Denne protokol beskriver en flowcytometribaseret screeningsmetode med høj kapacitet til identifikation af småmolekylelægemidler, der hæmmer β2-integrinaktivering på humane neutrofiler.
Denne protokol sigter mod at etablere en metode til identifikation af små molekylære antagonister af β2 integrinaktivering ved hjælp af konformationsændringsrapporterende antistoffer og high-throughput flowcytometri. Metoden kan også tjene som vejledning for andre antistofbaserede screeningsmetoder med høj kapacitet. β2-integriner er leukocytspecifikke adhæsionsmolekyler, der er afgørende for immunresponser. Neutrofiler er afhængige af integrinaktivering for at forlade blodbanen, ikke kun for at bekæmpe infektioner, men også for at være involveret i flere inflammatoriske sygdomme. Kontrol af β2 integrinaktivering præsenterer en levedygtig tilgang til behandling af neutrofilassocierede inflammatoriske sygdomme. I denne protokol anvendes et monoklonalt antistof, mAb24, som specifikt binder til hovedstykket med høj affinitet af β2-integriner, til at kvantificere β2-integrinaktivering på isolerede primære humane neutrofiler. N-formylmethionyl-leucyl-phenylalanin (fMLP) anvendes som stimulus til aktivering af neutrofile β2-integriner. Et flowcytometer med høj kapacitet, der automatisk kunne køre 384-brønds pladeprøver, blev anvendt i denne undersøgelse. Virkningerne af 320 kemikalier på β2 integrinhæmning vurderes inden for 3 timer. Molekyler, der direkte målretter β2-integriner eller målmolekyler i G-proteinkoblede receptorinitierede integrin indefra og ud-aktiveringssignalveje, kan identificeres gennem denne tilgang.
Mange inflammatoriske sygdomme er karakteriseret ved infiltration af neutrofiler på stedet for hævelse eller skade1. For at infiltrere disse væv skal neutrofiler fuldføre neutrofilrekrutteringskaskaden, hvilket indebærer anholdelse til endotelet, ekstravasation over karvæggen og rekruttering i vævet2. Cirkulerende neutrofiler har brug for β2 integrinaktivering for at fuldføre denne kaskade, især til anholdelsesfasen. Således kan integrinhæmmende lægemidler, der reducerer neutrofiladhæsion, ekstravasation og rekruttering, effektivt behandle inflammatoriske sygdomme 3,4.
β2 integriner har været målrettet mod inflammatoriske sygdomme før. Efalizumab, et monoklonalt antistof, der er direkte rettet mod integrin αLβ2, blev udviklet til behandling af psoriasis5. Efalizumab blev imidlertid seponeret på grund af dets dødelige bivirkning – progressiv multifokal leukoencefalopati som følge af JC-virusreaktivering 6,7. Nye antiinflammatoriske integrinbaserede terapier bør overveje at opretholde leukocytternes antiinfektionsfunktioner for at minimere bivirkninger. Bivirkningerne af efalizumab kan skyldes den langvarige cirkulation af monoklonale antistoffer i blodbanen, hvilket kan hæmme immunfunktionerne på lang sigt8. En nylig undersøgelse viser, at efalizumab medierer αLβ2 tværbinding og uønsket internalisering af α4 integriner, hvilket giver en alternativ forklaring på bivirkningerne9. Således kan kortvarige antagonister med små molekyler undgå dette problem.
En high-throughput metode til screening af småmolekylære β2 integrinantagonister ved hjælp af humane neutrofiler præsenteres her. β2 integrinaktivering kræver konformationelle ændringer af integrin-ektodomænet for at få adgang til og øge dets bindingsaffinitet til dets ligand. I den kanoniske switchblade-model strækker det bøjede lukkede integrin-ektodomæne sig først til en udvidet lukket konformation og åbner derefter sit hovedstykke til en fuldt aktiveret udvidet åben konformation10,11,12,13. Der er også en alternativ vej, der starter fra den bøjede-lukkede til bøjet-åben og udvidet-åben, til sidst 14,15,16,17,18,19. Det kropsbygningsspecifikke antistof mAb24 binder sig til en epitop i det humane β2-I-lignende domæne, når ektodomænets hovedstykke er åbent20,21,22,23.
