Denne protokollen beskriver etablering av et murine colonic organoid system for å studere aktiviteten og funksjonen til kolonstamceller i en claudin-7 knockout-modell.
Tarmepitelet regenereres hver 5-7 dag, og styres av populasjonen av tarmepitelstamceller (IESC) som ligger nederst i kryptområdet. IESCs inkluderer aktive stamceller, som selvfornyer og differensierer i ulike epitelcelletyper, og hvilende stamceller, som fungerer som reserve stamceller i tilfelle skade. Regenerering av tarmepitelet styres av de selvfornyende og differensierende egenskapene til disse aktive IESC-ene. I tillegg er balansen mellom kryptstamcellepopulasjonen og vedlikehold av stamcellenisjen avgjørende for intestinal regenerering. Organoidkultur er en viktig og attraktiv tilnærming til å studere proteiner, signalmolekyler og miljømessige signaler som regulerer stamcelleoverlevelse og funksjoner. Denne modellen er billigere, mindre tidkrevende og mer manipulerbar enn dyremodeller. Organoider etterligner også vevets mikromiljø, og gir in vivo relevans. Den nåværende protokollen beskriver isoleringen av kolonkrypter, innebygging av disse isolerte kryptcellene i et tredimensjonalt gelmatrisesystem og dyrking av kryptceller for å danne kolonorganoider som er i stand til selvorganisasjon, spredning, selvfornyelse og differensiering. Denne modellen gjør det mulig å manipulere miljøet – slå ut spesifikke proteiner som claudin-7, aktivere / deaktivere signalveier, etc. – for å studere hvordan disse effektene påvirker funksjonen av kolonstamceller. Spesielt ble rollen som tett kryssprotein claudin-7 i kolon stamcellefunksjon undersøkt. Claudin-7 er viktig for å opprettholde intestinal homeostase og barrierefunksjon og integritet. Knockout av claudin-7 hos mus induserer en inflammatorisk tarmsykdomslignende fenotype som utviser tarmbetennelse, epitelhyperplasi, vekttap, slimhinnesår, epitelcellesloughing og adenomer. Tidligere ble det rapportert at claudin-7 er nødvendig for tarmepitelial stamcellefunksjoner i tynntarmen. I denne protokollen er et kolonorganoidkultursystem etablert for å studere rollen som claudin-7 i tyktarmen.
Intestinal organoidkultur er et tredimensjonalt (3D) ex vivo-system der stamceller isoleres fra tarmkryptene i primærvev og belagt i en gelmatrise 1,2. Disse stamcellene er i stand til selvfornyelse, selvorganisering og organfunksjonalitet2. Organoider etterligner vevsmikromiljøet og ligner mer på in vivo-modeller enn todimensjonale (2D) in vitro cellekulturmodeller, selv om de er mindre manipulerbare enn celler 3,4. Denne modellen eliminerer hindringer som oppstår i 2D-modeller, for eksempel mangel på riktig celle-celle-adhesjoner, celle-matrise-interaksjoner og homogene populasjoner, og reduserer også begrensningene i dyremodeller, inkludert høye kostnader og lange tidsperioder5. Intestinale organoider – også referert til som kolonoider for de som vokser fra kolonkryptavledede stamceller – er i hovedsak miniorganer som inneholder et epitel, inkludert alle celletyper som ville være tilstede in vivo, samt et lumen. Denne modellen tillater manipulering av systemet for å studere mange aspekter av tarmen, for eksempel stamcellenisje, tarmfysiologi, patofysiologi og tarmmorfogenese 3,5,6. Det gir også en flott modell for narkotikaforskning, studerer menneskelige tarmlidelser som inflammatorisk tarmsykdom (IBD) og kolorektal kreft, pasientspesifikk personlig behandlingsutvikling og studerer vevregenerering 4,7,8,9. I tillegg kan organoidsystemet også brukes til å studere cellulær kommunikasjon, stoffmetabolisme, levedyktighet, spredning og respons på stimuli 7,8. Mens dyremodeller kan brukes til å teste potensielle terapier for intestinale patologiske forhold, er de ganske begrensede, da det er en utfordring å studere flere stoffer samtidig. Det er flere forvirrende variabler in vivo, og tilhørende kostnader og tid er henholdsvis høye og lange. På den annen side tillater organoidkultursystemet screening av mange terapier samtidig i en kortere tidsperiode og tillater også personlig behandling ved bruk av pasientavledet organoidkultur 4,8. Evnen til kolonorganoider til å etterligne vevsorganisasjon, mikromiljø og funksjonalitet gjør dem også til en utmerket modell for å studere regenerering og vevsreparasjon9. Vårt laboratorium har etablert et tynntarmorganoidkultursystem for å studere effekten av claudin-7 på tynntarmens stamcellefunksjoner10. I denne studien er et stort intestinal organoidkultursystem etablert for å studere stamcellers evne, eller mangel på evne, til selvfornyelse, differensiering og spredning i en betinget claudin-7 knockout (cKO) modell.
