Summary

Fabrikasjon og karakterisering av lag-for-lag Janus base nano-matrise for å fremme brusk regenerering

Published: July 06, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver montering av en lag-for-lag Janus base nano-matrise (JBNm) stillas ved å legge Janus base nanorør (JBNts), matrilin-3, og Transforming Growth Factor Beta-1 (TGF-β1) sekvensielt. JBNm ble fabrikkert og karakterisert; I tillegg viste den utmerket bioaktivitet, oppmuntrende cellefunksjoner som vedheft, proliferasjon og differensiering.

Abstract

Ulike stillas biomateriale er utviklet for å veilede celleadhesjon og proliferasjon i håp om å fremme spesifikke funksjoner for in vitro og in vivo bruk. Tilsetningen av vekstfaktorer i disse biomaterialestillasene gjøres vanligvis for å gi et optimalt cellekulturmiljø, formidle celledifferensiering og dets påfølgende funksjoner. Imidlertid er vekstfaktorene i et konvensjonelt biomateriale stillas vanligvis designet for å frigjøres ved implantasjon, noe som kan føre til utilsiktede bivirkninger på omgivende vev eller celler. Her har den DNA-inspirerte Janus base nano-matrisen (JBNm) vellykket oppnådd et svært lokalisert mikromiljø med en lag-for-lag-struktur for selvbærekraftige bruskvevskonstruksjoner. JBNms er selvmontert fra Janus base nanorør (JBNts), matrilin-3, og transformerende vekstfaktor beta-1 (TGF-β1) via bioaffinitet. JBNm ble montert i et TGF-β1: matrilin-3: JBNt-forhold på 1: 4: 10, da dette har vært det bestemte forholdet der riktig montering i lag-for-lag-strukturen kunne forekomme. Først ble TGF-β1-løsningen lagt til matrilin-3-løsningen. Deretter ble denne blandingen pipettert flere ganger for å sikre tilstrekkelig homogenitet før tilsetning av JBNt-løsningen. Dette dannet lag-for-lag JBNm, etter pipettering flere ganger igjen. En rekke eksperimenter ble utført for å karakterisere lag-for-lag JBNm-strukturen, JBNts alene, matrilin-3 alene og TGF-β1 alene. Dannelsen av JBNm ble studert med UV-Vis absorpsjonsspektra, og strukturen til JBNm ble observert med transmisjonselektronmikroskopi (TEM). Når det innovative lag-for-lag JBNm-stillaset dannes på molekylær skala, kan det fluorescerende fargestoffmerkede JBNm observeres. TGF-β1 er begrenset i det indre laget av den injiserbare JBNm, som kan forhindre frigjøring av vekstfaktorer til omkringliggende områder, fremme lokalisert kondrogenese og fremme et antihypertrofisk mikromiljø.

Introduction

Stillas i vevsteknikk spiller en viktig rolle i å gi strukturell støtte til cellefeste og påfølgende vevsutvikling1. Vanligvis er konvensjonelle vevskonstruksjoner uten stillas avhengig av cellekulturmiljøet og tilførte vekstfaktorer for å formidle celledifferensiering. Videre er denne tilsetningen av bioaktive molekyler i stillaser ofte den foretrukne tilnærmingen for å lede celledifferensiering og funksjon 2,3. Noen stillaser kan etterligne det biokjemiske mikromiljøet i innfødte vev uavhengig, mens andre kan direkte påvirke cellefunksjoner via vekstfaktorer. Imidlertid møter forskere ofte utfordringer ved valg av stillaser som kan påvirke celleadhesjon, vekst og differensiering positivt, samtidig som det gir optimal strukturell støtte og stabilitet over en lang periode 4,5. De bioaktive molekylene er ofte løst bundet til stillaset, noe som fører til rask frigjøring av disse proteinene ved implantasjon, noe som resulterer i frigjøring på uønskede steder. Dette kulminerer i bivirkninger på vev eller celler som ikke med vilje var målrettet 6,7.

Stillaser er vanligvis laget av polymere materialer. Janus base nano-matrix (JBNm) er en biomimetisk stillasplattform laget med en ny lag-for-lag-metode for selvbærende bruskvevskonstruksjon8. Disse nye DNA-inspirerte nanorørene har blitt kalt Janus base nanorør (JBNts), da de riktig etterligner strukturen og overflatekjemien til kollagen som finnes i den ekstracellulære matrisen (ECM). Med tilsetning av bioaktive molekyler, som matrilin-3 og Transforming Growth Factor Beta-1 (TGF-β1), kan JBNm skape et optimalt mikromiljø som deretter kan stimulere ønsket celle- og vevsfunksjonalitet9.

