP) anordningar för sortering av livskraftiga och icke-livskraftiga jästceller har rapporterats som skyddar cellerna från de negativa effekterna av elektrokemiska reaktioner21,22. rapporterade en castellerad mikrofluidisk cellsorterare som separerade röda blodkroppar från blodplättar med en effektivitet på 97%23. On-chip DEP-enheter med asymmetriska öppningar och inbäddade elektroder har också rapporterats sortera livskraftiga och icke-livskraftiga celler24. modifierade den castellerade mikrofluidiska cellsorteraren genom att införa två matriser av mikroelektroder på båda sidor av kanalen25,26. Detta hjälpte till att fokusera cellerna i mitten av kanalen. presenterade en DEP-baserad mikrofluidisk enhet för att separera och koncentrera MCF7-bröstcancerceller från leukocyter27. De rapporterade en effektivitet för att extrahera MCF7-celler från leukocyter mellan 74% -98% med en frekvens på 1 MHz och en applicerad spänning som sträcker sig från 10-12 Vpp. Tilläggstabell 1 representerar en kvalitativ och kvantitativ jämförelse mellan de DEP-baserade mikrofluidiska sorteringsanordningarna baserat på deras design, elektrodkonfiguration och driftsparametrar (tillämpad frekvens och spänning).

På senare tid har forskare försökt mäta skillnaderna i det dielektriska beteendet hos bröstepitelceller (MCF-10A) och icke-metastatiska bröstcancerceller (MCF-7) inuti ett mikrofluidiskt chip28,29. karakteriserade också de dielektriska svaren hos olika cancercellinjer med hjälp av en öppen koaxial sondteknik med frekvenser mellan 200 MHz och 13.6 GHz30. Dessa skillnader i de dielektriska svaren hos MCF-7 och MCF-10A cellinjer kan utnyttjas för att separera dem under körning och kan leda till utveckling av personliga diagnosanordningar i tidigt skede.

I den här artikeln simulerar vi den kontrollerade sorteringen av icke-metastatiska bröstcancerceller (MCF-7) och icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A) med hjälp av AC-dielektrofores. Förändringsområdet i det elektriska fältet påverkar sorteringen inuti det mikrofluidiska chipet. Den föreslagna tekniken är enkel att implementera och möjliggör integration av sorteringstekniken i olika mikrofluidiska chiplayouter. Simuleringar av beräkningsvätskedynamik (CFD) utfördes för att studera separationen av icke-metastatiska bröstcancerceller och icke-tumörbröstepitelceller genom att variera konduktiviteten hos det vätskemedium i vilket celler suspenderades. I dessa simuleringar visas att genom att hålla konduktiviteten konstant och genom att ändra den tillämpade frekvensen kan separationen av cancerceller och friska celler kontrolleras.

Protocol

OBS: Protokollet här använder COMSOL, en multifysiksimuleringsprogramvara, för att simulera kontrollerad sortering av icke-metastatiska bröstcancerceller (MCF-7) och icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A) med AC-dielektrofores. 1. Chipdesign och parameterval Öppna multifysikprogramvara och välj Tom modell. Högerklicka på de globala definitionerna och välj Parametrar. Importera parametrarna i tabell …

Representative Results

Undersöka de optimala driftsparametrarna för effektiv DEP-baserad sortering av icke-metastaserande bröstcancerceller (MCF-7) och icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A)För att uppnå en framgångsrik separation av icke-metastatisk bröstcancer (MCF-7) och icke-tumörbröstepitelceller (MCF-10A) med divergerande dielektriska egenskaper när de genomgår dielektrofores, bör deras K-faktorer särskiljas genom att hålla den applicerade frekvensen fixerad37,38<sup …

Discussion

Mikrofluidiska enheter har tidigare rapporterats för cellodling, fångst och sortering 47,52,53. Tillverkningen av dessa enheter i renrummet är en dyr process, och det är absolut nödvändigt att kvantifiera produktionen och effektiviteten hos en föreslagen mikrofluidisk enhet genom CFD-simuleringar. Denna studie presenterar design och simuleringar av en AC-dielektroforetisk mikrofluidisk anordning för kontinuerlig separati…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av Pakistans högre utbildningskommission.

