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Artigo de método

Imagem ao vivo da dinâmica dos microtúbulos em células de glioblastoma invadindo o cérebro do peixe-zebra

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DOI:

10.3791/64093

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29 de julho de 2022

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Neste artigo

Resumo

Relatamos uma técnica que permite imagens ao vivo da dinâmica dos microtúbulos em células de glioblastoma (GBM) invadindo um tecido cerebral de vertebrados. O acoplamento da injeção ortotópica de células GBM marcadas fluorescentemente em um cérebro transparente de peixe-zebra com imagens intravitais de alta resolução permite a medição da dinâmica do citoesqueleto durante a invasão do câncer in situ .

Resumo

Com um tempo de sobrevida mediano sombrio em populações reais - entre 6 a 15 meses - o glioblastoma (GBM) é o tumor cerebral maligno mais devastador. A falha do tratamento deve-se principalmente à invasividade das células GBM, o que fala da necessidade de uma melhor compreensão das propriedades móveis do GBM. Para investigar o mecanismo molecular que suporta a invasão de GBM, são necessários novos modelos fisiológicos que permitam uma caracterização aprofundada da dinâmica das proteínas durante a invasão. Essas observações abririam o caminho para a descoberta de novos alvos para bloquear a infiltração tumoral e melhorar os resultados dos pacientes. Este artigo relata como um xenoenxerto ortotópico de células GBM no cérebro do peixe-zebra permite imagens intravitais subcelulares vivas. Com foco em microtúbulos (MTs), descrevemos um procedimento para marcação de MT em células GBM, microinjeção de células GBM no cérebro transparente de larvas de peixe-zebra 3 dias após a fertilização (dpf), imagem intravital de MTs nos xenoenxertos disseminadores, alteração da dinâmica de MT para avaliar seu papel durante a invasão de GBM e análise dos dados adquiridos.

Introdução

A motilidade celular é um processo estereotipado que requer o estabelecimento do eixo polaridade e rearranjos citoesqueléticos geradores de força. A polimerização da actina e sua associação com a miosina são reconhecidas como os principais contribuintes para as forças protrusivas e contráteis necessárias para o movimento celular1. Os microtúbulos são considerados os principais atores na polarização celular e na persistência direcional durante a migração2. Nos últimos anos, os MTs também demonstraram criar e estabilizar saliências para suportar forças mecanocompressivas durante a invasão celular em 3D3

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Protocolo

As experiências com animais foram conduzidas de acordo com as orientações da União Europeia para o manuseamento de animais de laboratório. Todos os protocolos foram aprovados pelo Comitê de Ética em Experimentação Animal do Institut Pasteur - CEEA 89 e pelo Ministério da Pesquisa e Educação da França (alvará nº 01265.03). Durante as injeções ou sessões de imagem ao vivo, os animais foram anestesiados com Tricaine.At final dos procedimentos experimentais, foram eutanasiados por overdose anestésica. Consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes relacionados aos materiais, equipamentos e softwares usados neste protocolo. O fluxo de trabalho geral do....

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Resultados

Para analisar o papel desempenhado pelos MTs durante a invasão in vivo do GBM, descrevemos aqui os principais passos para realizar a marcação estável do MT em células GBM por infecção lentiviral, xenotransplante ortotópico de células GBM em larvas de peixe-zebra 3 dpf, imagens intravitais de alta resolução da dinâmica MT, tratamento MTA e seus efeitos na invasão GBM e análise de imagens da dinâmica MT e invasão in vivo (Figura 1). A dinâmica da MT é medid.......

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Discussão

A imagem de xenoenxertos tumorais em resolução unicelular provavelmente se tornará uma ferramenta indispensável para melhorar nossa compreensão da biologia do GBM. Imagens ao vivo em modelos PDX de camundongos levaram a descobertas valiosas sobre como o GBM invade coletivamente o tecido cerebral18. No entanto, até o momento, a resolução espaço-temporal não é alta o suficiente para revelar a dinâmica das proteínas que controlam a invasão de GBM. Raciocinamos que, ao acoplar o enxerto ortotópico de .......

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Divulgações

Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.

