Summary

Скорость оседания эритроцитов: характеристика, основанная на физике, в медицинском контексте

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) — это физический параметр, часто используемый при рутинных медицинских осмотрах и медицинской диагностике. Недавно была разработана теоретическая модель, позволяющая извлекать физически значимые параметры из всей седиментационной кривой, основанная на современных коллоидных знаниях. Здесь мы представляем протокол для автоматического сбора ESR с течением времени и извлечения параметров этой недавней модели из этого автоматизированного сбора данных. Эти уточненные параметры также, вероятно, улучшат медицинские показания.

Abstract

Скорость оседания эритроцитов (или эритроцитов) (СОЭ) является физическим производным параметром крови, который часто используется при рутинных медицинских осмотрах и медицинской диагностике. Например, в случае воспаления наблюдается более высокая СОЭ из-за связанного с этим увеличения фибриногена и других белков плазмы. Считалось, что это увеличение было связано с образованием более крупных агрегатов эритроцитов (эритроцитов), вызванных увеличением фибриногена. Действительно, фибриноген является агентом, способствующим агрегации эритроцитов, и в режиме Стокса, который, как предполагается, наблюдается в крови, более крупные агрегаты откладываются быстрее. Однако все модели измерений ЭПР, основанные на этой гипотезе, требуют дополнительных специфических физических допущений, не требуемых ни в одной другой системе. Кроме того, современные исследования в области коллоидных суспензий установили, что притягивающие частицы образуют просачивающиеся агрегаты (т.е. агрегаты шириной с контейнер). Оседание этих коллоидов затем следует за так называемым «коллапсом коллоидного геля». Недавно было показано, что эритроциты на самом деле следуют тому же поведению. Эта гипотеза также позволяет эффективно и аналитически смоделировать кривую седиментации эритроцитов, из которой могут быть извлечены надежные и физически значимые дескрипторы. В этой рукописи описывается, как выполнить такой анализ, и обсуждаются преимущества этого подхода.

Introduction

Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) является медицинским клиническим инструментом in vitro, официально введенным в доказательную медицину в двадцатом веке 1,2,3,4. В настоящее время он используется во всем мире в качестве неспецифического воспалительного теста или для мониторинга развития некоторых специфических состояний 5,6,7,8. В основном это связано с увеличением концентрации фибриногена, а также других компонентов плазмы, таких как IgM 1,9,10,11. Согласно действующему стандартному протоколу Вестергрена, значения СОЭ сообщаются как измерение бесклеточного слоя плазмы в заданный момент времени (30 мин или 1 ч) после оставления вертикальной пробирки типичного размера 20 см по вертикали в состоянии покоя12. Однако этот метод измерения подвергся критике, поскольку сообщалось о качественно различных стадиях процесса осаждения, включая задержку перед достижением максимальной скорости осаждения13. Эта задержка длится более 1 ч примерно у половины здоровыхобразцов14. Скорость во время этой фазы подчиняется иному масштабированию, чем во время второй, более быстрой фазы осаждения15. Ограничение считывания средней скоростью осаждения в течение первого часа затем сравнивает различную смесь различных свойств крови у разных людей.

Более того, недавно было продемонстрировано, что обычные теоретические соображения, лежащие в основе этого протокола, были ошибочными16,17,18. При физиологическом гематокрите (выше примерно 25%) эритроциты (эритроциты) осаждаются не как отдельные агрегаты, а скорее как непрерывная, так называемая перколяционная сеть эритроцитов 17,18, подчиняющаяся другому набору физических уравнений, чем обычно упоминаемое седиментацияСтокса 16,17. Было показано, что рассмотрение физического описания, основанного на измерениях седиментации (всей кривой) с временным разрешением, было более надежным в некоторых новых медицинских контекстах19,20. Более того, эти измерения могут быть использованы, чтобы пролить свет на физические механизмы, изменяющие СОЭ при патологиях, при которых изменяются формы клеток19,20. Кроме того, медленная СОЭ может иметь полезную медицинскую интерпретацию, как указано в измерениях когорты пациентов с синдромом нейроакантоцитоза19,20. В данной статье рассматривается, как практически реализовать измерение физико-значимых параметров, основанных на кинетике всей СОЭ. Более точно, представленный здесь метод извлекает максимальную скорость седиментации Um, значение которой можно скорректировать, чтобы учесть влияние гематокрита донора16,17. Этот параметр является более точным и, следовательно, более надежным, чем традиционное измерение16,17,19,20.

