Summary

Måling af skeletmuskeltermogenese hos mus og rotter

Published: July 27, 2022
doi:

Summary

Mus og rotter implanteres kirurgisk med fjerntemperaturtranspondere og tilvænnes derefter til testmiljøet og proceduren. Ændringer i muskeltemperatur måles som reaktion på farmakologiske eller kontekstuelle stimuli i hjemmeburet eller under foreskrevet fysisk aktivitet (dvs. løbebånd, der går med konstant hastighed).

Abstract

Skeletmuskulatur termogenese giver en potentiel vej til bedre forståelse af metabolisk homeostase og de mekanismer, der ligger til grund for energiforbrug. Overraskende få beviser er tilgængelige for at forbinde de neurale, myocellulære og molekylære mekanismer af termogenese direkte til målbare ændringer i muskeltemperaturen. Dette papir beskriver en metode, hvor temperaturtranspondere bruges til at hente direkte målinger af mus og rotte skeletmuskeltemperatur.

Fjerntranspondere implanteres kirurgisk i musklerne hos mus og rotter, og dyrene får tid til at komme sig. Mus og rotter skal derefter gentagne gange vænne sig til testmiljøet og proceduren. Ændringer i muskeltemperaturen måles som reaktion på farmakologiske eller kontekstuelle stimuli i hjemmeburet. Muskeltemperatur kan også måles under foreskrevet fysisk aktivitet (dvs. løbebåndsgang med konstant hastighed) for at indregne ændringer i aktivitet som bidragydere til ændringer i muskeltemperatur induceret af disse stimuli.

Denne metode er med succes blevet brugt til at belyse mekanismer, der ligger til grund for muskeltermogenisk kontrol på niveau med hjernen, det sympatiske nervesystem og skeletmuskulaturen. Forudsat er demonstrationer af denne succes ved hjælp af rovdyrlugt (PO; ilderlugt) som en kontekstuel stimulus og injektioner af oxytocin (Oxt) som en farmakologisk stimulus, hvor rovdyrlugt inducerer muskeltermogenese, og Oxt undertrykker muskeltemperatur. Således viser disse datasæt effektiviteten af denne metode til at detektere hurtige ændringer i muskeltemperaturen.

Introduction

Inden for metabolisk forskning er undersøgelsen af skeletmuskulatur termogenese en lovende ny vej til sondering af kropsvægt homeostase. Den offentliggjorte litteratur understøtter ideen om, at de termogene reaktioner fra et af kroppens største organsystemer – skeletmuskulaturen – giver mulighed for at øge energiforbruget og andre metaboliske virkninger og derved effektivt afbalancere systemer inden for sygdomme som fedme 1,2,3. Hvis musklen kan betragtes som et termogent organ, skal undersøgelser anvende en praktisk metode til at studere termogene ændringer i dette organ. Ønsket om at forstå skeletmuskulaturens endotermiske virkning og nytten af denne metode til undersøgelse af ikke-rystende muskeltermogenese er ikke specifik for metaboliske undersøgelser. Discipliner, herunder evolution4, komparativ fysiologi5 og økofysiologi6,7, har vist en interesse i at forstå de måder, hvorpå muskeltermogenese kan bidrage til endotermi, og hvordan denne mekanisme tilpasser sig miljøet. Den fremlagte protokol indeholder de kritiske metoder, der er nødvendige for at løse disse spørgsmål.

Den leverede metode kan bruges til vurdering af både kontekstuel og farmakologisk stimulimodulation af muskeltemperatur, herunder den unikke teknik til at give rovdyrlugt (PO) for at skifte kontekst for at replikere rovdyrtrussel. Tidligere rapporter har vist PO’s evne til hurtigt at fremkalde en betydelig stigning i muskeltermogenese8. Desuden kan farmakologiske stimuli også ændre muskeltemperaturen. Dette er blevet demonstreret i forbindelse med PO-induceret muskeltermogenese, hvor farmakologisk blokade af perifere β-adrenerge receptorer ved hjælp af nadolol hæmmede PO’s evne til at inducere muskeltermogenese uden signifikant at påvirke kontraktil termogenese under løbebåndsgang8. Central administration af melanocortinreceptoragonister hos rotter er også blevet brugt til at skelne hjernemekanismer, der ændrer termogenese 9,10.

