Ved hjælp af ovo elektroporation udtænkte vi en metode til selektivt at transficere det auditive indre øre og cochlearkernen i kyllingembryoner for at opnå en cellegruppespecifik knockdown af skrøbeligt X mentalt retarderingsprotein i diskrete perioder med kredsløbssamling.
Fragile X mental retardation protein (FMRP) er et mRNA-bindende protein, der regulerer lokal proteintranslation. FMRP-tab eller dysfunktion fører til afvigende neuronale og synaptiske aktiviteter i skrøbeligt X syndrom (FXS), som er karakteriseret ved intellektuel handicap, sensoriske abnormiteter og sociale kommunikationsproblemer. Undersøgelser af FMRP-funktion og FXS-patogenese er primært blevet udført med Fmr1 (genet, der koder for FMRP) knockout hos transgene dyr. Her rapporterer vi en in vivo-metode til bestemmelse af FMRP’s celleautonome funktion i perioden med kredsløbssamling og synaptisk dannelse ved hjælp af kyllingembryoner. Denne metode anvender fase-, sted- og retningsspecifik elektroporation af et lægemiddelinducerbart vektorsystem indeholdende Fmr1 lille hårnål RNA (shRNA) og en EGFP-reporter. Med denne metode opnåede vi selektiv FMRP-knockdown i den auditive ganglion (AG) og i et af dens hjernestammemål, kernen magnocellularis (NM), hvilket gav en komponentspecifik manipulation inden for AG-NM-kredsløbet. Derudover tillader transfektens mosaikmønster kontrol inden for dyr og nærliggende neuron / fibersammenligninger for forbedret pålidelighed og følsomhed i dataanalyse. Det inducerbare vektorsystem giver tidsmæssig kontrol af genredigeringsstart for at minimere akkumulerende udviklingseffekter. Kombinationen af disse strategier giver et innovativt værktøj til at dissekere FMRP’s celleautonome funktion i synaptisk og kredsløbsudvikling.
Fragilt X syndrom (FXS) er en neurodevelopmental lidelse præget af intellektuel handicap, sensoriske abnormiteter og autistisk adfærd. I de fleste tilfælde er FXS forårsaget af et globalt tab af skrøbeligt X mentalt retarderingsprotein (FMRP; kodet af Fmr1-genet), der starter ved tidlige embryonale stadier1. FMRP er et RNA-bindende protein, der normalt udtrykkes i de fleste neuroner og gliaceller i hjernen såvel som i sensoriske organer 2,3,4. I pattedyrhjerner er FMRP sandsynligvis forbundet med hundredvis af mRNA’er, der koder for proteiner, der er vigtige for forskellige neurale aktiviteter5. Undersøgelser af konventionelle Fmr1 knockout-dyr viste, at FMRP-ekspression er særlig vigtig for samlingen og plasticiteten af synaptisk neurotransmission6. Flere betingede og mosaik knockout-modeller har yderligere vist, at FMRP-handlinger og signaler varierer på tværs af hjerneområder, celletyper og synaptiske steder under flere udviklingshændelser, herunder axonal projektion, dendritisk mønster og synaptisk plasticitet 7,8,9,10,11,12,13,14 . Akut funktion af FMRP til regulering af synaptisk transmission blev undersøgt ved intracellulær levering af hæmmende FMRP-antistoffer eller FMRP selv i hjerneskiver eller dyrkede neuroner15,16,17,18. Disse metoder giver imidlertid ikke mulighed for at spore FMRP-fejludtryksinducerede konsekvenser under udviklingen. Der er således et stort behov for at udvikle in vivo-metoder til at undersøge FMRP’s celleautonome funktioner og forventes at hjælpe med at afgøre, om de rapporterede anomalier hos FXS-patienter er direkte konsekvenser af FMRP-tab i de tilknyttede neuroner og kredsløb eller sekundære konsekvenser afledt af netværksdækkende ændringer under udvikling19.
Den auditive hjernestamme af kyllingembryoner tilbyder en unik fordelagtig model til dybdegående funktionelle analyser af FMRP-regulering i kredsløbs- og synapseudvikling. Den lette adgang til embryonale kyllingehjerner og den veletablerede teknik til genmanipulation har i høj grad bidraget til vores forståelse af hjernens udvikling i de tidlige fosterstadier. I en nyligt offentliggjort undersøgelse blev denne teknik kombineret med avancerede molekylære værktøjer, der tillader tidsmæssig kontrol af FMRP-fejludtryk20,21. Her er metoden avanceret til at inducere selektive manipulationer af presynaptiske og postsynaptiske neuroner separat. Denne metode blev udviklet i det auditive hjernestammekredsløb. Akustisk signal detekteres af hårceller i det auditive indre øre og overføres derefter til den auditive ganglion (AG; også kaldet spiralganglion hos pattedyr). Bipolære neuroner i AG innerverer hårceller med deres perifere processer og sender igen en central projektion (hørenerven) til hjernestammen, hvor de ender i to primære cochlearkerner, kernen magnocellularis (NM) og kernen angularis (NA). Neuroner i NM er strukturelt og funktionelt sammenlignelige med de sfæriske buskede celler i pattedyrets anteroventrale cochlear kerne. Inden for NM synapser auditive nervefibre (ANF’er) på somata af NM-neuroner via den store endepære af Held-terminaler22. Under udviklingen opstår NM-neuroner fra rhombomerer 5 og 6 (r5/6) i baghjernen23, mens AG-neuroner er afledt af neuroblaster, der er bosiddende i otocyst24. Her beskriver vi proceduren for selektivt at slå FMRP-ekspression i de presynaptiske AG-neuroner og i de postsynaptiske NM-neuroner separat.