Кроме того, в некоторых фундаментальных исследованиях вместо мониторинга воспалительного состояния данного пациента интересно исключить влияние гематокрита на СОЭ 21,22,23 или исследовать роль эритроцитов в модифицированной СОЭ 19,20,24,25 между разными донорами. Может быть полезно сравнить образцы, которые не являются непосредственно полными образцами крови пациентов. Таким образом, ресуспендирование эритроцитов контролируемым гематокритом в аутологичной плазме или в плазменном заместителе может быть использовано в качестве первого этапа измерения СОЭ. Например, растворы декстрана 70 кДа с концентрацией 55 мг/мл в фосфатном буферном физиологическом растворе (PBS) дают диапазон осаждения в пределах контрольного диапазона для здоровых клеток19. В этой рукописи также показано, как должны проводиться такие шаги, и что представленный анализ также актуален в этих случаях.

Protocol

Сбор образцов крови и эксперименты были одобрены «Ärztekammer des Saarlandes», ethics votum 51/18, и проводились после получения информированного согласия в соответствии с Хельсинкской декларацией. Стандартные измерения следует проводить с этилендиаминтетрауксусной кислотой (ЭДТА) – антикоагулянтной к?…

Representative Results

Пример правильно полученной последовательности изображений приведен в виде дополнительного фильма 1 (MovieS1.avi). Ряд характерных подгонок модели показан для различных условий на рисунке 2. Концентрацию фибриногена определяли по концентрации фибриногена в плазме…

Discussion

Для эффективной работы автоматизированного протокола важно иметь четкий фон и правильное освещение. Темный фон может препятствовать существованию эффективного порога бинаризации. Для образцов с некоторым гемолизом, который обычно происходит (увеличивается) с течением времени, важно…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана исследовательским подразделением FOR 2688 – Wa1336/12 Немецкого научно-исследовательского общества и грантовым соглашением Марии Склодовской-Кюри No 860436-EVIDENCE. Т. Д. и К. В. признают финансирование со стороны Французско-немецкого университета (DFH/UFA). A. D. признает финансирование грантом для молодых исследователей Саарского университета.

Materials

Anticoagulant (EDTA or Heparin) tube (for blood sample) SARSTEDT 267001 or 265 Anticoagulated blood sample to characterize
Camera EOS M50 Canon Kit EF-M18-150 IS STM Any camera should work, provided that sector alimentation, connection to computer for automated shooting and adapted objective are available
Centrifuge HERMLE 302.00 V03 – Z 36 HK Requirements: at least 3000 x g ofr 7 min.
Micro-centrifuge MLW TH21 or any other way to determine the hematocrit
Micro-hematocrit capilaries Fisher scientific 11884040 or other capillaries/containers for hematocrit determination
Phosphate Buffered Saline (PBS) ThermoFisher 10010023 1x PBS, pH 7.4, 298 Osm
Pipettes (e.g. positive displacement pipette) Gilson FD10006 Pipette required to manipulate blood and/or packed cells.Other models are of course suitable, but be careful to treat blood and pakced cells as highly viscous fluids.
Wax sealing plate Hirschmann 9120101 Sealing wax for the micro-hematocrit capillaries
Westergren tubes Praxindo A9244560 Any other standard Wetsergren tube should work too
White background with illumination / / White sheet(s) of paper behind the samples, with usual room light is perfcetly sufficient.