Her gives en foreløbig undersøgelse af neurohormonet oxytocins (Oxt) evne til at ændre muskeltermogenese hos mus. I lighed med rovdyrtrussel øger sociale møder med en artsfælle af samme køn kropstemperaturen, et fænomen kaldet social hypertermi11. I betragtning af Oxts relevans for social adfærd12 er det blevet spekuleret i, at Oxt er en formidler af social hypertermi hos mus. Faktisk nedsætter en oxytocinreceptorantagonist social hypertermi hos mus11, og musehvalpe, der mangler Oxt, viser underskud i adfærdsmæssige og fysiologiske aspekter af termoregulering, herunder termogenese13. I betragtning af at Harshaw et al. (2021) ikke fandt beviser, der understøtter β3 adrenerg receptorafhængig brunt fedtvæv (BAT) termogenese med social hypertermi11, er det blevet hævdet, at social hypertermi kan være drevet af Oxts induktion af muskeltermogenese.

For at måle skeletmuskeltermogenese bruger følgende protokol implantation af forprogrammerede IPTT-300-transpondere ved siden af muskelen af interesse i en mus eller rotte 8,10,14,15. Disse transpondere er glasindkapslede mikrochips, der læses ved hjælp af tilsvarende transponderlæsere. Lidt eller ingen forskning har udnyttet denne teknologi i denne egenskab, selvom undersøgelser har antydet et behov for specificiteten ved denne metode16,17. Tidligere undersøgelser har vist pålideligheden af denne metode og en række forskellige måder, hvorpå temperaturtranspondere kan anvendes i sammenligning med andre temperaturtestmetoder18 eller i forbindelse med kirurgiske metoder (f.eks. Kannulation19). Undersøgelser af denne art er imidlertid afhængige af forskellige strategiske placeringer for at måle den samlede kropstemperatur 20,21,22 eller specificeret væv såsom BAT23,24,25.

I stedet for at måle temperatur fra disse steder eller ved hjælp af øre- eller rektaltermometre26, giver metoden beskrevet her specificitet for muskelen af interesse. Evnen til at målrette et sted ved direkte at implantere transpondere ved siden af musklerne af interesse er mere effektiv til specifikt at undersøge muskeltermogenese. Det giver en ny vej ud over dem, der leveres af overfladeinfrarød termometri 27,28 eller kutane temperaturmålinger via termoelement 29. Desuden tilbyder de data, der leveres gennem denne metode, en række forskningsmuligheder, hvilket undgår behovet for stort, dyrt, højteknologisk udstyr og software såsom infrarød termografi30,31,32.

Denne metode er med succes blevet brugt til at måle temperaturen i quadriceps og gastrocnemius, enten ensidigt eller bilateralt. Denne metode har også været effektiv i forbindelse med stereotaxisk kirurgi14,15. Inden for ~ 7-10 cm fra transponderlemmen bruges bærbare transponderlæsere (DAS-8027 / DAS-7007R) til at scanne, måle og vise temperaturen. Denne afstand har været kritisk og værdifuld for tidligere undersøgelser 8,9,10, fordi den minimerer potentielle stressfaktorer og temperaturændrende variabler såsom dyrehåndtering under testprocedurerne. Ved hjælp af timere kan målinger derefter registreres og indsamles over en periode uden direkte interaktion med dyrene.

For yderligere at minimere forstyrrelser af mus under test beskriver denne metode samling og brug af stigerør lavet af PVC-rør for at give eksperimentatoren adgang til bunden af hjemmeburene under test. Ved hjælp af stigrørene sammen med den digitale læser kan temperaturmålinger af transponderlemmen foretages uden nogen dyreinteraktion, efter at stimulus er placeret. Til en minimal pris kan denne metode bruges sammen med farmakologiske og kontekstuelle stimuli, hvilket gør den ret tilgængelig for forskere. Derudover kan denne metode anvendes med et betydeligt antal forsøgspersoner (~ 16 mus eller ~ 12 rotter) ad gangen, hvilket sparer tid til at øge den samlede gennemstrømning for ethvert forskningsprojekt.

