Summary

Mikrodissektion av gnagareögat

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Detta dokument presenterar ett protokoll för okulär mikrodissektion hos gnagare. Processen innefattar enukleation av ögongloben tillsammans med det nictiterande membranet (dvs det tredje ögonlocket). Detta följs sedan av separationen av de bakre och främre ögonkopparna.

Abstract

Den okulära mikrodissektionen av gnagarögat innefattar segmentering av den enukleerade ögongloben med det bifogade nictiterande membranet, eller tredje ögonlocket, för att erhålla de främre och bakre ögonmusslorna. Med denna teknik kan underdelarna av ögat, inklusive hornhinnans vävnad, nervvävnad, retinal pigmentepitelvävnad (RPE) och lins, erhållas för helmontering, kryosnitt och / eller encellssuspensioner av en specifik okulär vävnad. Närvaron av det tredje ögonlocket ger unika och signifikanta fördelar, eftersom det gynnar upprätthållandet av ögats orientering, vilket är viktigt för att förstå ögonfysiologi efter lokaliserad intervention eller i studier som involverar okulär analys relaterad till ögats rumsliga topografi.

I denna metod utlöste vi ögongloben vid uttaget tillsammans med det tredje ögonlocket genom att försiktigt och långsamt skära igenom de extraokulära musklerna och skära av synnerven. Ögongloben genomborrades genom hornhinnans limbus med hjälp av ett mikroblad. Snittet användes som ingångspunkt, vilket möjliggjorde skärning längs hornhinnan-sklerala korsningen genom att sätta in mikrosax genom snittpunkten. Små och kontinuerliga snitt längs omkretsen gjordes tills kopparna separerades. Dessa kan dissekeras ytterligare genom att försiktigt skala det genomskinliga lagret av den neurala näthinnan med hjälp av Colibri suturing pincett för att erhålla neurala näthinnan och RPE-skikten. Vidare gjordes tre/fyra lika avlägsna snitt från periferin vinkelrätt mot det optiska centrumet tills synnerven nåddes. Detta öppnade de halvklotformade kopparna i en florettform så att de föll platt och lätt kunde monteras. Denna teknik har använts i vårt laboratorium för hornhinnans helfästen och näthinnesektioner. Närvaron av det tredje ögonlocket avgränsar den nasal-temporala orienteringen, vilket möjliggör studier av olika cellterapiinterventioner efter transplantation och därmed den riktade fysiologiska valideringen som är avgörande för visualisering och korrekt representation i sådana studier.

Introduction

Okulär dissektion är en viktig teknik inom oftalmisk forskning och har gjort det möjligt för utredare att få tillgång till ögonsegmenten för riktade studier. Tidigare förlitade sig okulära forskare på ögonvävnaden från sjuka individer för sina studier. Det successivt växande antalet stammar av oftalmiska gnagarmodeller1 genom åren har dock minskat behovet av mänsklig ögonvävnad. Dessa musstammar har möjliggjort en djupare förståelse av ögonsjukdom och interventioner. Ändå har de också skapat ett behov av innovativa tekniker för okulär mikrodissektion. Den lilla storleken och det begränsade verksamhetsområdet begränsar allvarligt effektiv åtkomst till de okulära underdelarna. På grund av den homogena cellulära sammansättningen av de bakre och främre ögonmusslorna är det dessutom svårt att genomföra riktade ingrepp efter dissektion. De nuvarande mikrodissektionsteknikerna för laser2 och kirurgisk mikrodissektion 3,4 är otillräckliga för att uppfylla sådana krav på okulär forskning. Lasermikrodissektion är mycket effektiv vid encellsanalys, men den specifika vävnaden måste mikrodissekeras före laserproceduren2. Tekniken kan isolera små intressanta områden från en fördissekerad vävnad för molekylanalys. Således är tekniken inte lämplig för att förbereda helmonterade eller för isolering av axiellt packade okulära skikt för optimal visualisering.

Den kirurgiska metoden är den mest använda tekniken; Denna metod innebär immobilisering av ögat via synnerven5 och sedan utföra dissektionen. Denna övning är svår och kan skada all ömtålig vävnad, eftersom det sfäriska ögat fortsätter att röra sig under dissektion. Trots att den är fördelaktig för att isolera de olika sektionerna av näthinneskikten, kan tekniken inte avgränsa vävnadens rumsliga orientering vid dissektion.

