Summary

Tredimensjonal kultur av Murine Colonic krypter for å studere intestinal stamcellefunksjon ex vivo

Published: October 11, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver etablering av et murine colonic organoid system for å studere aktiviteten og funksjonen til kolonstamceller i en claudin-7 knockout-modell.

Abstract

Tarmepitelet regenereres hver 5-7 dag, og styres av populasjonen av tarmepitelstamceller (IESC) som ligger nederst i kryptområdet. IESCs inkluderer aktive stamceller, som selvfornyer og differensierer i ulike epitelcelletyper, og hvilende stamceller, som fungerer som reserve stamceller i tilfelle skade. Regenerering av tarmepitelet styres av de selvfornyende og differensierende egenskapene til disse aktive IESC-ene. I tillegg er balansen mellom kryptstamcellepopulasjonen og vedlikehold av stamcellenisjen avgjørende for intestinal regenerering. Organoidkultur er en viktig og attraktiv tilnærming til å studere proteiner, signalmolekyler og miljømessige signaler som regulerer stamcelleoverlevelse og funksjoner. Denne modellen er billigere, mindre tidkrevende og mer manipulerbar enn dyremodeller. Organoider etterligner også vevets mikromiljø, og gir in vivo relevans. Den nåværende protokollen beskriver isoleringen av kolonkrypter, innebygging av disse isolerte kryptcellene i et tredimensjonalt gelmatrisesystem og dyrking av kryptceller for å danne kolonorganoider som er i stand til selvorganisasjon, spredning, selvfornyelse og differensiering. Denne modellen gjør det mulig å manipulere miljøet – slå ut spesifikke proteiner som claudin-7, aktivere / deaktivere signalveier, etc. – for å studere hvordan disse effektene påvirker funksjonen av kolonstamceller. Spesielt ble rollen som tett kryssprotein claudin-7 i kolon stamcellefunksjon undersøkt. Claudin-7 er viktig for å opprettholde intestinal homeostase og barrierefunksjon og integritet. Knockout av claudin-7 hos mus induserer en inflammatorisk tarmsykdomslignende fenotype som utviser tarmbetennelse, epitelhyperplasi, vekttap, slimhinnesår, epitelcellesloughing og adenomer. Tidligere ble det rapportert at claudin-7 er nødvendig for tarmepitelial stamcellefunksjoner i tynntarmen. I denne protokollen er et kolonorganoidkultursystem etablert for å studere rollen som claudin-7 i tyktarmen.

Introduction

Intestinal organoidkultur er et tredimensjonalt (3D) ex vivo-system der stamceller isoleres fra tarmkryptene i primærvev og belagt i en gelmatrise 1,2. Disse stamcellene er i stand til selvfornyelse, selvorganisering og organfunksjonalitet2. Organoider etterligner vevsmikromiljøet og ligner mer på in vivo-modeller enn todimensjonale (2D) in vitro cellekulturmodeller, selv om de er mindre manipulerbare enn celler 3,4. Denne modellen eliminerer hindringer som oppstår i 2D-modeller, for eksempel mangel på riktig celle-celle-adhesjoner, celle-matrise-interaksjoner og homogene populasjoner, og reduserer også begrensningene i dyremodeller, inkludert høye kostnader og lange tidsperioder5. Intestinale organoider – også referert til som kolonoider for de som vokser fra kolonkryptavledede stamceller – er i hovedsak miniorganer som inneholder et epitel, inkludert alle celletyper som ville være tilstede in vivo, samt et lumen. Denne modellen tillater manipulering av systemet for å studere mange aspekter av tarmen, for eksempel stamcellenisje, tarmfysiologi, patofysiologi og tarmmorfogenese 3,5,6. Det gir også en flott modell for narkotikaforskning, studerer menneskelige tarmlidelser som inflammatorisk tarmsykdom (IBD) og kolorektal kreft, pasientspesifikk personlig behandlingsutvikling og studerer vevregenerering 4,7,8,9. I tillegg kan organoidsystemet også brukes til å studere cellulær kommunikasjon, stoffmetabolisme, levedyktighet, spredning og respons på stimuli 7,8. Mens dyremodeller kan brukes til å teste potensielle terapier for intestinale patologiske forhold, er de ganske begrensede, da det er en utfordring å studere flere stoffer samtidig. Det er flere forvirrende variabler in vivo, og tilhørende kostnader og tid er henholdsvis høye og lange. På den annen side tillater organoidkultursystemet screening av mange terapier samtidig i en kortere tidsperiode og tillater også personlig behandling ved bruk av pasientavledet organoidkultur 4,8. Evnen til kolonorganoider til å etterligne vevsorganisasjon, mikromiljø og funksjonalitet gjør dem også til en utmerket modell for å studere regenerering og vevsreparasjon9. Vårt laboratorium har etablert et tynntarmorganoidkultursystem for å studere effekten av claudin-7 på tynntarmens stamcellefunksjoner10. I denne studien er et stort intestinal organoidkultursystem etablert for å studere stamcellers evne, eller mangel på evne, til selvfornyelse, differensiering og spredning i en betinget claudin-7 knockout (cKO) modell.

