Summary

En semi-automatisert og reproduserbar biologisk-basert metode for å kvantifisere kalsiumavsetning in vitro

Published: June 02, 2022
doi:

Summary

Hjerte- og karsykdommer er den ledende dødsårsaken over hele verden. Vaskulær forkalkning bidrar vesentlig til byrden av kardiovaskulær sykelighet og dødelighet. Denne protokollen beskriver en enkel metode for å kvantifisere vaskulær glatt muskelcellemediert kalsiumutfelling in vitro ved fluorescerende avbildning.

Abstract

Vaskulær forkalkning innebærer en rekke degenerative patologier, inkludert betennelse, endringer i cellulær fenotype, celledød og fravær av forkalkningshemmere, som samtidig fører til tap av fartøyets elastisitet og funksjon. Vaskulær forkalkning er en viktig bidragsyter til sykelighet og dødelighet i mange patologier, inkludert kronisk nyresykdom, diabetes mellitus og aterosklerose. Nåværende forskningsmodeller for å studere vaskulær forkalkning er begrenset og er bare levedyktige i de sene stadiene av forkalkningsutvikling in vivo. In vitro-verktøy for å studere vaskulær forkalkning bruker endepunktsmålinger, øker kravene til biologisk materiale og risikerer innføring av variabilitet i forskningsstudier. Vi demonstrerer anvendelsen av en ny fluorescerende merket sonde som binder seg til in vitro forkalkningsutvikling på humane vaskulære glatte muskelceller og bestemmer sanntidsutviklingen av in vitro forkalkning. I denne protokollen beskriver vi anvendelsen av vår nyutviklede forkalkningsanalyse, et nytt verktøy i sykdomsmodellering som har potensielle translasjonsapplikasjoner. Vi ser for oss at denne analysen er relevant i et bredere spekter av mineralavsetningsforskning, inkludert applikasjoner innen bein-, brusk- eller tannforskning.

Introduction

Vaskulær forkalkning (VC) er en uavhengig risikofaktor for kardiovaskulær sykelighet og dødelighet 1,2,3. Lenge betraktet som en passiv kjemisk prosess med ektopisk mineralavsetning, ser det nå ut til å være en modifiserbar vevshelingsrespons som involverer det aktive bidraget fra forskjellige celler, inkludert aktiverte vaskulære glatte muskelceller (hVSMC) som en driver av sykdommen 4,5. In vivo VC kan måles ved multislice CT-skanning som en vurdering av aterosklerotisk belastning 6,7,8. For tiden pågår et paradigmeskifte, hvor VC-alvorlighetsgrad blir anerkjent som en risikofaktor for kardiovaskulær sykdom, type II diabetes, kronisk nyresykdom og aldring 9,10,11,12,13,14,15.

hVSMCs er den mest tallrike celletypen i kardiovaskulærsystemet og en hovedaktør i utviklingen av VC. In vitro hVSMC-indusert forkalkning er en mye brukt sykdomsmodell for å studere kardiovaskulær sykdom16,17. Imidlertid bruker de fleste protokoller for påvisning av in vitro-forkalkning endepunktsmålinger som kan begrense datainnsamling, krever større bruk av cellulært materiale og kan bremse forskningen. Vanlige metoder for påvisning av in vitro hVSMC forkalkning inkluderer o-cresolphthalein analysen, som måler oppløselig kalsiumavsetning mot totalt protein og krever cellelyse18. Også Alizarin Red-farging brukes, som binder seg direkte til kalkavleiringer på faste celler eller vev19. For å studere hVSMC forkalkning over tid med enten o-cresolphthalein eller Alizarin Red krever batcher av replikasjoner per tidspunkt, øker etterspørselen på biologisk materiale, og i sin tur øker sjansen for variabilitet.

I dette papiret beskriver vi metoden for anvendelse av en ny analyse som bruker hVSMCs med en fluorescerende bildebehandlingssonde for å bestemme in vitro VC-progresjon, samt fungere som en enestående forkalkningsanalyse i sluttstadiet. Vi har tidligere vist at denne analysen er direkte sammenlignbar med o-cresolphthalein og Alizarin Red-metodene og kan brukes til å skille mellom varierende kulturforhold20. I tillegg til sanntidsmålinger kan denne analysen brukes til å bestemme tilbøyeligheten til serum- eller plasmaprøver som en surrogatmarkør for klinisk VC-utvikling20. Dette vil hjelpe til med anvendelsen av biologiske strategier for kardiovaskulær vitenskap og sykdomsmodellering. En ytterligere anvendelse av analysen kan være som et translasjonelt biohybridsystem for å vurdere VC-alvorlighetsgrad eller progresjon fra blodbestanddeler som serum eller plasma.