Under dissektion ger upprätthållandet av närvaron av det bifogade nictiterande membranet eller det tredje ögonlocket (figur 1) unika och signifikanta fördelar. I denna metod är ögongloben först enukleerad med det tredje ögonlocket. Sedan används det tredje ögonlocket för att immobilisera ögat6 (figur 2A). Detta följs av att genomborra ögongloben genom hornhinnans limbus och använda snittet som ingångspunkt (figur 2B, C). Därefter separeras ögonmusslorna genom att skära längs omkretsen framåt och bakåt (figur 2D-G). Genom att dissekera den bakre ögonmusslan ytterligare kan det genomskinliga skiktet i den neurala näthinnan identifieras och försiktigt skalas av. Tre eller fyra lika avlägsna snitt görs sedan i de erhållna halvklotformiga främre och bakre kopparna, vilket gör att dessa blomformade koppar kan falla platt på en bild (figur 2H).

Det tredje ögonlocket hjälper till med enkel och effektiv hantering under dissektionen, vilket säkerställer minimal skada på vävnaden vid åtkomst till de olika okulära skikten och vid produktion av helfästen. Vidare hjälper närvaron av det tredje ögonlocket att lokalisera och undersöka lokaliserade ingrepp under visualisering.

Proceduren, i vårt labb, har utförts på en CBA / J eller en rd1 musstam vid P28 av vilket kön som helst. Förfarandet kan utföras på vilken stam, ålder eller kön som helst av djur och har ingen bias enligt dessa egenskaper.

Djuren anskaffades från kommersiella källor (se materialförteckning) och hölls vid Small Animal Facility (SAF) vid National Institute of Immunology (NII). De hölls i individuella ventilerade burar (IVC) och fick ad libitum tillgång till surgjort autoklaverat vatten och mat. De hölls vid 21-23 °C och med en 14 h/10 h ljus/mörk cykel.

Nedan ges en modifierad kirurgisk metod för mikrodissektion av ett musöga.

Protocol

Detta förfarande godkändes av den institutionella djuretiska kommittén vid National Institute of Immunology, New Delhi. Serienumret för godkännandet är IAEC#480/18. Experimenten utfördes i enlighet med regleringsriktlinjerna från kommittén för kontroll och övervakning av djurförsök, ministeriet för fiske, djurhållning och mejeri, Indiens regering, under överinseende av en professionell veterinär vid SAF, NII. 1. Förberedelse Vidga gnagarögonen med …

Representative Results

Ett helt berg av rd1 musöga/hornhinnevävnad förbereddes för att studera potentiell lymfangiogenes i den främre/hornhinnevävnaden i ett sjukt tillstånd. Den bifogade konjunktivalvävnaden från det tredje ögonlocket fungerade som en positiv kontroll, eftersom hornhinnan saknar lymfkärl. För studien dissekerades hornhinnevävnaden med bindhinnan och fixerades med 4% PFA, följt av permeabilisering och blockering. Vävnaden färgades sedan med en primär antikropp mot den lymfatiska endotelmarkören (LYVE1)<sup cl…

Discussion

Okulär mikrodissektion har visat sig vara en svår uppgift på grund av gnagarögats lilla storlek och sfäriska form, och gnagarögat kräver innovativa tekniker för effektiv hantering8.

I den nuvarande demonstrerade metoden erhålls den enukleerade musögongloben med det tredje ögonlocket fäst för effektiv och enkel hantering. Med hjälp av det tredje ögonlocket kan ögongloben immobiliseras helt, vilket gör att dissektionen kan fortsätta med lätthet och med…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dr. Alaknanda Mishra, Institutionen för cellbiologi och mänsklig anatomi, University of California Davis, USA, utbildade oss i denna metod vid National Institute of Immunology, New Delhi. Detta arbete stöddes av kärnbidraget från Institutionen för bioteknik, Indiens regering till National Institute of Immunology, New Delhi. P.S. beviljades ett forskarstipendium av institutionen för bioteknik.

