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Artigo de método

Coloração tridimensional de rim inteiro com CUBIC

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DOI:

10.3791/63986

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18 de julho de 2022

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Neste artigo

Resumo

O presente protocolo descreve um método de clareamento tecidual e coloração imunofluorescente de montagem completa para imagens renais tridimensionais (3D). Esta técnica pode oferecer perspectivas macroscópicas na patologia renal, levando a novas descobertas biológicas.

Resumo

Embora a patologia convencional fornecesse inúmeras informações sobre a microestrutura renal, era difícil saber a estrutura precisa dos vasos sanguíneos, túbulos proximais, ductos coletores, glomérulos e nervos simpáticos no rim devido à falta de informações tridimensionais (3D). A limpeza óptica é uma boa estratégia para superar esse grande obstáculo. Múltiplas células em um órgão inteiro podem ser analisadas em resolução de célula única, combinando limpeza de tecido e técnica de imagem 3D. No entanto, os métodos de marcação celular para imagens de órgãos inteiros permanecem subdesenvolvidos. Em particular, a coloração de órgãos de montagem inteira é um desafio devido à dificuldade de penetração de anticorpos. O presente protocolo desenvolveu uma coloração renal de camundongo de montagem completa para imagens 3D com o método de clareamento tecidual CUBIC (Clear, Unobstructed Brain/Body Imaging Cocktails and Computational analysis). O protocolo possibilitou visualizar a denervação simpática renal após lesão de isquemia-reperfusão e glomerulomegalia no estágio inicial da doença renal diabética de um ponto de vista abrangente. Assim, esta técnica pode levar a novas descobertas na pesquisa renal, fornecendo uma perspectiva macroscópica.

Introdução

O rim é composto por várias populações celulares. Embora a patologia convencional nos dê muita informação sobre o microambiente renal, a imagem tridimensional (3D) é necessária para entender com precisão o crosstalk intercelular durante a progressão da doença renal. No passado, um grande número de cortes seriados e reconstrução de imagens precisava ser realizado para a imagem 3D de todo o órgão1. No entanto, este método exigiu muito esforço e teve problemas em termos de reprodutibilidade.

A limpeza óptica é uma boa estratégia para superar esse obstáculo 2,3. ....

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Protocolo

Todos os experimentos foram aprovados pelo Conselho de Revisão Institucional da Universidade de Tóquio. Todos os procedimentos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes do National Institutes of Health. Camundongos machos C57BL/6NJcl, com 8 semanas de idade, foram utilizados para o presente estudo. Os camundongos foram obtidos de fontes comerciais (ver Tabela de Materiais).

1. Preparação animal e fixação renal

  1. Realize a fixação de perfusão seguindo os passos abaixo.
    1. Anestesiar o rato por inalação de isoflurano (3%, 2,0 L/min) e administração intraperitoneal de cloridrato de me....

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Resultados

Utilizando esse método de coloração, foram visualizados nervos simpáticos [anticorpo antitirosina hidroxilase (TH)] e artérias [anticorpo anti-actina do músculo liso (αSMA) anti-α] em um rim inteiro (Figura 4A,B e Vídeo 1)9. Nervos simpáticos renais anormais também foram visualizados após lesão de isquemia/reperfusão (IRA)9,10 (Figura 4C). Além di.......

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Discussão

O presente protocolo permitiu a imagem 3D de todo o rim de várias estruturas, como nervos simpáticos, ductos coletores, artérias, túbulos proximais e glomérulos 9,10,11. Esse método de coloração ofereceu observação macroscópica e levou a novas descobertas biológicas, visualizando a alteração dos nervos simpáticos renais após lesão de isquemia-reperfusão 9,10 e glomerulomegalia no estágio inicia.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Parte deste trabalho foi realizado através da colaboração com o Prof. Hiroki R. Ueda (Universidade de Tóquio), Prof. Etsuo A. Susaki (Universidade de Juntendo), Prof. Tetsuhiro Tanaka (Universidade de Tohoku), Prof. Masafumi Fukagawa, Dr. Takehiko Wada e Dr. Hirotaka Komaba (Universidade de Tokai).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
14 mL Tubo de ensaio PP de alta clarezaFalcon352059Limpeza de tecidos, coloração, lavagem
2,3-dimetil-1-fenil-5-pirazolona / antipirinaChemical IndustryD1876CUBIC-R +
37%-Formaldeído SoluçãoNacalai Tesque16223-55Pós-fixação
4%-Paraformaldeído Solução Tampão de FosfatoNacalai Tesque09154-85Fixação renal
Alexa Flour 555 anticorpo IgG anti-ovelha conjugado para burroInvitrogenA-21436Anticorpo secundário (1:100)
Alexa Flour 647 anticorpo IgG anti-coelho conjugado para burroInvitrogenA-31573Anticorpo secundário (1:200)
Anticorpo anti-aquaporina 2 (AQP2)Abcamab199975Anticorpo primário (1:100)
Anticorpo anti-podocinaSigma-AldrichP0372Anticorpo primário (1:100)
Anticorpo anti-cotransportador de glicose sódica 2 (SGLT2)Abcamab85626Anticorpo primário (1:100)
Anticorpo antitirosina hidroxilase (TH)Abcamab113Anticorpo primário (1:100)
Anticorpo anti-&alfa;-actina de músculo liso (α-SMA)Abcamab5694Anticorpo primário (1:200)
Bloqueador de caseína em PBSThermo Fisher Scientific37528Tampão de coloração
Butorfanol TartaratoMeiji005526Anestésico
C57BL/6NJclNippon Bio-Supp.CenterN/ACepa de camundongo
ImarisBitplaneN/ASoftware de análise de imagem
Microscópio de macro-zoomOLYMPUSMVX10A unidade de observação do microscópio feito sob medida
Cloridrato de medetomidinaKyoritsu-Seiyaku008656anestésico
MidazolamSANDOZ27803229Anestésico
Óleo mineralSigma-AldrichM8410Óleo de imersão
N-butiledietanolaminaTokyo Indústria QuímicaB0725CUBIC-L, CUBIC-R +
NicotinamidaTokyo Indústria químicaN0078CUBIC-R +
Polietilenoglicol mono-p-isooctilfenil éter / Triton X-100Nacalai Tesque12967-45CUBIC-L, PBST
Óleo de silício HIVAC-F4Shin-Etsu Óleo químico50449832imersão
Azida de sódioWako195-11092Tampão de coloração
de fundo redondo Tokyo

Referências

  1. Velez-Fort, M., et al. The stimulus selectivity and connectivity of layer six principal cells reveals cortical microcircuits underlying visual processing. Neuron. 83 (6), 1431-1443 (2014).
  2. Susaki, E. A., et al.

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Reimpressões e permissões

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