Summary

माउस भ्रूण में प्रारंभिक कार्डियक पूर्वजों की लाइव इमेजिंग

Published: July 12, 2022
doi:

Summary

हम माउस भ्रूण संस्कृति और इमेजिंग के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं जो कार्डियक पूर्वज कोशिकाओं के 3 डी + टाइम इमेजिंग को सक्षम बनाता है। यह वीडियो-टूलकिट सफल लाइव इमेजिंग के लिए आवश्यक प्रमुख कौशल को संबोधित करता है अन्यथा पाठ-केवल प्रकाशनों से प्राप्त करना मुश्किल है।

Abstract

हृदय के विकास के पहले चरण सेल व्यवहार और भेदभाव में भारी परिवर्तन का संकेत देते हैं। जबकि निश्चित भ्रूण का विश्लेषण अभी भी स्नैपशॉट में विशिष्ट विकास चरणों का विस्तार से अध्ययन करने की अनुमति देता है, लाइव इमेजिंग भ्रूण को विकसित होने पर इमेजिंग करके गतिशील मोर्फोजेनेटिक घटनाओं, जैसे सेल माइग्रेशन, आकार परिवर्तन और भेदभाव को कैप्चर करता है। यह निश्चित विश्लेषण का पूरक है और भ्रूणजनन के दौरान अंगों के विकास की समझ का विस्तार करता है। इसके फायदों के बावजूद, लाइव इमेजिंग का उपयोग शायद ही कभी माउस मॉडल में इसकी तकनीकी चुनौतियों के कारण किया जाता है। प्रारंभिक माउस भ्रूण संवेदनशील होते हैं जब सुसंस्कृत पूर्व विवो होते हैं और कुशल हैंडलिंग की आवश्यकता होती है। माउस विकास अनुसंधान में लाइव इमेजिंग के व्यापक उपयोग की सुविधा के लिए, यह पेपर दो-फोटॉन लाइव माइक्रोस्कोपी के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रस्तुत करता है जो माउस भ्रूण में दीर्घकालिक अधिग्रहण की अनुमति देता है। प्रोटोकॉल के अलावा, भ्रूण हैंडलिंग और संस्कृति अनुकूलन पर सुझाव प्रदान किए जाते हैं। यह प्रारंभिक माउस ऑर्गेनोजेनेसिस में प्रमुख घटनाओं को समझने में मदद करेगा, कार्डियोवैस्कुलर पूर्वज जीव विज्ञान की समझ को बढ़ाएगा।

Introduction

पूरे भ्रूण में पोषक तत्वों को पंप करना शुरू करने के लिए भ्रूणजनन के दौरान हृदय जल्दी बनता है, जबकियह विकसित करना जारी रखता है। माउस भ्रूण में, गैस्ट्रुलेशन की शुरुआत के डेढ़ दिन बाद, एक अल्पविकसित हृदय अंग पूर्ववर्ती ध्रुव 2,3 पर इकट्ठा होता है। प्रारंभिक स्ट्रीक (ईएस) चरण तक, एपिब्लास्ट में कार्डियक पूर्वज आदिम लकीर के माध्यम से नवजात मेसोडर्मल परत 4,5,6 में प्रवेश करते हैं और पूर्ववर्ती ध्रुव पर पलायन करना शुरू करते हैं, जहां वे आदिम हृदय ट्यूब बनाने के लिए अंतर करते हैं। इस प्रक्रिया के दौरान, प्रारंभिक हृदय पूर्वज माइग्रेशन7 (चित्रा 1) के अलावा सेल पुनर्व्यवस्था, आकार परिवर्तन और भेदभाव से गुजरते हैं।

प्रारंभिक कार्डियक पूर्वजों ने एक साथ एक कार्यात्मक अंग को अलग करने और बनाने की उनकी उल्लेखनीय क्षमता के कारण लगभग एक सदी तक शोधकर्ताओं को आकर्षित किया है। पिछले दो दशकों में, क्लोनल विश्लेषण और सशर्त नॉकआउट मॉडल से पता चला है कि प्रारंभिक हृदय विकास एक अत्यधिक गतिशील प्रक्रिया 8,9,10 में अलग-अलग सेल स्रोतों को फंसाता है। हालांकि, आदिम हृदय ट्यूब की 3 डी संरचना और इसके मोर्फोजेनेसिस की गतिशील प्रकृति अध्ययन करना चुनौतीपूर्ण बनाती है (चित्रा 1), और हम इसकी पूर्ण जटिलता11 को समझने से बहुत दूर हैं।