JBNts er nye nanorør avledet fra syntetiske versjoner av nukleobase adenin og tymin. JBNts dannes gjennom selvmontering10; Seks syntetiske nukleobaser bindes for å danne en ring, og disse ringene gjennomgår π-π stablingsinteraksjoner for å skape et nanorør 200-300 μm i lengde11. Disse nanorørene er strukturelt lik kollagenproteiner; ved å etterligne et aspekt av det innfødte bruskmikromiljøet, har JBNts vist seg å gi et gunstig festested for kondrocytter og humane mesenkymale stamceller (hMSCs)11,12,13,14. Fordi nanorørene gjennomgår selvmontering og ikke krever noen form for initiator (for eksempel UV-lys), viser de spennende potensial som et injiserbart stillas for vanskelig tilgjengelige defektområder15.

Matrilin-3 er et strukturelt ekstracellulært matriksprotein som finnes i brusk. Dette proteinet spiller en viktig rolle i kondrogenese og riktig bruskfunksjon16,17. Nylig har det blitt inkludert i biomateriale stillaser, oppmuntrende kondrogenese uten hypertrofi 9,18,19. Ved å inkludere dette proteinet i JBNm, tiltrekkes bruskceller til et stillas som inneholder lignende komponenter som det opprinnelige mikromiljøet. I tillegg har det vist seg at matrilin-3 er nødvendig for riktig TGF-β1-signalering i kondrocytter20. Vekstfaktorer fungerer som signalmolekyler, noe som forårsaker spesifikk vekst av en bestemt celle eller vev. For å oppnå optimal bruskregenerering er matrilin-3 og TGF-β1 essensielle komponenter i JBNm. Tilsetningen av TGF-β1 i lag-for-lag-stillaset kan ytterligere fremme bruskregenerering i en vevskonstruksjon. TGF-β1 er en vekstfaktor som brukes til å oppmuntre helbredelsesprosessen av osteokondrale defekter, oppmuntre kondrocytt og hMSC-spredning og differensiering21,22. Dermed spiller TGF-β1 en nøkkelrolle i bruskregenerering JBNm (J / T / M JBNm) 23, og oppmuntrer til riktig vekst, spesielt når den er lokalisert i JBNm-lagene.

Som nevnt tidligere er vekstfaktorer vanligvis samlet på utsiden av stillas uten spesifikke metoder for inkorporering. Her, med den nøyaktig utformede nanoarkitekturen til biomaterialene, ble JBNm utviklet for spesifikk målretting av tiltenkte celler og vev. JBNm består av TGF-β1 festet på JBNt-overflater i det indre laget og matrilin-3 festet på JBNt-overflater i det ytre laget24,25. Inkorporeringen av TGF-β1 i det indre laget av lag-for-lag-strukturen muliggjør et svært lokalisert mikromiljø langs JBNm-fibrene, og skaper en homeostatisk vevskonstruksjon med en mye langsommere frigjøring av proteinet12. Injiserbarheten til JBNm gjør den til en ideell bruskvevskonstruksjon for ulike fremtidige biomaterialeapplikasjoner26.

Protocol

1. Syntese av JBNts Forbered JBNt-monomeren ved bruk av tidligere publiserte metoder, som involverer syntese av en rekke forbindelser12. Rens rå JBNt-monomer etter at den har blitt syntetisert med høyytelses væskekromatografi (HPLC) ved hjelp av en omvendt fasekolonne. Bruk løsningsmiddel A: 100% vann, løsningsmiddel B: 100% acetonitril og løsningsmiddel C: HCl vannoppløsning med pH = 1. Bruk en strømningshastighet på 3 ml/min. Samle den største toppe…

Representative Results

Etter protokollen ble JBNts vellykket syntetisert og karakterisert med UV-Vis-absorpsjon og TEM. JBNm er et injiserbart fast stillas som gjennomgår en rask biomimetisk prosess. Etter at JBNts ble tilsatt til en blanding av TGF-β1 / matrilin-3-løsning i et fysiologisk miljø, ble det dannet et solidt hvitmasket stillas som indikerer vellykket montering av JBNm, som vist i figur 1. Dette ble demonstrert i karakteriseringsmetodene. Under fysiologiske forhold er ma…

Discussion

Målet med denne studien er å utvikle en biomimetisk stillasplattform, JBNm, for å overvinne begrensningene i konvensjonelle vevskonstruksjoner som er avhengige av cellekulturmiljøer for å formidle celledifferensiering. JBNm er et lag-for-lag struktur stillas for en selvbærende bruskvevskonstruksjon. Den innovative designen er basert på nye DNA-inspirerte nanomaterialer, JBNts. JBNm, sammensatt av JBNts30, TGF-β1 og matrilin-3, er satt sammen gjennom en ny lag-for-lag-teknikk der stillasets…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet støttes av NIH-tilskudd 7R01AR072027 og 7R03AR069383, NSF Career Award 1905785, NSF 2025362 og University of Connecticut. Dette arbeidet støttes også delvis av NIH-stipend S10OD016435.