Materials

COMSOL COMSOL multiphysics simulation software

Referências

  1. Liang, L., et al. Microfluidic-based cancer cell separation using active and passive mechanisms. Microfluidics and Nanofluidics. 24 (4), 26 (2020).
  2. Damiati, S., Kompella, U. B., Damiati, S. A., Kodzius, R. Microfluidic devices for drug delivery systems and drug screening. Genes. 9 (2), 103 (2018).
  3. Pashayan, N., et al. Personalized early detection and prevention of breast cancer: ENVISION consensus statement. Nature Reviews Clinical Oncology. 17 (11), 687-705 (2020).
  4. Panesar, S., Neethirajan, S. Microfluidics: Rapid diagnosis for breast cancer. Nano-micro Letters. 8 (3), 204-220 (2016).
  5. Chen, J., Li, J., Sun, Y. Microfluidic approaches for cancer cell detection, characterization and separation. Lab on a Chip. 12 (10), 1753-1767 (2012).
  6. Beech, J. P., Holm, S. H., Adolfsson, K., Tegenfeldt, J. O. Sorting cells by size, shape and deformability. Lab on a Chip. 12 (6), 1048-1051 (2012).
  7. Kang, Y., Li, D. Electrokinetic motion of particles and cells in microchannels. Microfluidics and Nanofluidics. 6 (4), 431-460 (2009).
  8. Schmid, L., Weitz, D. A., Franke, T. Acoustic microfluidic fluorescence-activated cell sorter. Lab on a Chip. 14 (19), 3710-3718 (2014).
  9. Yu, B. Y., Elbuken, C., Shen, C., Huissoon, J. P., Ren, C. L. An integrated microfluidic device for the sorting of yeast cells using image processing. Scientific Reports. 8, 3550 (2014).
  10. Asiaei, S., Darvishi, V., Davari, M. H., Zohrevandi, D., Moghadasi, H. Thermophoretic isolation of circulating tumor cells, numerical simulation and design of a microfluidic chip. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 137 (3), 831-839 (2019).
  11. Song, Y., Li, M., Pan, X., Wang, Q., Li, D. Size-based cell sorting with a resistive pulse sensor and an electromagnetic pump in a microfluidic chip. Electrophoresis. 36 (3), 398-404 (2014).
  12. Giraud, G., et al. Dielectrophoretic manipulation of ribosomal RNA. Biomicrofluidics. 5 (2), 024116 (2011).
  13. Valero, A., Braschler, T., Demierre, N., Renaud, P. A miniaturized continuous dielectrophoretic cell sorter and its applications. Biomicrofluidics. 4 (2), 022807 (2010).
  14. Allahrabbi, N., Chia, Y. S. M., Saifullah, M. S. M., Lim, K. M., Lanry Yung, L. Y. A hybrid dielectrophoretic system for trapping of microorganisms from water. Biomicrofluidics. 9 (3), 034110 (2015).
  15. Vykoukal, D. M., Gascoyne, P. R. C., Vykoukal, J. Dielectric characterization of complete mononuclear and polymorphonuclear blood cell subpopulations for label-free discrimination. Integrative Biology: Quantitative Biosciences from Nano to Macro. 1 (7), 477-484 (2009).
  16. Shim, S., et al. Antibody-independent isolation of circulating tumor cells by continuous-flow dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 7 (1), 11807 (2013).
  17. Jeon, H. J., Lee, H., Yoon, D. S., Kim, B. M. Dielectrophoretic force measurement of red blood cells exposed to oxidative stress using optical tweezers and a microfluidic chip. Biomedical Engineering Letters. 7 (4), 317-323 (2017).
  18. Song, H., et al. Continuous-flow sorting of stem cells and differentiation products based on dielectrophoresis. Lab on a Chip. 15 (5), 1320-1328 (2015).
  19. Tsai, S. L., Chiang, Y., Wang, M. H., Chen, M. K., Jang, L. S. Battery-powered portable instrument system for single-cell trapping, impedance measurements, and modeling analyses. Electrophoresis. 35 (16), 2392-2400 (2014).