Introduceret i denne metode er en udformet mekanisme til præsentation af lugt til mus ved hjælp af rustfrit stål mesh te infuser bolde, fra nu af kaldet “te bolde”. Selvom disse tekugler er ideelle til at indeholde lugtmateriale, placeres håndklæder, der fungerede som sengetøj i buret over 2-3 uger til fritter, et naturligt rovdyr af mus og rotter, i disse undersøgelser inden for hver behandlingstekugle. Hvert håndklæde skæres i firkanter på 5 cm x 5 cm. Denne aliquoting gentages også med ellers identiske lugtfri kontrolhåndklæder. At præsentere disse lugte uden en barriere (dvs. tekugle) førte til, at mus makulerede fibrene i deres bure, hvilket øgede fysisk aktivitet. Denne adfærd var ikke så fremtrædende hos rotter. Tekugler giver et ventileret hus til håndklædet, hvilket giver fuld adgang til lugten, mens de forbliver beskyttet i hele det eksperimentelle forsøg. Disse tekugler kan desinficeres i overensstemmelse med dyrebrugsprotokoller, fremstilles og introduceres direkte efter operationen for at begynde at vænne dyrene til strukturen sammen med kontrolstimuleringen. Mus kan derefter leve med den ekstra berigelse, hvilket reducerer betydningen af den akutte stimuluspræsentation.

Tilvænning til tilstedeværelsen af tekuglen er kun et aspekt af tilvænning, der er kritisk for denne metode. Den beskrevne tilvænningsprotokol består også af gentagen eksponering for testproceduren for at normalisere testmiljøet (dvs. personale, transport og bevægelse til teststedet, eksponering for stimulus). Denne udvidede tilvænning minimerer nuancerede reaktioner fra dyrene og fokuserer målinger på de ønskede afhængige variabler (f.eks. Farmakologiske eller kontekstuelle stimuli). Ved en tidligere vurdering af denne protokol er fire forsøg identificeret som det mindste antal tilvænninger, der er nødvendige før temperaturtest i hjemmebure hos rotter8. Hvis testen er adskilt af lange perioder (mere end 2-3 uger), skal dyrene vænne sig igen. Ved gentagen tilvænning er mindst et til to forsøg tilstrækkeligt. Men hvis temperaturtest adskilles af mere langvarige anfald af tid, kan det være nødvendigt at gentage flere forsøg.

I den fortsatte indsats for at vænne mus og rotter til testproceduren bør en akklimatiseringsperiode før stimuluspræsentation indgå i hvert eksperimentelt forsøg. Denne akklimatiseringstid er afgørende for at genbalancere temperatur og aktivitet efter at være flyttet til teststedet. Gnavere har tendens til at have kraftige temperaturstigninger på grund af translokation. Akklimatisering bør bestå af mindst 1 time uden interaktion fra forsøgslederen på testdagen før tilsætning af et farmakologisk middel eller kontekstuelle stimuli. Dette er nødvendigt hver testdag.

I de skitserede temperaturtest i hjemmeburet har mus frit område af deres hjemmebur til at strejfe som reaktion på den testede stimulus. Dette kan forårsage variable skift i aktivitet, påvirke nøjagtigheden af temperaturaflæsninger og derfor analysen af de termogene virkninger af den uafhængige variabel (f.eks. Farmakologisk eller kontekstuel stimulus). I erkendelse af de potentielle temperaturændringer på grund af aktivitetsniveau er der inkluderet en protokol nedenfor, der beskriver brugen af temperatur under løbebåndsgang. Den offentliggjorte litteratur beskriver den vellykkede anvendelse af denne procedure hos rotter, og den anvendes i øjeblikket med mus 8,10,14,15. Løbebåndsgang opretholder en konstant aktivitetshastighed for testpersonen. Til denne undersøgelse bruges løbebånd strengt til at kontrollere aktivitetsniveauet og er derfor indstillet til den laveste tilgængelige hastighed på løbebåndet for at fremme gang for mus og en tilsvarende lav indstilling for rotter.

Følgende procedure er skitseret til temperaturmåling af ensidig gastrocnemius i mus og rovdyr lugt præsentation. Designet kan bruges sammen med farmakologiske midler og kan overføres til rotter og andre skeletmuskelgrupper (dvs. quadriceps) hos mus. For rotter kan transpondere placeres i gastrocnemius bilateralt og i brunt fedtvæv. På grund af størrelses- og afstandsbegrænsninger kan der kun bruges en transponder pr. Mus. Mindre ændringer (f.eks. fjernelse af kontekstuelle stimuli) kan foretages for at vurdere termogene reaktioner på farmakologiske midler.