इन गतिशील सेलुलर प्रक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए, लाइव इमेजिंग विधियां अब एक अभूतपूर्व विवरण 7,12,13,14 प्रदान करती हैं। माउस मॉडल में, लाइव दृष्टिकोण विकास ता्मक विषयों से पूछताछ करने के लिए महत्वपूर्ण रहे हैं जोस्थिर विश्लेषण 7,13,15 द्वारा संबोधित करना मुश्किल है। जबकि दीर्घकालिक पूर्व विवो संस्कृति और मजबूत माइक्रोस्कोप सेटअपतेजी से 16,17 आगे बढ़ रहे हैं, कुछ शोधकर्ताओं के पास लाइव भ्रूण की सफलतापूर्वक छवि बनाने की विशेषज्ञता है। यद्यपि पेपर-आधारित प्रकाशन लाइव इमेजिंग प्रयोगों को पुन: पेश करने के लिए पर्याप्त तकनीकी विवरण प्रदान करते हैं, कुछ कौशल और चालें दृश्य उदाहरणों या सहकर्मी-से-सहकर्मी सहायता के बिना समझना मुश्किल है। इस सीखने की प्रक्रिया में तेजी लाने और प्रयोगशालाओं के बीच लाइव इमेजिंग के उपयोग को फैलाने के लिए, हमने एक वीडियो प्रोटोकॉल (चित्रा 2) इकट्ठा किया जो गैस्ट्रुलेटेड माउस भ्रूण पर लाइव इमेजिंग करने के लिए आवश्यक कौशल इकट्ठा करता है।

Figure 1
चित्रा 1: माउस भ्रूण में कार्डियक पूर्वज कोशिकाओं का प्रारंभिक विभेदन गैस्ट्रुलेशन की शुरुआत से आदिम हृदय ट्यूब गठन से पहले के चरण तक। कार्डियक पूर्वज कोशिकाएं गैस्ट्रुलेशन की शुरुआत के तुरंत बाद मेसोडर्म में प्रवेश करती हैं, भ्रूण के विपरीत पक्ष में पलायन करती हैं। आरेखों के शीर्ष पर रूपात्मक और भ्रूण दिवस (ई) चरण लिखा गया है। डैश किए गए तीर गैस्ट्रुलेशन के दौरान आदिम हृदय ट्यूब पूर्वजों के प्रवास प्रक्षेपवक्र को दर्शाते हैं। इस आंकड़े को11 से अनुकूलित किया गया था। संक्षिप्तरूप: ईएस = प्रारंभिक स्ट्रीक; एमएस = मध्य स्ट्रीक; ईएचएफ = अर्ली हेड फोल्ड। कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Figure 2
चित्र 2: प्रारंभिक हृदय पूर्वजों की लाइव इमेजिंग के लिए वर्कफ़्लो आरेख. कृपया इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें.

Protocol

सभी पशु प्रक्रियाओं को सीएनआईसी पशु प्रयोग आचार समिति द्वारा अनुमोदित किया गया था, मैड्रिड समुदाय (संदर्भ प्रोईएक्स 220/15) द्वारा और यूरोपीय संघ के निर्देश 2010/63ईयू और प्रयोगात्मक और अन्य वैज्ञानिक उद्दे?…

Representative Results

हमने प्रारंभिक हृदय पूर्वजों में नॉच सिग्नलिंग सक्रियण की कल्पना करने के लिए प्रोटोकॉल का उपयोग किया, जो आदिम हृदय ट्यूब मोर्फोजेनेसिस के दौरान एंडोथेलियल कोशिकाओं को अलग करने के बारे में था। इसके ल?…