  20. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 011503 (2018).
  21. Patel, S., et al. Microfluidic separation of live and dead yeast cells using reservoir-based dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 6 (3), 34102 (2012).
  22. Yildizhan, Y., Erdem, N., Islam, M., Martinez-Duarte, R., Elitas, M. Dielectrophoretic separation of live and dead monocytes using 3D carbon-electrodes. Sensors. 17 (11), 2691-2704 (2017).
  23. Piacentini, N., Mernier, G., Tornay, R., Renaud, P. Separation of platelets from other blood cells in continuous-flow by dielectrophoresis field-flow-fractionation. Biomicrofluidics. 5 (3), 34122 (2011).
  24. Zhao, K., Duncker, B. P., Li, D. Continuous cell characterization and separation by microfluidic alternating current dielectrophoresis. Analytical Chemistry. 91 (9), 6304-6314 (2019).
  25. Valero, A., et al. Tracking and synchronization of the yeast cell cycle using dielectrophoretic opacity. Lab on a Chip. 11 (10), 1754-1760 (2011).
  26. Demierre, N., Braschler, T., Muller, R., Renaud, P. Focusing and continuous separation Of cells in a microfluidic device using lateral dielectrophoresis. International Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems Conference. 430 (98), 1777-1780 (2007).
  27. Arslan, Z. C., Yalçın, Y. D., Külah, H. Label-free enrichment of MCF7 breast cancer cells from leukocytes using continuous flow dielectrophoresis. Electrophoresis. 43 (13-14), 1531-1544 (2022).
  28. Turcan, I., Olariu, M. A. Dielectrophoretic manipulation of cancer cells and their electrical characterization. ACS Combinatorial Science. 22 (11), 554-578 (2020).
  29. Park, J., et al. Sequential cell-processing system by integrating hydrodynamic purification and dielectrophoretic trapping for analyses of suspended cancer cells. Micromachines. 11 (1), 47 (2020).
  30. Hussein, M., et al. Breast cancer cells exhibits specific dielectric signature in vitro using the open-ended coaxial probe technique from 200 MHz to 13.6 GHz. Scientific Reports. 9, 4681 (2019).
  31. Fornes-Leal, A., Garcia-Pardo, C., Frasson, M., Pons Beltrán, V., Cardona, N. Dielectric characterization of healthy and malignant colon tissues in the 0.5-18 GHz frequency band. Physics in Medicine and Biology. 61 (20), 7334-7346 (2016).
  32. Çetin, B., Li, D. Dielectrophoresis in microfluidics technology. Electrophoresis. 32 (18), 2410-2427 (2011).
  33. Khan, S., Khulief, Y. A., Al-Shuhail, A. A. Effects of reservoir size and boundary conditions on pore-pressure buildup and fault reactivation during CO2 injection in deep geological reservoirs. Environmental Earth Sciences. 79, 294 (2020).
  34. Adams, T. N. G., Turner, P. A., Janorkar, A. V., Zhao, F., Minerick, A. R. Characterizing the dielectric properties of human mesenchymal stem cellsand the effects of charged elastin-like polypeptide copolymer treatment. Biomicrofluidics. 8 (5), 054109 (2014).
  35. Lo, Y. J., et al. Measurement of the Clausius-Mossotti factor of generalized dielectrophoresis. Applied Physics Letters. 104, 083701 (2014).
  36. Lo, Y. J., Lei, U. Measurement of the real part of the Clausius-Mossotti factor of dielectrophoresis for Brownian particles. Electrophoresis. 41 (1), 137-147 (2020).
  37. Ohta, A. T., et al. Optically controlled cell discrimination and trapping using optoelectronic Tweezers. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics. 13 (2), 235-242 (2007).