Her bruges mAb24-APC til at bestemme, om β2-integrinerne er aktiveret. For at aktivere neutrofiler og integrin anvendes N-formylmethionyl-leucyl-phenylalanin (fMLP), et bakterielt afledt kort kemotaktisk peptid, der kan aktivere neutrofile β2-integriner24, som en stimulus i denne protokol. Når fMLP binder til Fpr1 på neutrofiler, aktiveres downstream-signalkaskader, der involverer G-proteiner, phospholipase Cβ og phosphoinositid 3-kinase γ. Disse signalhændelser resulterer i sidste ende i integrinaktivering via indefra-ud-signalvejen18,25. Udover små molekyleantagonister, der direkte binder til β2-integriner og forhindrer konformationelle ændringer af integrinaktivering26, vil forbindelser, der kan hæmme komponenter i β2-integrin-indefra-ud-aktiveringssignalvejen, også blive detekteret med denne metode. Automatiserede flowcytometre muliggør screening med høj kapacitet. Identifikation af nye antagonister kan ikke kun uddybe vores forståelse af integrinfysiologi, men også give translationel indsigt i integrinbaseret antiinflammationsbehandling.
Initiering og ophør af neutrofil stimulering og farvning bestemmes ved tilsætning af neutrofiler og det fikserende PFA. Derfor er det afgørende at sikre det samme tidsinterval mellem pipettering af neutrofiler eller PFA i hver kolonne. Dette sikrer, at stimulerings- og farvningstiden for neutrofiler fra hver brønd forbliver konsistent. På grund af neutrofilernes korte levetid skal hele eksperimentet, fra indsamling af blod fra donorer til færdiggørelse af flowcytometri, udføres samme dag. Neutrofiler er meget fø…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Dr. Evan Jellison og Li Zhu i flowcytometrikernen på UConn Health for deres hjælp med flowcytometri, Dr. Lynn Puddington i Institut for Immunologi ved UConn Health for hendes støtte til instrumenterne, Slawa Gajewska og Dr. Paul Appleton i den kliniske forskningskerne ved UConn Health for deres hjælp med at få blodprøver. Vi anerkender Dr. Christopher “Kit” Bonin og Dr. Geneva Hargis fra UConn School of Medicine for deres hjælp med videnskabelig skrivning og redigering af dette manuskript. Denne forskning blev støttet af tilskud fra National Institutes of Health, National Heart, Lung and Blood Institute (R01HL145454), National Institute of General Medical Sciences (P20GM121176), USA, en karriereudviklingspris fra American Heart Association (18CDA34110426) og en opstartsfond fra UConn Health. Figur 1 blev oprettet med BioRender.com.
16-channel pipettes | Thermo | 4661090N | Instrument |
384-well plate | Greiner | 784201 | Materials |
APC anti-human CD11a/CD18 (LFA-1) Antibody Clone: m24 | BioLegend | 363410 | Reagents |
Bravo Automated Liquid Handling Platform | Agilent | 16050-102 | 384 multi-channel liquid handler |
Centrifuge | Eppendorf | Model 5810R | Instrument |
FlowJo | Becton, Dickinson & Company | NA | Software |
Human Serum Albumin Solution (25%) | GeminiBio | 800-120 | Reagents |
Lifitegrast | Thermofisher | 50-208-2121 | Reagents |
Nexinhib20 | Tocris | 6089 | Reagents |
N-Formyl-Met-Leu-Phe (fMLP) | Sigma | F3506 | Reagents |
Paraformaldehyde 16% solution | Electron Microscopy Sciences | 15710 | Reagents |
Plate buckets | Eppendorf | UL155 | Accessory |
Plate shaker | Fisher | 88-861-023 | Instrument |
PolymorphPrep | PROGEN | 1895 (previous 1114683) | Reagents |
Prestwick Chemical Library Compound Plates (10 mM) | Prestwick Chemical Libraries | Ver19_384 | 1520 small molecules, 98% marketed approved drugs (FDA, EMA, JAN, and other agencies approved) |
RPMI 1640 Medium, no phenol red | Gibco | 11-835-030 | Reagents |
Swing-bucket rotor | Eppendorf | A-4-62 | Rotor |
ZE5 Cell Analyzer | Bio-Rad Laboratories | Model ZE5 | Instrument |