Protocol

Disse metoder kan anvendes på både rotte- og musemodeller og blev udført med institutionel godkendelse (Kent State University, IACUC Approval #359 og #340 CN 12-04). Før protokollen gennemføres, skal dyrene opstaldes i overensstemmelse med vejledningen om pleje og brug af forsøgsdyr. 1. Forberedelse af transponderlæseren BEMÆRK: Før brug skal transponderlæseren indstilles; Følgende trin omfatter kun de indstillingsændringer, der …

Representative Results

Transpondere blev ensidigt implanteret i den rigtige gastrocnemius af ti 4-6 måneder gamle vildtype (WT) mus opdrættet fra SF1-Cre-stammen (Tg (Nr5a1-cre) 7Lowl/J, stamme #012462, C57BL/6J og FVB baggrunde; hun N = 5; han N = 5). Efter genopretning blev musene vant til en temperaturtestprocedure i hjemmeburet, der ikke omfattede en kontekstuel stimulus (f.eks. PO). Temperaturmålinger ved hjælp af en transponderstav blev registreret i deres boligrum og efter overførsel til teststedet. Mus fik 1-2 timer til at akklima…

Discussion

Denne temperaturtestprotokol giver feltet en mulighed for at måle skeletmuskulatur termogenese direkte. Dette er kritisk, da forskning dykker ned i at identificere de mekanismer, der ligger til grund for muskeltermogenese33. Metoden giver to omkostningseffektive protokoller til måling af skeletmuskulatur termogenese under kontekstuelle og farmakologiske forhold. Denne protokol understreger betydningen af både tilvænning og akklimatisering inden for disse procedurer. Tilvænning bruges til gent…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde er støttet af R15 DK097644 og R15 DK108668. Vi takker Dr. Chaitanya K Gavini og Dr. Megan Rich for tidligere bidrag og Dr. Stanley Dannemiller for at sikre vores overholdelse af institutionelle retningslinjer for brug af dyr. En særlig tak til Dr. Tim Bartness for at levere den grundlæggende forskning, der er nødvendig for at opbygge denne metode og dens tilknyttede undersøgelser. Figur 1A, C, D og figur 2A blev oprettet ved hjælp af Biorender.com.

Materials

1012M-2 Modular Enclosed Metabolic Treadmill for Mice, 2 Lanes w/ Shock Columbus Instruments
1012R-2 Modular Enclosed Metabolic Treadmill for Rats, 2 Lanes w/ Shock Columbus Instruments
1-1/4 in. Ratcheting PVC Cutter BrassCraft
1 mL Syringes Fisher Scientific BD 309659
Betadine Swabs Fisher Scientific 19-898-945
Booster Coil BioMedic Data Systems Transponder Accessory
Electric Clippers Andis 40 Ultraedge Clipper Blade
Flexible Mirror Sheets Amazon Self Adhesive Non Glass Mirror Tiles
Forceps Fisher Scientific 89259-940
Heating Pad
Induction Chamber (isoflurane) Kent Scientific VetFlo-0730 3.0 L Low Cost Chambers for Traditional Vaporizers
Ketoprophen Med-Vet Intl. RXKETO-50
Magnetic Strips Amazon
Magnets Amazon DIYMAG Magnetic Hooks 40lbs
Needles Med-Vet Intl. 26400
Neomycin/Polymixin/Bacitracin with Hydrocortisone Ophthalmic Ointment, 3.5 g Med-Vet Intl. RXNPB-HC
Oasis Absorbable Suture Med-Vet Intl. MV-H821-V
Predator (Ferret) Odor Towels Marshall BioResources
PVC pipe
Reflex Wound Clip Remover CellPoint Scientific
Reflex Wound Clip, 7 mm (mouse) CellPoint Scientific
Reflex Wound Clip, 9 mm (rat) CellPoint Scientific
Srerile Autoclip, 7 mm (mouse) CellPoint Scientific Wound Clip Applier (mouse)
Stainless Strainers Interval Seasonings Tea Infuser Amazon
Sterile Autoclip, 9 mm (rat) CellPoint Scientific Wound Clip Applier (rat)
Sterile Saline Med-Vet Intl. RX0.9NACL-10
Surgical Scissors Fisher Scientific 08-951-5
Surgical Sheets
Towels (Control/Habituation) Amazon 100% Cotton Towels, white
Transponders BioMedic Data Systems Model: IPTT-300
Transponders Reader BioMedic Data Systems Model: DAS-8027-IUS/ DAS-7007R
Versaclean Fisher Scientific 18-200-700 liquid detergent
Webcol Alcohol Preps Covidien 22-246-073 
Wedge pieces for PVC pipe