Protocol

1. Cellesåing, vedlikehold og forkalkningsinduksjon For dyrking av primære celler, bruk et laminært luftstrømskap, hansker og sterilt utstyr. Desinfiser hender og arbeidsområde før og etter å ha utført noe arbeid. Behandle alle primære celler og kulturmedier som en potensiell biohazard, med mindre det motsatte er bevist. Fortrinnsvis autoklavoverskuddsceller og medier før deponering. Ikke inaktiver og autoklav kjemisk, da dette vil frigjøre giftige røyk. Kultur hVSMC på u…

Representative Results

Resultatet inkluderer originale bilder av HOECHST-fargede kjerner, RFP-merket forkalkning og brightfield-bilder. Ulike stadier av forkalkning fra lav (figur 2) til høy (figur 3) kan oppdages og analyseres. Forkalkning kan vanligvis oppdages som svarte flekker ved hjelp av lysmikroskopi (figur 2D og figur 3B, pilene indikerer forkalkning), som er nyttige for primær vurdering og for å bestemme når man…

Discussion

I dette manuskriptet beskriver vi en halvautomatisert metode for bestemmelse av forkalkning in vitro . For denne metoden bør tre kritiske trinn for hVSMC-forkalkning optimaliseres. For det første er cellulær tetthet kritisk for hVSMC forkalkningsutvikling. Lav tetthet av hVSMCs vil resultere i langsom eller ingen forkalkning og celledød på grunn av mangel på celle-til-celle-kontakt og stresset som induseres under kalsifiseringsforhold21. Høye cellulære tettheter resulterer i overf…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble finansiert av EUs Horizon 2020 forsknings- og innovasjonsprogrammer under Marie Sklodowska-Curie stipendavtale No 722609 og 764474, NWO ZonMw (MKMD 40-42600-98-13007). Denne forskningen ble støttet av BioSPX. WJ-D mottok finansiering fra Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, tysk forskningsstiftelse) TRR219-prosjekt ID 322900939 og prosjekt-ID 403041552

Materials

Calcium chloride, 93%, anhydrous Thermo Fisher Scientific 349615000
Costar 6-well Clear TC-treated well plates Corning 3516
Cytation 3 System BioTek, Abcoude, The Netherlands
Fetal Bovine Serum Merck F7524-100ML
Fetuin-A-Alexa Fluor-546 Prepared in-house
Gen5 Software v3.10 BioTek
Gibco Medium 199 Thermo Fisher Scientific 11150059
Hoechst 33342, Trihydrochloride Thermo Fisher Scientific H3570
PBS (10X), pH 7.4 Thermo Fisher Scientific 70011044
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Thermo Fisher Scientific 25300062