Referências

  1. Bedell, S. E., Bush, B. T. Erythrocyte sedimentation rate. From folklore to facts. The American Journal of Medicine. 78, 1001-1009 (1985).
  2. Grzybowski, A., Sak, J. Edmund Biernacki (1866-1911): Discoverer of the erythrocyte sedimentation rate. On the 100th anniversary of his death. Clinics in Dermatology. 29 (6), 697-703 (2011).
  3. Kushner, I., Mackiewicz, A. . The Acute Phase Response: An Overview. Acute Phase Proteins. , (1993).
  4. Tishkowski, K., Gupta, V. Erythrocyte Sedimentation Rate. StatPearls Publishing. , (2022).
  5. Menees, S. B., Powell, C., Kurlander, J., Goel, A., Chey, W. D. A meta-analysis of the utility of C-reactive protein, erythrocyte sedimentation rate, fecal calprotectin, and fecal lactoferrin to exclude inflammatory bowel disease in adults with IBS. The Americal Journal of Gastroenterology. 110 (3), 444-454 (2015).
  6. Brigden, M. L. Clinical utility of the erythrocyte sedimentation rate. Americal Family Physician. 60 (5), 1443-1450 (1999).
  7. Liu, S., et al. Preliminary case-control study to evaluate diagnostic values of C-reactive protein and erythrocyte sedimentation rate in differentiating active Crohn’s disease from intestinal lymphoma, intestinal tuberculosis and Behcet’s syndrome. The American Journal of the Medical Sciences. 346 (6), 467-472 (2013).
  8. Greidanus, N. V., et al. Use of erythrocyte sedimentation rate and C-reactive protein level to diagnose infection before revision total knee arthroplasty: A prospective evaluation. The Journal of Bone and Joint Surgery. 89 (7), 1409-1416 (2007).
  9. Flormann, D., Kuder, E., Lipp, P., Wagner, C., Kaestner, L. Is there a role of C-reactive protein in red blood cell aggregation. International Journal of Laboratory Hematology. 37 (4), 474-482 (2015).
  10. Brust, M., et al. The plasma protein fibrinogen stabilizes clusters of red blood cells in microcapillary flows. Scientific Reports. 4, 4348 (2014).
  11. Gray, S. J., Mitchell, E. B., Dick, G. F. Effect of purified protein fractions on sedimentation rate of erythrocytes. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 51 (3), 403-404 (1942).
  12. Kratz, A., et al. ICSH recommendations for modified and alternate methods measuring the erythrocyte sedimentation rate. International Journal of Laboratory Hematology. 39 (5), 448-457 (2017).
  13. Hung, W. T., Collings, A. F., Low, J. Erythrocyte sedimentation rate studies in whole human blood. Physics in Medicine and Biology. 39 (11), 1855-1873 (1994).
  14. Woodland, N. B., Cordatos, K., Hung, W. T., Reuben, A., Holley, L. Erythrocyte sedimentation in columns and the significance of ESR. Biorheology. 33 (6), 477-488 (1996).
  15. Holley, L., Woodland, N., Hung, W. T., Cordatos, K., Reuben, A. Influence of fibrinogen and haematocrit on erythrocyte sedimentation kinetics. Biorheology. 36 (4), 287-297 (1999).
  16. Dasanna, A. K., et al. Erythrocyte sedimentation: Effect of aggregation energy on gel structure during collapse. Physical Review. E. 105 (2-1), 024610 (2022).
  17. Darras, A., et al. Erythrocyte sedimentation: collapse of a high-volume-fraction soft-particle gel. Physical Review Letters. 128 (8), 088101 (2022).
  18. Darras, A., et al. Imaging erythrocyte sedimentation in whole blood. Frontiers in Physiology. 12, 729191 (2022).