Referências

  1. Periasamy, M., Herrera, J. L., Reis, F. C. G. Skeletal muscle thermogenesis and its role in whole body energy metabolism. Diabetes Metabolism Journal. 41 (5), 327-336 (2017).
  2. Rowland, L. A., Bal, N. C., Periasamy, M. The role of skeletal-muscle-based thermogenic mechanisms in vertebrate endothermy. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 90 (4), 1279-1297 (2015).
  3. Maurya, S. K., et al. Sarcolipin is a key determinant of the basal metabolic rate, and its overexpression enhances energy expenditure and resistance against diet-induced obesity. Journal of Biological Chemistry. 290 (17), 10840-10849 (2015).
  4. Grigg, G., et al. Whole-body endothermy: Ancient, homologous and widespread among the ancestors of mammals, birds and crocodylians. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 97 (2), 766-801 (2022).
  5. Franck, J. P. C., Slight-Simcoe, E., Wegner, N. C. Endothermy in the smalleye opah (Lampris incognitus): A potential role for the uncoupling protein sarcolipin. Comparative Biochemistry and Physiology – Part A: Molecular & Integrative Physiology. 233, 48-52 (2019).
  6. Nowack, J., et al. Muscle nonshivering thermogenesis in a feral mammal. Scientific Reports. 9, 6378 (2019).
  7. Oliver, S. R., Anderson, K. J., Hunstiger, M. M., Andrews, M. T. Turning down the heat: Down-regulation of sarcolipin in a hibernating mammal. Neuroscience Letters. 696, 13-19 (2019).
  8. Gorrell, E., et al. Skeletal muscle thermogenesis induction by exposure to predator odor. The Journal of Experimental Biology. 223, (2020).
  9. Gavini, C. K., et al. Leanness and heightened nonresting energy expenditure: Role of skeletal muscle activity thermogenesis. The American Journal of Physiology – Endocrinology and Metabolism. 306 (6), 635-647 (2014).
  10. Almundarij, T. I., Gavini, C. K., Novak, C. M. Suppressed sympathetic outflow to skeletal muscle, muscle thermogenesis, and activity energy expenditure with calorie restriction. Physiological Reports. 5 (4), 13171 (2017).
  11. Harshaw, C., Lanzkowsky, J., Tran, A. D., Bradley, A. R., Jaime, M. Oxytocin and ‘social hyperthermia’: Interaction with beta3-adrenergic receptor-mediated thermogenesis and significance for the expression of social behavior in male and female mice. Hormones and Behavior. 131, 104981 (2021).
  12. Caldwell, H. K. Oxytocin and vasopressin: Powerful regulators of social behavior. The Neuroscientist. 23 (5), 517-528 (2017).
  13. Harshaw, C., Leffel, J. K., Alberts, J. R. Oxytocin and the warm outer glow: Thermoregulatory deficits cause huddling abnormalities in oxytocin-deficient mouse pups. Hormones and Behavior. 98, 145-158 (2018).
  14. Gavini, C. K., Britton, S. L., Koch, L. G., Novak, C. M. Inherently lean rats have enhanced activity and skeletal muscle response to central melanocortin receptors. Obesity. 26 (5), 885-894 (2018).
  15. Gavini, C. K., Jones, W. C., Novak, C. M. Ventromedial hypothalamic melanocortin receptor activation: regulation of activity energy expenditure and skeletal muscle thermogenesis. The Journal of Physiology. 594 (18), 5285-5301 (2016).
  16. Zaretsky, D. V., Romanovsky, A. A., Zaretskaia, M. V., Molkov, Y. I. Tissue oxidative metabolism can increase the difference between local temperature and arterial blood temperature by up to 1.3(o)C: Implications for brain, brown adipose tissue, and muscle physiology. Temperature. 5 (1), 22-35 (2018).
  17. Yoo, Y., et al. Exercise activates compensatory thermoregulatory reaction in rats: A modeling study. Journal of Applied Physiology. 119 (12), 1400-1410 (2015).
  18. Langer, F., Fietz, J. Ways to measure body temperature in the field. Journal of Thermal Biology. 42, 46-51 (2014).
  19. Pence, S., et al. Central apolipoprotein A-IV stimulates thermogenesis in brown adipose tissue. International Journal of Molecular Sciences. 22 (3), 1221 (2021).
  20. Li, D., et al. Homeostatic disturbance of thermoregulatory functions in rats with chronic fatigue. Journal of Neuroscience Research. 165, 45-50 (2021).