  38. Sun, T., Morgan, H. Single-cell microfluidic Impedance cytometry. Microfluidics and Nanofluidics. 8 (4), 423-443 (2010).
  39. Weng, P. Y., et al. Size-dependent dielectrophoretic cross-over frequency of spherical particles. Biomicrofluidics. 10 (1), 1909-1921 (2016).
  40. Lu, Y. W., Sun, C., Kao, Y. C., Hung, C. L., Juang, J. Y. Dielectrophoretic cross-over frequency of single particles: Quantifying the effect of surface functional groups and electrohydrodynamic flow drag force. Nanomaterials. 10 (7), 1364 (2020).
  41. Henslee, E. A., Sano, M. B., Rojas, A. D., Schmelz, E. M., Davalos, R. V. Selective concentration of human cancer cells using contactless dielectrophoresis. Electrophoresis. 32 (18), 2523-2529 (2011).
  42. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 11503-11525 (2018).
  43. Gascoyne, P. R. C., Shim, S. Isolation of circulating tumor cells by dielectrophoresis. Cancers. 6 (1), 545-579 (2014).
  44. Liang, W., et al. Determination of dielectric properties of cells using ac electrokinetic-based microfluidic platform. Micromachines. 11 (5), 513-537 (2020).
  45. Frusawa, H., et al. Frequency-modulated wave dielectrophoresis of vesicles and cells periodic U-turns at the crossover frequency. Nanoscale Research Letters. 13 (169), 2583-2589 (2018).
  46. Wei, M. T., Junio, J., Ou-Yang, D. H. Direct measurements of the frequency-dependent dielectrophoresis force. Biomicrofluidics. 3 (1), 12003 (2009).
  47. Mustafa, A., Pedone, E., Marucci, L., Moschou, D., Lorenzo, M. D. A flow-through microfluidic chip for continuous dielectrophoretic separation of viable and non-viable human T-cells. Electrophoresis. 43 (3), 501-508 (2021).
  48. Wang, L., et al. Dual frequency dielectrophoresis with interdigitated sidewall electrodes for microfluidic flow-through separation of beads and cells. Electrophoresis. 30 (5), 782-791 (2021).
  49. Alazzam, A., Mathew, B., Alhammadi, F. Novel microfluidic device for the continuous separation of cancer cells using dielectrophoresis. Journal of Separation Science. 40 (5), 1193-1200 (2017).
  50. Yang, L., Banada, P. P., Bhunia, A. K., Bashir, R. Effects of dielectrophoresis on growth viability and immuno-reactivity of listeria monocytogenes. Journal of Biological Engineering. 2, 6 (2008).
  51. Matbaechi, H., Soltani, P., Hölzel, R., Wenger, C. Dielectrophoretic immobilization of yeast cells using CMOS integrated microfluidics. Micromachines. 11 (5), 501-518 (2020).
  52. Mustafa, A., Pedone, E., La Regina, A., Erten, A. A., Marucci, L. Development of a single layer microfluidic device for dynamic stimulation, culture and imaging of mammalian cells. bioRxiv. , (2022).
  53. Mustafa, A., et al. Enhanced dissolution of liquid microdroplets in the extensional creeping flow of a hydrodynamic trap. Langmuir. 32 (37), 9460-9467 (2016).
  54. Chang, H. F., Chou, S. E., Cheng, J. Y. Electric-field-induced neural precursor cell differentiation in microfluidic devices. Journal of Visualized Experiments. (170), e61917 (2021).
check_url/pt/63850?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
ur Rehman, A., Zabibah, R. S., Kharratian, S., Mustafa, A. Microfluidic Device for the Separation of Non-Metastatic (MCF-7) and Non-Tumor (MCF-10A) Breast Cancer Cells Using AC Dielectrophoresis. J. Vis. Exp. (186), e63850, doi:10.3791/63850 (2022).

View Video