Claudin-7 er et svært viktig tett kryss (TJ) protein som er sterkt uttrykt i tarmen og er avgjørende for å opprettholde TJ-funksjon og integritet11. cKO-mus lider av en IBD-lignende fenotype, som viser alvorlig betennelse, sårdannelser, epitelcelle-sloughing, adenomer og økte cytokinnivåer11,12. Selv om det er allment akseptert at claudiner er avgjørende for epitelbarrierefunksjon, dukker det opp nye roller for claudiner; De er involvert i spredning, migrasjon, kreftprogresjon og stamcellefunksjon 10,12,13,14,15,16,17. Det er foreløpig ukjent hvordan claudin-7 påvirker stamcellenisjen og funksjonen til kolonstamceller. Siden tarmen raskt fornyes omtrent hver 5-7 dag, er vedlikehold av stamcellenisjen og riktig funksjon av de aktive stamcellene avgjørende18. Her etableres et system for å undersøke de potensielle regulatoriske effektene av claudin-7 på colonic stamcelle nisje.

Protocol

Alle dyreforsøk og prosedyrer ble godkjent av East Carolina University (ECU) Animal Care and Use Committee (IACUC) og utført i samsvar med retningslinjer fra National Institutes of Health og ECU om pleie og bruk av forsøksdyr. Induserbare, tarmspesifikke claudin-7 knockoutmus ble generert ved å krysse C57BL6 claudin-7-flox transgene mus med Villin-CreERT2 mus19. Hann- og hunnmus i alderen 3 måneder ble brukt i denne studien. 1. Klargjøring av reagens/utstyr<…

Representative Results

For å undersøke reguleringseffektene av claudin-7 på kolonstamceller ble kolonkrypter isolert fra murine kolonvev som beskrevet ovenfor og vist i figur 1A. Når kryptene var isolert fra primærvevet, ble de belagt i en 3D-matrise i en 96-brønnsplate for å vokse i 11 dager (figur 1). Normale friske krypter vil lukke lumen og bli sfæroider innen dag 2 og til slutt begynne å spire og danne de forskjellige epitelcelletypene omtrent på dag 5 (<strong class="x…

Discussion

Organoidkultur er en utmerket modell for å studere stamcellefunksjon, tarmfysiologi, narkotikaforskning, menneskelige tarmsykdommer og vevregenerering og reparasjon 7,8,9,10,11,26. Selv om det har mange fordeler, kan det være utfordrende å etablere. Det må utvises forsiktighet i alle trinn gjennom protokollen, men viktigs…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble finansiert av NIH DK103166.

Materials

0.09 cubic feet space-saver vacuum desiccator  United States Plastic Corp 78564 anesthesia chamber
0.5 M EDTA pH 8.0 Invitrogen AM9261
1.5 mL microcentrifuge tubes ThermoFisher 69715
15 mL conical centrifuge tubes Fisher Scientific 14-959-53A
1x Dulbecco’s Phosphate buffered saline Gibco 14190-144
2-methylbutane Sigma 277258
4% paraformaldehyde ThermoFisher J61899.AK
4-hydroxytamoxifen (4OH-TAM) Sigma 579002
50 mL conical centrifuge tubes Fisher Scientific 14-432-22
70 µm nylon cell strainer Corning 352350
96 well culture plate Greiner Bio-One 655180
B-27 Supplement (50x) Gibco 12587-010
Bovine serum albumin Fisher Scientific BP1605-100
Claudin-7 anti-murine rabbit antibody Immuno-Biological Laboratories  18875
Cover glass (24 x 50-1.5) Fisher Scientific 12544E
Cryomolds vwr 25608-916
Cultrex RCF BME, Type 2 R&D Systems 3533-005-02 gel matrix
Cy3 anti-rabbit antibody Jackson Immunoresearch 111-165-003
Dewar Flask Thomas Scientific 1173F61
DMEM High Glucose with L-Glutamine ATCC 30-2002
EVOS FLoid Imaging System ThermoFisher 4477136
Fluoro-Gel II with DAPI Electron Microscopy Sciences 17985-50
GlutaMAX (100x) Gibco 35050-061
Glycine JT Baker 4059-02
HEPES (1 M) Buffer Solution Gibco 15630-080
Hoechst ThermoFisher 62249
In situ cell death detection kit, TMR Red Roche 12156792910
Isoflurane Pivetal 07-893-8440
L-WRN Media Harvard Medical School Gastrointestinal Organoid Derivation and Culture Core N/A
Mouse surgical kit Kent Scientific Corporation INSMOUSEKIT
Murine EGF PeproTech 315-09-500UG
N2 Supplement (100x) Gibco 17502-048
Optimum cutting temperature (OCT) compound  Agar Scientific AGR1180
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
Sequenza Rack vwr 10129-584
Sodium Citrate Fisher Scientific S-279
Sucrose Sigma S9378
Triton X-100 Sigma X100
Vacuum filter (0.22 µm; cellulose acetate) Corning 430769
Y-27632 dihydrochloride Tocris Bioscience 1254