Discussion

प्रारंभिक हृदय पूर्वज एक आदिम हृदय ट्यूब में व्यवस्थित होते हैं जो अभी भी बनने के दौरान धड़कना शुरू कर देता है। यह समझना कि यह प्रक्रिया कैसे होती है, विशिष्ट मोर्फोजेनेटिक घटनाओं के लिए जन्मजात हृदय ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखक इस पद्धति पर पिछले काम के लिए डॉ केंजो इवानोविच और भ्रूण माउंटिंग पर प्रारंभिक विशेषज्ञता प्रदान करने के लिए डॉ शिगेनोरी नोनाका (नेशनल इंस्टीट्यूट ऑफ नेचुरल साइंसेज, जापान) के समूह को स्वीकार करते हैं। इस अध्ययन को स्पेनिश मिनिस्टरियो डी सिएनसिया ई इनोवासियोन से ग्रांट पीजीसी 2018-096486-बी-आई00 और यूरोपीय संघ के क्षितिज 2020 कार्यक्रम से एमटी को ग्रांट एच 2020-एमएससीए-आईटीएन-2016-722427 और जेएनडी को फेडर एंडालुसिया 2014-2020 ऑपरेटिंग प्रोग्राम से अनुदान 1380918 द्वारा समर्थित किया गया था। एमएस को ला कैक्सा फाउंडेशन पीएचडी फैलोशिप (एलसीएफ / बीक्यू / डीई 18 / 11670014) और द कंपनी ऑफ बायोलॉजिस्ट ट्रैवलिंग फैलोशिप (डीईवीटीएफ 181145) द्वारा समर्थित किया गया था। सीएनआईसी स्पेनिश विज्ञान मंत्रालय और प्रोक्निक फाउंडेशन द्वारा समर्थित है।

Materials

#55 Forceps Dumont  11295-51
35 mm Dish with glass coverslip bottom 14 mm Diameter Mattek P35G-1.5-14-C
35 mm vise table  Grandado SKU 8798771617573
50 mL tubes BD Falcon 352070
Distilled water
DMEM – Dulbecco's Modified Eagle Medium Gibco 11966025  with L-Glutamine, without Glucose, without Na Pyruvate
Fetal Bovine Serum Invitrogen 10438-026
Fluorescent reporter transgenic mice (Tg(CBF:H2BVenus,+)  JAX
Fluorobrite DMEM ThermoFisher A1896701  DMEM for live-cell imaging
High-vacuum silicone grease Dow Corning Z273554-1EA
Holder for wires Perlen Pressen pwb1
LSM 780 Upright microscope Zeiss 
MaiTai Deepsee far red pulsed-laser tuned at 980 nm Spectra-Physics
Non Descanned Detectors equipped with the filter sets
cyan-yellow (BP450-500/BP520-560), green-red (BP500-520/BP570-610) and yellow-red (BP520-560/BP645-710)
Zeiss 
Obj: 20x water dipping 1.0 NA, long working distance Zeiss 
P1000 and P200 pipettes
Paraffin Oil Nidacon VNI0049
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15070-063 (the final concentration should be 50 μg/mL penicillin and 50 μg/mL streptomycin)
Petri dishes 35 mm x 10 mm BD Falcon 351008
Pipette tips
Polymethyl methacrylate  Reused from old laboratory equipment
Rat Serum culture embryo, male rats SPRAGUE DAWLEY RjHan SD Janvier Labs 9979
Set of 160 mm fines RS PRO 541-6933
Standard 1.0 mm glass capillaries Anima Lab  1B100F-3
Sterile 0.22 μm syringe filter Corning 431218
Sterile 5 mL syringe Fisher Scientific 15809152
Tungsten needles
Ultrasonic homogeniser (sonicator) Bandelin BASO_17021