For at bestemme FMRP’s celleautonome funktion er det nødvendigt at manipulere dets udtryk i individuelle cellegrupper eller celletyper. Da en af FMRP’s hovedfunktioner er at regulere synaptisk dannelse og plasticitet, er selektiv manipulation af hver synaptisk komponent i et bestemt kredsløb forudsætning for en fuld forståelse af FMRP-mekanismen i synaptisk kommunikation. Ved hjælp af ovo elektroporation af kyllingembryoner demonstrerede vi en metode til at målrette FMRP-ek…
The authors have nothing to disclose.
Denne undersøgelse blev støttet af: et tilskud fra National Natural Science Foundation of China (nr. 32000697); Videnskabs- og teknologiprogrammet i Guangzhou (202102080139); Guangdong Natural Science Foundation (2019A1515110625, 2021A1515010619); de centrale universiteters grundforskningsfonde (11620324) et forskningsstipendium fra Key Laboratory of Regenerative Medicine, Undervisningsministeriet, Jinan University (nr. ZSYXM202107); grundforskningsfondene for de centrale universiteter i Kina (21621054) og Medical Scientific Research Foundation i Guangdong-provinsen i Kina (20191118142729581). Vi takker det medicinske eksperimentelle center på Jinan University. Vi takker Dr. Terra Bradley for omhyggelig redigering af manuskriptet.
Egg incubation | |||
16 °C refrigerator | MAGAT | Used for fertilized egg storage. | |
Egg incubator | SHANGHAI BOXUN | GZX-9240MBE | |
Fertilized eggs | Farm of South China Agricultural University | Eggs must be used in one week for optimal viability. | |
Plasmid preparation | |||
Centrifuge | Sigma | 10016 | |
Fast green | Solarbio | G1661 | Make 0.1% working solution in distilled water and autoclave. |
Plasmid Maxi-prep kit | QIAGEN | 12162 | Dissolve plasmid DNA in Tris-EDTA (TE) buffer; endotoxin-free preparation kit |
Sodium Acetate | Sigma-Aldrich | S2889 | Make 7.5M working solution in nuclase-free water. |
Electroporation and Doxycycline Administration | |||
Electroporator | BTX | ECM399 | |
1 mL / 5 mL Syringe | GUANGZHOU KANGFULAI | ||
Dissecting microscope | CNOPTEC | SZM-42 | |
Doxcycline | Sigma-Aldrich | D9891 | Use fresh aliquots for each dose and store at -20 °C. |
Glass capillary | BEIBOBOMEI | RD0910 | 0.9-1.1 mm*100 mm |
Laboratory parafilm | PARAFILM | PM996 | transparent film |
Pipette puller | CHENGDU INSTRUMENT FACTORY | WD-2 | Pulling condition: 500 °C for 15 s |
Platinum elctrodes | Home made | 0.5 mm diameter, 1.5 mm interval. | |
Platinum elctrodes | Home made | 0.5 mm diameter, 1.5 mm interval. | |
Rubber tube | Sigma-Aldrich | A5177 | |
Tissue Dissection and Fixation | |||
Forceps | RWD | F11020-11 | Tip size: 0.05*0.01 mm |
Other surgery tools | RWD | ||
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 158127 | Freshly made 4% PFA solution in phosphate-buffered saline can be stored in 4 °C for up to 1 week. |
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit | DOW | 01673921 | For black background plates, food-grade carbon powder is applied. |
Sectioning | |||
Cryostat | LEICA | CM1850 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G9391 | From bovine skin. |
Sliding microtome | LEICA | SM2010 | |
Immunostaining | |||
Alexa Fluor 488 goat anti-Mouse | Abcam | ab150113 | 1:500 dilution, RRID: AB_2576208 |
Alexa Fluor 555 goat anti-rabbit | Abcam | ab150078 | 1:500 dilution, RRID: AB_2722519 |
DAPI | Abcam | ab285390 | 1: 1000 dilution |
Fluoromount-G mounting medium | Southern Biotech | Sb-0100-01 | |
FMRP antibody | Y. Wang, Florida State University | #8263 | 1:1000 dilution, RRID: AB_2861242 |
Islet-1 antibody | DSHB | 39.3F7 | 1:100 dilution, RRID: AB_1157901 |
Netwell plate | Corning | 3478 | |
Neurofilament antibody | Sigma-Aldrich | N4142 | 1:1000 dilution, RRID: AB_477272 |
Parvalbumin antibody | Sigma-Aldrich | P3088 | 1:10000 dilution, RRID: AB_477329 |
SNAP25 antibody | Abcam | ab66066 | 1:1000 dilution, RRID: AB_2192052 |
Imaging | |||
Adobe photoshop | ADOBE | image editing software | |
Confocal microscope | LEICA | SP8 | |
Fluorescent stereomicroscope | OLYMPUS | MVX10 | |
Olympus Image-Pro Plus 7.0 | OlYMPUS | commercial image processing software package |