  21. Carlier, J., et al. Pharmacodynamic effects, pharmacokinetics, and metabolism of the synthetic cannabinoid AM-2201 in male rats. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 367 (3), 543-550 (2018).
  22. Pato, A. M., Romero, D. M., Sosa Holt, C. S., Nemirovsky, S. I., Wolansky, M. J. Use of subcutaneous transponders to monitor body temperature in laboratory rats. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 114, 107145 (2022).
  23. Almeida, D. L., et al. Lean in one way, in obesity another: Effects of moderate exercise in brown adipose tissue of early overfed male Wistar rats. International Journal of Obesity. 46 (1), 137-143 (2022).
  24. Brito, M. N., Brito, N. A., Baro, D. J., Song, C. K., Bartness, T. J. Differential activation of the sympathetic innervation of adipose tissues by melanocortin receptor stimulation. Endocrinology. 148 (11), 5339-5347 (2007).
  25. Vaughan, C. H., Shrestha, Y. B., Bartness, T. J. Characterization of a novel melanocortin receptor-containing node in the SNS outflow circuitry to brown adipose tissue involved in thermogenesis. Brain Research. 1411, 17-27 (2011).
  26. Kort, W. J., Hekking-Weijma, J. M., TenKate, M. T., Sorm, V., VanStrik, R. A microchip implant system as a method to determine body temperature of terminally ill rats and mice. Laboratory Animals. 32 (3), 260-269 (1998).
  27. Mei, J., et al. Body temperature measurement in mice during acute illness: Implantable temperature transponder versus surface infrared thermometry. Scientific Reports. 8, 3526 (2018).
  28. Warn, P. A., et al. Infrared body temperature measurement of mice as an early predictor of death in experimental fungal infections. Laboratory Animals. 37 (2), 126-131 (2003).
  29. Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutaneous hyperalgesia. Pain. 32 (1), 77-88 (1988).
  30. Fiebig, K., Jourdan, T., Kock, M. H., Merle, R., Thone-Reineke, C. Evaluation of infrared thermography for temperature measurement in adult male NMRI nude mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (6), 715-724 (2018).
  31. Franco, N. H., Geros, A., Oliveira, L., Olsson, I. A. S., Aguiar, P. ThermoLabAnimal – A high-throughput analysis software for non-invasive thermal assessment of laboratory mice. Physiology & Behavior. 207, 113-121 (2019).
  32. Koganti, S. R., et al. Disruption of KATP channel expression in skeletal muscle by targeted oligonucleotide delivery promotes activity-linked thermogenesis. Molecular Therapy. 23 (4), 707-716 (2015).
  33. Bal, N. C., Periasamy, M. Uncoupling of sarcoendoplasmic reticulum calcium ATPase pump activity by sarcolipin as the basis for muscle non-shivering thermogenesis. Philosophical Transactions of the Royal Society B. 375 (1793), 20190135 (2020).
  34. Hicks, C., et al. Body temperature and cardiac changes induced by peripherally administered oxytocin, vasopressin and the non-peptide oxytocin receptor agonist WAY 267,464: a biotelemetry study in rats. British Journal of Pharmacology. 171 (11), 2868-2887 (2014).
  35. Kasahara, Y., et al. Oxytocin receptor in the hypothalamus is sufficient to rescue normal thermoregulatory function in male oxytocin receptor knockout mice. Endocrinology. 154 (11), 4305-4315 (2013).
  36. Kasahara, Y., et al. Role of the oxytocin receptor expressed in the rostral medullary raphe in thermoregulation during cold conditions. Frontiers in Endocrinology. 6, 180 (2015).
  37. Yuan, J., Zhang, R., Wu, R., Gu, Y., Lu, Y. The effects of oxytocin to rectify metabolic dysfunction in obese mice are associated with increased thermogenesis. Molecular and Cellular Endocrinology. 514, 110903 (2020).
  38. Scholl, J. L., Afzal, A., Fox, L. C., Watt, M. J., Forster, G. L. Sex differences in anxiety-like behaviors in rats. Physiology & Behavior. 211, 112670 (2019).
check_url/pt/64264?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Watts, C. A., Haupt, A., Smith, J., Welch, E., Malik, A., Giacomino, R., Walter, D., Mavundza, N., Shemery, A., Caldwell, H. K., Novak, C. M. Measuring Skeletal Muscle Thermogenesis in Mice and Rats. J. Vis. Exp. (185), e64264, doi:10.3791/64264 (2022).

View Video