  19. Darras, A., et al. Acanthocyte sedimentation rate as a diagnostic biomarker for neuroacanthocytosis syndromes: Experimental evidence and physical justification. Cells. 10 (4), 788 (2021).
  20. Rabe, A., et al. The erythrocyte sedimentation rate and its relation to cell shape and rigidity of red blood cells from chorea-acanthocytosis patients in an off-label treatment with dasatinib. Biomolecules. 11 (5), 727 (2021).
  21. Giavarina, D., Capuzzo, S., Pizzolato, U., Soffiati, G. Length of erythrocyte sedimentation rate (ESR) adjusted for the hematocrit: reference values for the TEST 1 method. Clinical Laboratory. 52 (5-6), 241-245 (2006).
  22. Bull, B. S. Is a standard ESR possible. Laboratory Medicine. 6 (11), 31-39 (1975).
  23. Bull, B. S., Brecher, G. An evaluation of the relative merits of the Wintrobe and Westergren sedimentation methods, including hematocrit correction. American Journal of Clinical Pathology. 62 (4), 502-510 (1974).
  24. Reinhart, W. H., Singh, A., Straub, P. W. Red blood cell aggregation and sedimentation: the role of the cell shape. British Journal of Haematology. 73 (4), 551-556 (1989).
  25. Jan, K., Usami, S., Smith, J. A. Influence of oxygen tension and hematocrit reading on ESRs of sickle cells: Role of RBC aggregation. Archives of Internal Medicine. 141 (13), 1815-1818 (1981).
  26. Issaq, H. J., Xiao, Z., Veenstra, T. D. Serum and plasma proteomics. Chemical Reviews. 107 (8), 3601-3620 (2007).
  27. Yu, Z., et al. Differences between human plasma and serum metabolite profiles. PLoS One. 6 (7), 21230 (2011).
  28. . Proper Pipetting Techniques – DE Available from: https://www.thermofisher.com/de/de/home/life-science/lab-plasticware-supplies/lab-plasticware-supplies-learning-center/lab-plasticware-supplies-resource-library/fundamentals-of-pipetting/proper-pipetting-techniques.html (2023)
  29. Otsu, N. A threshold selection method from gray-level histograms. IEEE Transaction on Systems, Man, and Cybernetics. 9 (1), 62-66 (1979).
  30. Solomon, C., et al. A comparison of fibrinogen measurement methods with fibrin clot elasticity assessed by thromboelastometry, before and after administration of fibrinogen concentrate in cardiac surgery patients. Transfusion. 51 (8), 1695-1706 (2011).
  31. Norouzi, N., Bhakta, H. C., Grover, W. H. Sorting cells by their density. PLoS One. 12 (7), 0180520 (2017).
  32. Trudnowski, R. J., Rico, R. C. Specific gravity of blood and plasma at 4 and 37 degrees C. Clinical Chemistry. 20 (5), 615-616 (1974).
  33. Késmárky, G., Kenyeres, P., Rábai, M., Tóth, K. Plasma viscosity: A forgotten variable. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 39 (1-4), 243-246 (2008).
  34. Teece, L. J., et al. Gels under stress: The origins of delayed collapse. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. 458, 126-133 (2014).
  35. Lindström, S. B., Kodger, T. E., Sprakel, J., Weitz, D. A. Structures, stresses, and fluctuations in the delayed failure of colloidal gels. Soft Matter. 8 (13), 3657-3664 (2012).
  36. Bartlett, P., Teece, L. J., Faers, M. A. Sudden collapse of a colloidal gel. Physical Review. E, Statistical, Nonlinear, and Soft Matter Physics. 85, 021404 (2012).
check_url/pt/64502?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Darras, A., John, T., Wagner, C., Kaestner, L. Erythrocyte Sedimentation Rate: A Physics-Driven Characterization in a Medical Context. J. Vis. Exp. (193), e64502, doi:10.3791/64502 (2023).

View Video