Claudin-7 er et svært viktig tett kryss (TJ) protein som er sterkt uttrykt i tarmen og er avgjørende for å opprettholde TJ-funksjon og integritet11. cKO-mus lider av en IBD-lignende fenotype, som viser alvorlig betennelse, sårdannelser, epitelcelle-sloughing, adenomer og økte cytokinnivåer11,12. Selv om det er allment akseptert at claudiner er avgjørende for epitelbarrierefunksjon, dukker det opp nye roller for claudiner; De er involvert i spredning, migrasjon, kreftprogresjon og stamcellefunksjon 10,12,13,14,15,16,17. Det er foreløpig ukjent hvordan claudin-7 påvirker stamcellenisjen og funksjonen til kolonstamceller. Siden tarmen raskt fornyes omtrent hver 5-7 dag, er vedlikehold av stamcellenisjen og riktig funksjon av de aktive stamcellene avgjørende18. Her etableres et system for å undersøke de potensielle regulatoriske effektene av claudin-7 på colonic stamcelle nisje.
Organoidkultur er en utmerket modell for å studere stamcellefunksjon, tarmfysiologi, narkotikaforskning, menneskelige tarmsykdommer og vevregenerering og reparasjon 7,8,9,10,11,26. Selv om det har mange fordeler, kan det være utfordrende å etablere. Det må utvises forsiktighet i alle trinn gjennom protokollen, men viktigs…
The authors have nothing to disclose.
Denne studien ble finansiert av NIH DK103166.
0.09 cubic feet space-saver vacuum desiccator | United States Plastic Corp | 78564 | anesthesia chamber |
0.5 M EDTA pH 8.0 | Invitrogen | AM9261 | |
1.5 mL microcentrifuge tubes | ThermoFisher | 69715 | |
15 mL conical centrifuge tubes | Fisher Scientific | 14-959-53A | |
1x Dulbecco’s Phosphate buffered saline | Gibco | 14190-144 | |
2-methylbutane | Sigma | 277258 | |
4% paraformaldehyde | ThermoFisher | J61899.AK | |
4-hydroxytamoxifen (4OH-TAM) | Sigma | 579002 | |
50 mL conical centrifuge tubes | Fisher Scientific | 14-432-22 | |
70 µm nylon cell strainer | Corning | 352350 | |
96 well culture plate | Greiner Bio-One | 655180 | |
B-27 Supplement (50x) | Gibco | 12587-010 | |
Bovine serum albumin | Fisher Scientific | BP1605-100 | |
Claudin-7 anti-murine rabbit antibody | Immuno-Biological Laboratories | 18875 | |
Cover glass (24 x 50-1.5) | Fisher Scientific | 12544E | |
Cryomolds | vwr | 25608-916 | |
Cultrex RCF BME, Type 2 | R&D Systems | 3533-005-02 | gel matrix |
Cy3 anti-rabbit antibody | Jackson Immunoresearch | 111-165-003 | |
Dewar Flask | Thomas Scientific | 1173F61 | |
DMEM High Glucose with L-Glutamine | ATCC | 30-2002 | |
EVOS FLoid Imaging System | ThermoFisher | 4477136 | |
Fluoro-Gel II with DAPI | Electron Microscopy Sciences | 17985-50 | |
GlutaMAX (100x) | Gibco | 35050-061 | |
Glycine | JT Baker | 4059-02 | |
HEPES (1 M) Buffer Solution | Gibco | 15630-080 | |
Hoechst | ThermoFisher | 62249 | |
In situ cell death detection kit, TMR Red | Roche | 12156792910 | |
Isoflurane | Pivetal | 07-893-8440 | |
L-WRN Media | Harvard Medical School Gastrointestinal Organoid Derivation and Culture Core | N/A | |
Mouse surgical kit | Kent Scientific Corporation | INSMOUSEKIT | |
Murine EGF | PeproTech | 315-09-500UG | |
N2 Supplement (100x) | Gibco | 17502-048 | |
Optimum cutting temperature (OCT) compound | Agar Scientific | AGR1180 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140-122 | |
Sequenza Rack | vwr | 10129-584 | |
Sodium Citrate | Fisher Scientific | S-279 | |
Sucrose | Sigma | S9378 | |
Triton X-100 | Sigma | X100 | |
Vacuum filter (0.22 µm; cellulose acetate) | Corning | 430769 | |
Y-27632 dihydrochloride | Tocris Bioscience | 1254 |