Referências

  1. Taylor, A. J., Bindeman, J., Feuerstein, I., Cao, F., Brazaitis, M., O’Malley, P. G. Coronary calcium independently predicts incident premature coronary heart disease over measured cardiovascular risk factors: mean three-year outcomes in the Prospective Army Coronary Calcium (PACC) project. Journal of the American College of Cardiology. 46 (5), 807-814 (2005).
  2. Arad, Y., Goodman, K. J., Roth, M., Newstein, D., Guerci, A. D. Coronary calcification, coronary disease risk factors, C-reactive protein, and atherosclerotic cardiovascular disease events the St. Francis Heart Study. Journal of the American College of Cardiology. 46 (1), 158-165 (2005).
  3. Detrano, R., et al. Coronary calcium as a predictor of coronary events in four racial or ethnic groups. New England Journal of Medicine. 358 (13), 1336-1345 (2008).
  4. Schurgers, L. J., Akbulut, A. C., Kaczor, D. M., Halder, M., Koenen, R. R., Kramann, R. Initiation and propagation of vascular calcification is regulated by a concert of platelet- and smooth muscle cell-derived extracellular vesicles. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 5, 36 (2018).
  5. Jaminon, A., Reesink, K., Kroon, A., Schurgers, L. The role of vascular smooth muscle cells in arterial remodeling: focus on calcification-related processes. International Journal of Molecular Sciences. 20 (22), 5694 (2019).
  6. Mollet, N., et al. Coronary plaque burden in patients with stable and unstable coronary artery disease using multislice CT coronary angiography. La Radiologia Medica. 116 (8), 1174-1187 (2011).
  7. Galal, H., Rashid, T., Alghonaimy, W., Kamal, D. Detection of positively remodeled coronary artery lesions by multislice CT and its impact on cardiovascular future events. The Egyptian Heart Journal. 71 (1), 26 (2019).
  8. Benedek, T., Gyöngyösi, M., Benedek, I. Multislice computed tomographic coronary angiography for quantitative assessment of culprit lesions in acute coronary syndromes. The Canadian Journal of Cardiology. 29 (3), 364-371 (2013).
  9. Raggi, P. Cardiovascular calcification in end stage renal disease. Cardiovascular Disorders in Hemodialysis. 149, 272-278 (2005).
  10. Raggi, P. Coronary artery calcification predicts risk of CVD in patients with CKD. Nature Reviews Nephrology. 13 (6), 324-326 (2017).
  11. Durham, A. L., Speer, M. Y., Scatena, M., Giachelli, C. M., Shanahan, C. M. Role of smooth muscle cells in vascular calcification: implications in atherosclerosis and arterial stiffness. Cardiovascular Research. 114 (4), 590-600 (2018).
  12. Yahagi, K., et al. Pathology of human coronary and carotid artery atherosclerosis and vascular calcification in diabetes mellitus. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 37 (2), 191-204 (2017).
  13. Harper, E., Forde, H., Davenport, C., Rochfort, K. D., Smith, D., Cummins, P. M. Vascular calcification in type-2 diabetes and cardiovascular disease: Integrative roles for OPG, RANKL and TRAIL. Vascular Pharmacology. 82, 30-40 (2016).
  14. Lacolley, P., Regnault, V., Segers, P., Laurent, S. Vascular smooth muscle cells and arterial stiffening: relevance in development, aging, and disease. Physiological Reviews. 97 (4), 1555-1617 (2017).
  15. Pescatore, L. A., Gamarra, L. F., Liberman, M. Multifaceted mechanisms of vascular calcification in aging. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 39 (7), 1307-1316 (2019).
  16. Herrmann, J., Babic, M., Tölle, M., vander Giet, M., Schuchardt, M. Research models for studying vascular calcification. International Journal of Molecular Sciences. 21 (6), 2204 (2020).
  17. Bowler, M. A., Merryman, W. D. In vitro models of aortic valve calcification: solidifying a system. Cardiovascular Pathology: The Official Journal of the Society for Cardiovascular Pathology. 24 (1), 1-10 (2015).
  18. Gitelman, H. J. An improved automated procedure for the determination of calcium in biological specimens. Analytical Biochemistry. 18 (3), 521-531 (1967).
  19. Furmanik, M., et al. Endoplasmic reticulum stress mediates vascular smooth muscle cell calcification via increased release of Grp78 (glucose-regulated protein, 78 kDa)-loaded extracellular vesicles. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 41 (2), 898-914 (2021).
  20. Jaminon, A. M. G., et al. Development of the BioHybrid assay: combining primary human vascular smooth muscle cells and blood to measure vascular calcification propensity. Cells. 10 (8), 2097 (2021).
  21. Reynolds, J. L., et al. Human vascular smooth muscle cells undergo vesicle-mediated calcification in response to changes in extracellular calcium and phosphate concentrations: a potential mechanism for accelerated vascular calcification in ESRD. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 15 (11), 2857-2867 (2004).
  22. Wang, X. -. R., Zhang, J. -. J., Xu, X. -. X., Wu, Y. -. G. Prevalence of coronary artery calcification and its association with mortality, cardiovascular events in patients with chronic kidney disease: a systematic review and meta-analysis. Renal Failure. 41 (1), 244-256 (2019).
  23. Willems, B. A., et al. Ucma/GRP inhibits phosphate-induced vascular smooth muscle cell calcification via SMAD-dependent BMP signalling. Scientific Reports. 8 (1), 4961 (2018).
  24. Furmanik, M., et al. Reactive oxygen-forming Nox5 links vascular smooth muscle cell phenotypic switching and extracellular vesicle-mediated vascular calcification. Circulation Research. 127 (7), 911-927 (2020).
  25. Virtanen, P., Isotupa, K. Staining properties of alizarin red S for growing bone in vitro. Acta Anatomica. 108 (2), 202-207 (1980).
  26. Yang, H., Curinga, G., Giachelli, C. M. Elevated extracellular calcium levels induce smooth muscle cell matrix mineralization in vitro. Kidney International. 66 (6), 2293-2299 (2004).
  27. Pasch, A., et al. Nanoparticle-based test measures overall propensity for calcification in serum. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 23 (10), 1744-1752 (2012).
check_url/pt/64029?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Jaminon, A. M. G., Rapp, N., Akbulut, A. C., Dzhanaev, R., Reutelingsperger, C. P., Jahnen-Dechent, W., Schurgers, L. J. A Semi-Automated and Reproducible Biological-Based Method to Quantify Calcium Deposition In Vitro. J. Vis. Exp. (184), e64029, doi:10.3791/64029 (2022).

View Video