Referências

  1. Tyser, R. C. V., et al. Calcium handling precedes cardiac differentiation to initiate the first heartbeat. eLife. 5, 17113 (2016).
  2. Kelly, R. G., Buckingham, M. E., Moorman, A. F. Heart fields and cardiac morphogenesis. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (10), 015750 (2014).
  3. Evans, S. M., Yelon, D., Conlon, F. L., Kirby, M. L. Myocardial lineage development. Circulation Research. 107 (12), 1428-1444 (2010).
  4. Tam, P. P., Parameswaran, M., Kinder, S. J., Weinberger, R. P. The allocation of epiblast cells to the embryonic heart and other mesodermal lineages: the role of ingression and tissue movement during gastrulation. Development. 124 (9), 1631-1642 (1997).
  5. Kinder, S. J., Loebel, D. A. F., Tam, P. P. L. Allocation and early differentiation of cardiovascular progenitors in the mouse embryo. Trends in Cardiovascular Medicine. 11 (5), 177-184 (2001).
  6. Lawson, K. A. Fate mapping the mouse embryo. International Journal of Developmental Biology. 43 (7), 773-775 (1999).
  7. Ivanovitch, K., Temiño, S., Torres, M. Live imaging of heart tube development in mouse reveals alternating phases of cardiac differentiation and morphogenesis. eLife. 6, 30668 (2017).
  8. Meilhac, S. M., Buckingham, M. E. The deployment of cell lineages that form the mammalian heart. Nature Reviews Cardiology. 15 (11), 705-724 (2018).
  9. Buckingham, M., Meilhac, S., Zaffran, S. Building the mammalian heart from two sources of myocardial cells. Nature Reviews Genetics. 6 (11), 826-835 (2005).
  10. Meilhac, S. M., Lescroart, F., Blanpain, C. D., Buckingham, M. E. Cardiac cell lineages that form the heart. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (9), 013888 (2014).
  11. Sendra, M., Domínguez, J. N., Torres, M., Ocaña, O. H. Dissecting the complexity of early heart progenitor cells. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (1), 5 (2022).
  12. McDole, K., et al. In toto imaging and reconstruction of post-implantation mouse development at the single-cell level. Cell. 175 (3), 859-876 (2018).
  13. Saykali, B., et al. Distinct mesoderm migration phenotypes in extra-embryonic and embryonic regions of the early mouse embryo. eLife. 8, 42434 (2019).
  14. Ichikawa, T., et al. Live imaging of whole mouse embryos during gastrulation: Migration analyses of epiblast and mesodermal cells. PLoS ONE. 8 (7), 64506 (2013).
  15. Tyser, R. C. V., et al. Single-cell transcriptomic characterization of a gastrulating human embryo. Nature. 600 (7888), 285-289 (2021).
  16. Aguilera-Castrejon, A., et al. Ex utero mouse embryogenesis from pre-gastrulation to late organogenesis. Nature. 593 (7857), 119-124 (2021).
  17. Yue, Y., et al. in toto live imaging of cardiomyocyte behaviour during mouse ventricle chamber formation at single-cell resolution. Nature Cell Biology. 22 (3), 332-340 (2020).
  18. Nowotschin, S., Xenopoulos, P., Schrode, N., Hadjantonakis, A. K. A bright single-cell resolution live imaging reporter of Notch signaling in the mouse. BMC Developmental Biology. 13 (1), 15 (2013).
  19. Cold Spring Harbor Protocols. Sharpened tungsten needles. Cold Spring Harbor Protocols. , (2012).
  20. Tam, P. P., Snow, M. H. The in vitro culture of primitive-streak-stage mouse embryos. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 59, 131-143 (1980).
  21. Garcia, M. D., Udan, R. S., Hadjantonakis, A. K., Dickinson, M. E. Preparation of rat serum for culturing mouse embryos. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (4), 5593 (2011).
  22. Tam, P. P. L. Postimplantation mouse development: Whole embryo culture and micro- manipulation. International Journal of Developmental Biology. 42 (7), 895-902 (1998).
  23. Optimización de propiedades fisicoquímicas y medios de cultivo para el cultivo del embrión de ratón ex vivo. Universidad de Jaén. Biología Experimental Available from: https://hdl.handle.net/10953.1/1400 (2021)
  24. Behringer, R., Gertsenstein, M., Vintersen Nagy, K., Nagy, A. . Manipulating the mouse embryo: A laboratory manual, Fourth Edition. , 814 (2014).
  25. Shea, K., Geijsen, N. Dissection of 6.5 dpc mouse embryos. Journal of Visualized Experiments. (2), e160 (2006).
  26. Nonaka, S. Modification of mouse nodal flow by applying artificial flow. Methods in Cell Biology. 91, 287-297 (2009).
  27. Garcia, M. D., Udan, R. S., Hadjantonakis, A. K., Dickinson, M. E. Time-lapse imaging of postimplantation mouse embryos. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (4), 5595 (2011).
  28. Crainiciuc, G., et al. Behavioural immune landscapes of inflammation. Nature. 601 (7893), 415-421 (2022).
check_url/pt/64273?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Sendra, M., Mañes, J., Domínguez, J. N., Torres, M. Live Imaging of Early Cardiac Progenitors in the Mouse Embryo. J. Vis. Exp. (185), e64273, doi:10.3791/64273 (2022).

View Video