Agradecimentos

Estamos extremamente gratos ao Dr. P. Herbomel (Institut Pasteur, França) e seu laboratório, especialmente Valérie Briolat e Emma Colucci-Guyon por nos fornecerem as linhas de peixe-zebra e o molde plástico para placas de microinjeção, e por sua valiosa experiência em procedimentos experimentais de peixe-zebra. Agradecemos a UtechS Photonic BioImaging (C2RT, Institut Pasteur, apoiada pela Agência Nacional de Pesquisa da França BioImaging, e ANR-10-INBS-04; Investimentos para o Futuro). Este trabalho foi apoiado pela Ligue contre le cancer (EL2017. LNCC), o Centre National de la Recherche Scientifique, e o Institut Pasteur e pelas generosas doações da Sra. Marguerite M....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Cultura de células de glioblastoma
Soro fetal de bezerroEurobioCVFSVF00-01Reagente
MEM NEAAGibco11140-050Reagente
Modificado Eagle's mediumEurobioCM1MEM18-01Reagente
Penicilina– estreptomicinaGibco15140-122reagente
U-87 MGECACC89081402-1VLCélulas
produção de lenitivírus
FACSAria IIIBD bioscienceinstrumento
BD FACSDiva software v8.0BD bioscienceSoftware
HEK-293TMerck12022001Células
pMD2.GAddgenePlasmid #12259Reagente
psPAX2AddgenePlasmid #12260Reagente
Ultracentrifuge Optima XPN-80Beckman CoulterInstrument
Cell passaging and staining
dPBSGibco14190-094Chemical
Hoechst 34580Sigma-Aldrich63493
Tripsina-EDTA Química (0,05%)Gibco25300-054Reagente
Criação de peixe-zebra
Estereomicroscópio de fluorescência LEICA M165FCLEICAhttps://www.leica-microsystems.com/fr/produits/stereomicroscopes-et-macroscopes/informations-detaillees/leica-m165-fc/Instrumento
Hidrato de azul de metilenoSigma-AldrichM4159
N-feniltioureia química (PTU)Sigma-AldrichP7629-25GPipetas de transferência química
pontas finasSamco Scientific232Transferência de equipamentos
Pipetas Bulbo Grande3mLSamco Scientific225Equipamento
Tricaína (Etil 3-aminobenzoato metanossulfonato)Sigma-AldrichCat#: A5040Água
Fonte Química VolvicaDUTSCHER DOMINIQUE SASReagente
Xenotransplante
24 poçosTPP92024Equipamento
Capilares de vidro borossilicato (1.0 ODx0.58IDx150L mm)Aparelho Harvard(#30-0017 GC100-15
Equipamento Microinjetor de óleo vario CellTramEppendorf5176000.025Instrumento
Microloading pipet tips (Microloader) 20µ LEppendorf  Equipamento 5242956003
MicromanipuladorNARISHIGEhttps://products.narishige-group.com/group1/injection/english.htmlEquipamento
Óleo MineralSigmaM8410-100ml
Equipamento EstereomicroscópioOlympusKL 2500 LCD
Instrumento Suporte capilar universalEppendorf5176190002Equipamento
Extrator de pipetas verticalKOPF (Roucaire)Modelo 720Instrumento
Imagem Intravital
prato de imagem de vídeo com fundo de vidro de 3,5 cmMatTek Life Sciences, MA, EUAP35G-1,5-14-C
Software de aquisição de equipamento: NIS-Elements-AR versão 5.21NikonSoftware
Heat-BlockTechneDRI-BLOCK DB-2DEquipamento
Cabeça de microscópio Nikon Ti2ENikonInstrumento
câmera sCMOS Prime 95BInstrumentoFotométrico
câmera sCMOS Orca Flash 4Instrumento Hammatsu
Ultrapuro Baixo ponto de fusão agaroseInvitrogen16520-050Químico
Yokagawa CSU-W1 disco giratório unidadeHammatsuInstrument
Drug Treatment
DMSOSigma-AldrichD2650-100MLChemical
NocodazoleSigma-AldrichM1404-2MGChemical
Image Analysis
Imaris 9.5.1 softwareOxford Software de instrumentos
ImarisFileConverter 9.5.1Software de Oxford Instruments
BD de 999556 placa de

Referências

  1. Pollard, T. D., Borisy, G. G. Cellular motility driven by assembly and disassembly of actin filaments. Cell. 112 (4), 453-465 (2003).
  2. Etienne-Manneville, S. Microtubules in cell migration. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 29, 471-499 (2013).

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Reimpressões e permissões

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