Materials

10 % Normal Goat Serum Thermo Fisher 50062Z Agent used to block nonspecific antibody binding actions during staining.
24-well plate Corning 07-200-740 24-well plate used for comparative cell culture.
384-Well Black Untreated Plate Thermo Fisher 262260 384-well plate used for absorption measurements.
8-well chambered coverglass Thermo Fisher 155409PK 8-well coverglass used for comparative cell culture.
96-well flat bottom Corning 07-200-91 96-well plate used for comparative cell culture.
96-Well Plate non- treated Thermo Fisher 260895 96-well plate used for comparative cell culture and analysis.
Agarose Gel Sigma-Aldrich A9539 Hydrogel used for cell culture.
Agarose Gel Sigma Aldrich A9539 Hydrogel used as an environment for cell culture.
Alexa Fluor Microscale Protein Labeling Kit Thermo Fisher A30006 (488) and A30007 (555) Fluorescent dye used to label proteins.
Anti-Collagen X Antibody Thermo Fisher 41-9771-82 Antibody used to stain collagen-X.
Bio-Rad PCR Machine Bio-Rad Equipment used to perform PCR on samples.
C28/I2 Chondrocyte Cell Line Cells used to analyze proliferative abilities of various samples.
Cell Counting Kit 8 Milipore Sigma 96992 Cell proliferation assay.
Cell Profiler Broad Institute Software used to analyze cell images.
Cryostat Microtome Equipment used to produce thin segments of samples for use in staining and microscopy.
DAPI Invitrogen D1306 Blue fluorescent stain that binds to adenine-thymine DNA regions.
Disposable cuvettes FISHER Scientific 14-955-128 Container used for spectrophotometry.
DMEM Cell Culture Medium Thermo Fisher 10566032 Media used to support cellular growth.
Fetal Bovine Serum GIBCO A4766801 Serum used in cell culture medium to support cell growth.
Fluoromount-G Mounting Medium Thermo Fisher 00-4958-02 Solution used to mount slides for immunostaining.
Formaldehyde Compound used to fix samples prior to microtoming.
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody Thermo Fisher A16110 Antibody used for protein staining.
Human Mesenchymal Stem Cells LONZA PT-2501 Cells used to analyze differentiative abilities of various samples.
Human Mesenchymal Stem Chondrogenic Medium LONZA PT-3003 Cell medium used to promote chondrogenic differentiation.
ImageJ National Institutes of Health Image analysis software used in conjunction with microscopy.
itaq Universal SYBR Green One-Step Kit BioRad 1725150 Kit used for PCR.
Janus-base nanotubes (JBNts) Nanotube made from synthetic nucleobases to act as cell scaffolding tool.
LaB6 20-120 kV Transmission Electronic Microscope Tecnai Equipment used to perform transmission electron microscopy on a sample.
MATLAB MathWorks Statistical software used for modeling and data analysis.
Matrilin-3 Fisher Scientific 3017MN050 Structural protein used as adhesion sites for chondrocytes.
NanoDrop Spectrophotometer Thermo Fisher Equipment used to measure absorption values of a sample.
Nikon A1R Spectral Confocal Microscope Nikon A1R HD25 Confocal microscope used to analyze samples.
Number 1.5 Chamber Coverglass Thermo Fisher 152250 Environment for sterile cell culture and imaging.
Optimal Cutting Temperature Compound Reagent Compound used to embed cells prior to microtoming.
Paraformaldehyde Thermo Scientific AAJ19943K2 Compound used to fix cells.
PDC-32G Plasma Cleaner Harrick Plasma Cleaner used to prepare grids prior to transmission electron microscopy.
penicillin-streptomycin GIBCO 15-140-148 Antibiotic agent used to discourage bacterial growth during cell culture.
Phosphate Buffered Saline Thermo Fisher 10010023 Solution used to wash cell medium and act as a buffer during experimentation.
Rhodamine-phalloidin Invitrogen R415 F-Actin red fluorescent dye.
Rneasy Plant Mini Kit QIAGEN 74904 Kit used to filter and homogenize samples during RNA extraction.
Sucrose Solution Solution used to process samples prior to microtoming.
TGF beta-1 Human ELISA Kit Invitrogen BMS249-4 Assay kit used to determine the presence of TGF-β1 in a sample.
TGF-β1 PEPROTECH 100-21C Growth factor used for the stimulation of chondrogenic differentiation and proliferation.
Triton-X Invitrogen HFH10 Compound used to lyse cells not fixed during staining process.
TRIzol Reagent Thermo Fisher 15596026 Reagent used to isolate RNA.
Zetasizer Nano ZS Malvern Panalytical Equipment used to measure zeta-potential values of a sample.