Materials

Acetaminophen (Biocetamol) EG Pharmaceuticals No specific Catalog Number (Local Procurement)
Alkaline Phosphatase Kit (DEA) Coral Clinical System, India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Automated analyser Tulip, Alto Santracruz, India Screen Maaster 3000 Biochemical analyser for liver functional test
Betadine (Povidon-Iodine Solution) Win-Medicare;  India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Biological safety cabinet ( Class I) Kartos international; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Bright Field Microscope Olympus, Japan LX51
CBA/J inbred mice The Jackson Laboratory Stock No. 000654
Cefotaxime (Taxim) AlKem ; India cefotaxime sodium injection, No specific Catalog Number (Local Procurement)
Cell Strainer Sigma ; US CLS431752
Collagenase Type I Gibco by Life Technologies 17100-017
Cotton Buds Pure Swabs Pvt Ltd ; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
DPX Mountant Sigma ; US 6522
Drape Sheet JSD Surgicals, Delhi, India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Eosin Y solution, alcoholic Sigma ; US HT110132
Forceps Major Surgicals; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Gas Anesthesia System Ugo Basile; Italy 211000
Glucose Himedia, India GRM077
Hair removing cream (Veet) Reckitt Benckiser , India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Hematoxylin Solution, Mayer's Sigma ; US MHS16
Heparin sodium salt Himedia; India RM554
Hyaluronidase From Sheep Testes Sigma ; US H6254
I.V. Cannula (Plusflon) Mediplus, India Ref 1732411420
Insulin Syringes BD ; US REF 303060
Isoflurane ( Forane) Asecia Queenborough No B506 Inhalation Anaesthetic
Ketamine (Ketamax) Troikaa Pharmaceuticals Ltd. Ketamine hydrochloride IP, No specific Catalog Number (Local Procurement)
Meloxicam (Melonex) Intas Pharmaceuticals Ltd; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Micro needle holders straight & curved Mercian ;  England BS-13-8
Micro needle holders straight &
curved
Mercian ;  England BS-13-8
Microtome Histo-Line Laboratories, Italy MRS3500
Nylon Thread Mighty ; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Paraformaldehyde Himedia; India GRM 3660
Percoll GE Healthcare 17-0891-01
Refresh Tears/Eyemist Gel Allergan India Private Limited/Sun Pharma, India P3060 No specific Catalog Number
RPMI Himedia; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Scalpel Major Surgicals; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Scissors Major Surgicals; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
SGOT (ASAT) KIT Coral Clinical System, India No specific Catalog Number (Local Procurement)
SGPT (ALAT) KIT Coral Clinical System, India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Shandon Cryotome E Cryostat Thermo Electron Corporation ; US No specific Catalog Number
Sucrose Sigma ; US S0389
Surgical Blade No. 22 La Medcare, India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Surgical Board Locally made No specific Catalog Number (Local Procurement)
Surgical White Tape 3M India ; India 1530-1 Micropore Surgical Tape
Sutures Ethicon, Johnson & Johnson, India NW 5047
Syringes (1ml, 26 G) Dispo Van; India No specific Catalog Number (Local Procurement)
Trimmer (Clipper) Philips NL9206AD-4 DRACHTEN QT9005
Weighing Machine Braun No specific Catalog Number (Local Procurement)
William's E Media Himedia; India AT125
Xylazine (Xylaxin) Indian Immunologicals Limited Sedative, Pre-Anaesthetic, Analgesic and muscle relaxant

Referências

  1. Choi, Y., et al. Studying cancer immunotherapy using patient-derived xenografts (PDXs) in humanized mice. Experimental and Molecular Medicine. 50 (8), 1-9 (2018).
  2. Sutherland, C., et al. Laser Capture Microdissection of Highly Pure Trabecular Meshwork from Mouse Eyes for Gene Expression Analysis. J Vis Exp. (136), e57576 (2018).
  3. Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. Isolation, culture and characterization of primary mouse RPE cells. Nature Protocols. 11 (7), 1206-1218 (2016).
  4. Shang, P., Stepicheva, N. A., Hose, S., Zigler, J. S., Sinha, D. Primary cell cultures from the mouse retinal pigment epithelium. Journal of Visualized Experiments. (133), e56997 (2018).
  5. Claybon, A., Bishop, A. J. Dissection of a mouse eye for a whole mount of the retinal pigment epithelium. Journal of Visualized Experiments. (48), e2563 (2011).
  6. Steven, P., et al. Experimental induction and three-dimensional two-photon imaging of conjunctiva-associated lymphoid tissue. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 49 (4), 1512-1517 (2008).
  7. Tual-Chalot, S., Allinson, K. R., Fruttiger, M., Arthur, H. M. Whole mount immunofluorescent staining of the neonatal mouse retina to investigate angiogenesis in vivo. Journal of Visualized Experiments. (77), e50546 (2013).
  8. Ullmann, J. F., Moore, B. A., Temple, S. E., Fernandez-Juricic, E., Collin, S. P. The retinal wholemount technique: A window to understanding the brain and behaviour. Brain, Behavior and Evolution. 79 (1), 26-44 (2012).
  9. Nakao, S., Hafezi-Moghadam, A., Ishibashi, T. Lymphatics and lymphangiogenesis in the eye. Journal of Ophthalmology. 2012, 783163 (2012).
  10. Mishra, A., et al. Peripheral blood-derived monocytes show neuronal properties and integration in immune-deficient rd1 mouse model upon phenotypic differentiation and induction with retinal growth factors. Stem Cell Research and Therapy. 11 (1), 412 (2020).
check_url/pt/64414?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Mohan, K. V., Sinha, P., Swami, B., Muniyasamy, A., Nagarajan, P., Upadhyay, P. Microdissection of the Rodent Eye. J. Vis. Exp. (194), e64414, doi:10.3791/64414 (2023).

View Video