Referências

  1. Chan, B. P., Leong, K. W. Scaffolding in tissue engineering: general approaches and tissue-specific considerations. European Spine Journal. 17, 467-479 (2008).
  2. Heo, D. N., et al. 3D bioprinting of carbohydrazide-modified gelatin into microparticle-suspended oxidized alginate for the fabrication of complex-shaped tissue constructs. ACS Applied Material Interfaces. 12 (18), 20295-20306 (2020).
  3. Almeida, H. V., et al. Anisotropic shape-memory alginate scaffolds functionalized with either type i or type ii collagen for cartilage tissue engineering. Tissue Engineering. Part A. 23 (1-2), 55-68 (2017).
  4. Vinatier, C., Guicheux, J. Cartilage tissue engineering: From biomaterials and stem cells to osteoarthritis treatments. Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. 59 (3), 139-144 (2016).
  5. Filardo, G., Kon, E., Roffi, A., Di Martino, A., Marcacci, M. Scaffold-based repair for cartilage healing: a systematic review and technical note. Arthroscopy. 29 (1), 174-186 (2013).
  6. James, A. W., et al. A review of the clinical side effects of bone morphogenetic protein-2. Tissue Engineering. Part B, Reviews. 22 (4), 284-297 (2016).
  7. Blaney Davidson, E. N., vander Kraan, P. M., vanden Berg, W. B. TGF-beta and osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 15 (6), 597-604 (2007).
  8. Chen, Y., Yang, K. Intra-articular drug delivery systems for arthritis treatment. Rheumatology Current Research. 2, 106 (2012).
  9. Liu, Q., et al. Suppressing mesenchymal stem cell hypertrophy and endochondral ossification in 3D cartilage regeneration with nanofibrous poly(l-lactic acid) scaffold and matrilin-3. Acta Biomaterialia. 76, 29-38 (2018).
  10. Song, S., Chen, Y., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes for incorporating hydrophobic drugs in physiological environments. International Journal of Nanomedicine. 6, 101-107 (2011).
  11. Zhou, L., et al. Self-assembled biomimetic Nano-Matrix for stem cell anchorage. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 108 (4), 984-991 (2020).
  12. Zhou, L., Yau, A., Zhang, W., Chen, Y. Fabrication of a biomimetic nano-matrix with janus base nanotubes and fibronectin for stem cell adhesion. Journal of Visualized Experiments. (159), e61317 (2020).
  13. Chen, Y., Song, S., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes encapsulate and slowly release dexamethasone. International Journal of Nanomedicine. 6, 1035-1044 (2011).
  14. Chen, Y., et al. Self-assembled rosette nanotube/hydrogel composites for cartilage tissue engineering. Tissue Engineering. Part C, Methods. 16 (6), 1233-1243 (2010).
  15. Yu, H., Chen, Y. Advanced biomedical techniques for gene delivery. Recent Patents on Biomedical Engineering (Discontinued). 5 (1), 23-28 (2012).
  16. Muttigi, M. S., Han, I., Park, H. K., Park, H., Lee, S. H. Matrilin-3 role in cartilage development and osteoarthritis). International Journal of Molecular Sciences. 17 (4), 590 (2016).
  17. Pei, M., Luo, J., Chen, Q. Enhancing and maintaining chondrogenesis of synovial fibroblasts by cartilage extracellular matrix protein matrilins. Osteoarthritis Cartilage. 16 (9), 1110-1117 (2008).
  18. Bello, A. B., et al. Matrilin3/TGFbeta3 gelatin microparticles promote chondrogenesis, prevent hypertrophy, and induce paracrine release in MSC spheroid for disc regeneration. NPJ Regenerative Medicine. 6 (1), 50 (2021).
  19. Muttigi, M. S., et al. Matrilin-3 codelivery with adipose-derived mesenchymal stem cells promotes articular cartilage regeneration in a rat osteochondral defect model. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (3), 667-675 (2018).
  20. Jayasuriya, C. T., et al. Matrilin-3 chondrodysplasia mutations cause attenuated chondrogenesis, premature hypertrophy and aberrant response to TGF-beta in chondroprogenitor cells. International Journal of Molecular Sciences. 15 (8), 14555-14573 (2014).
  21. Poniatowski, L. A., Wojdasiewicz, P., Gasik, R., Szukiewicz, D. Transforming growth factor Beta family: insight into the role of growth factors in regulation of fracture healing biology and potential clinical applications. Mediators of Inflammation. 2015, 137823 (2015).
  22. Sun, Y., Lu, Y., Hu, Y., Ma, F., Chen, W. Induction of osteogenesis by bovine platelet transforming growth factor-beta (TGF-beta) in adult mouse femur. Chinese Medical Journal (English). 108 (12), 914-918 (1995).
  23. Sun, X., et al. Anti-miRNA oligonucleotide therapy for chondrosarcoma). Molecular Cancer Therapeutics. 18 (11), 2021-2029 (2019).
  24. Jayasuriya, C. T., Chen, Y., Liu, W., Chen, Q. The influence of tissue microenvironment on stem cell-based cartilage repair. Annals of the New York Academy of Sciences. 1383 (1), 21-33 (2016).
  25. Chen, Y., et al. Deficient mechanical activation of anabolic transcripts and post-traumatic cartilage degeneration in matrilin-1 knockout mice. PLoS One. 11 (6), 0156676 (2016).
  26. Zhou, L., Zhang, W., Lee, J., Kuhn, L., Chen, Y. Controlled self-assembly of DNA-mimicking nanotubes to form a layer-by-layer scaffold for homeostatic tissue constructs. ACS Applied Material Interfaces. 13 (43), 51321-51332 (2021).
  27. Belluoccio, D., Schenker, T., Baici, A., Trueb, B. Characterization of human matrilin-3 (MATN3). Genomics. 53 (3), 391-394 (1998).
  28. Yau, A., Yu, H., Chen, Y. mRNA detection with fluorescence-base imaging techniques for arthritis diagnosis. Journal of Rheumatology Research. 1 (2), 39-46 (2019).
  29. Lee, J., Sands, I., Zhang, W., Zhou, L., Chen, Y. DNA-inspired nanomaterials for enhanced endosomal escape. Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (19), (2021).
  30. Zhang, W., Chen, Y. Molecular engineering of DNA-inspired Janus base nanomaterials. Juniper Online Journal Material Science. 5 (4), 555670 (2019).
  31. Yau, A., Sands, I., Chen, Y. Nano-scale surface modifications to advance current treatment options for cervical degenerative disc disease (CDDD). Journal of Orthopedic Research and Therapy. 4 (9), 1147 (2019).
  32. Mello, M. A., Tuan, R. S. Effects of TGF-beta1 and triiodothyronine on cartilage maturation: in vitro analysis using long-term high-density micromass cultures of chick embryonic limb mesenchymal cells. Journal of Orthopaedic Research. 24 (11), 2095-2105 (2006).
  33. Shi, Y., Massague, J. Mechanisms of TGF-beta signaling from cell membrane to the nucleus. Cell. 113 (6), 685-700 (2003).
  34. Sands, I., Lee, J., Zhang, W., Chen, Y. RNA delivery via DNA-inspired janus base nanotubes for extracellular matrix penetration. MRS Advances. 5 (16), 815-823 (2020).
  35. Zhou, L., Rubin, L. E., Liu, C., Chen, Y. Short interfering RNA (siRNA)-based therapeutics for cartilage diseases. Regenerative Engineering and Translational Medicine. 7 (3), 283-290 (2020).
  36. Bi, H., et al. Deposition of PEG onto PMMA microchannel surface to minimize nonspecific adsorption. Lab on a Chip. 6 (6), 769-775 (2006).
  37. Chen, Y., Webster, T. J. Increased osteoblast functions in the presence of BMP-7 short peptides for nanostructured biomaterial applications. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 91 (1), 296-304 (2009).
  38. Sun, M., Lee, J., Chen, Y., Hoshino, K. Studies of nanoparticle delivery with in vitro bio-engineered microtissues. Bioactive Materials. 5 (4), 924-937 (2020).
  39. Yau, A., Lee, J., Chen, Y. Nanomaterials for protein delivery in anticancer applications. Pharmaceutics. 13 (2), 155 (2021).
check_url/pt/63984?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Landolina, M., Yau, A., Chen, Y. Fabrication and Characterization of Layer-By-Layer Janus Base Nano-Matrix to Promote Cartilage Regeneration. J. Vis. Exp. (185), e63984, doi:10.3791/63984 (2022).

View Video