Referências

  1. Hughes, C. S., Postovit, L. M., Lajoie, G. A. Matrigel: a complex protein mixture required for optimal growth of cell culture. Proteomics. 10 (9), 1886-1890 (2010).
  2. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology. 141 (5), 1762-1772 (2011).
  3. Wallach, T. E., Bayrer, J. R. Intestinal organoids: new frontiers in the study of intestinal disease and physiology. Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition. 64 (2), 180-185 (2017).
  4. Shankaran, A., Prasad, K., Chaudhari, S., Brand, A., Satyamoorthy, K. Advances in development and application of human organoids. 3 Biotech. 11 (6), 257 (2021).
  5. Angus, H., Butt, A., Schultz, M., Kemp, R. Intestinal organoids as a tool for inflammatory bowel disease research. Frontiers in Medicine. 6, 334 (2020).
  6. Fan, Y., Davidson, L. A., Chapkin, R. S. Murine colonic organoid culture system and down stream assay applications. Methods in Molecular Biology. 1576, 171-181 (2019).
  7. Gupta, N., et al. Microfluidics-based 3D cell culture models: Utility in novel drug discovery and delivery research. Bioengineering and Translational Medicine. 1 (1), 63-81 (2016).
  8. Yoo, J., Donowitz, M. Intesitnal enteroids/organoids: A novel platform for drug discovery in inflammatory bowel diseases. World Journal of Gastroenterology. 25 (30), 4125-4147 (2019).
  9. Qu, M., et al. Establishment of intestinal organoid cultures modeling injury-associated epithelial regeneration. Cell Research. 31 (3), 259-271 (2021).
  10. Xing, T., et al. Tight junction protein claudin-7 is essential for intestinal epithelial stem cell self-renewal and differentiation. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 9 (4), 641-659 (2020).
  11. Ding, L., et al. Inflammation and disruption of the mucosal architecture in claudin-7-deficient mice. Gastroenterology. 142 (2), 305-315 (2012).
  12. Lu, Z., Ding, L., Lu, Q., Chen, Y. H. Claudins in intestines: distribution and functional significance in health and diseases. Tissue Barriers. 1 (3), 24978 (2013).
  13. Ding, L., Lu, Z., Lu, Q., Chen, Y. H. The claudin family of proteins in human malignancy: a clinical perspective. Cancer Management and Research. 5, 367-375 (2013).
  14. Bhat, A. A., et al. Claudin-7 expression induces mesenchymal to epithelial transformation (MET) to inhibit colon tumorigenesis. Oncogene. 34 (35), 4570-4580 (2015).
  15. Lu, Z., et al. A non-tight junction function of claudin-7-interaction with integrin signaling in suppressing lung cancer cell proliferation and detachement. Molecular Cancer. 14, 120 (2015).
  16. Wang, K., Xu, C., Li, W., Ding, L. Emerging clinical significance of claudin-7 in colorectal cancer: a review. Cancer Management and Research. 10, 3741-3752 (2018).
  17. Wang, K., et al. Claudin-7 downregulation induces metastasis and invasion in colorectal cancer via the promotion of epithelial-mesenchymal transition. Biochemical and Biophysical Research Communications. 508 (3), 797-804 (2019).
  18. Wang, F., et al. Isolation and characterization of intestinal stem cells based on surface marker combinations and colony-formation assay. Gastroenterology. 145 (2), 383 (2013).
  19. Li, W., et al. Severe intestinal inflammation in the small intestine of mice induced by controllable deletion of claudin-7. Digestive Diseases and Sciences. 63 (5), 1200-1209 (2018).
  20. Donovan, J., Brown, P. Euthanasia. Current Protocols in Immunology. 73 (1), (2006).
  21. Khalil, H., Nie, W., Edwards, R. A., Yoo, J. Isolation of primary myofibroblasts from mouse and human colon tissue. Journal of Visual Experiments. (80), e50611 (2013).
  22. Sugimoto, K., et al. Cell adhesion signals regulate the nuclear receptor activity. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (49), 24600-24609 (2019).
  23. Mansour, H., et al. Connexin 30 expression and frewuency of connexin heterogeneity in astrocyte gap junction plaques increase with age in the rat retina. PLoS One. 8 (3), 57038 (2013).
  24. Miranda, M., et al. Antioxidants rescue photoreceptors in rd1 mice: relationship with thiol metabolism. Free Radical Biology and Medicine. 48 (2), 216-222 (2010).
  25. Wang, L., et al. Mesenchymal stromal cells ameliorate oxidative stress-induced islet endothelium apoptosis and functional impairment via Wnt4-β-catenin signaling. Stem Cell Research and Therapy. 8 (1), 188 (2017).
  26. Almeqdadi, M., Mana, M., Roper, J., Yilmaz, O. Gut organoids: mini-tissues in culture to study intestinal physiology and disease. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 317 (3), 405-419 (2019).

Play Video

Citar este artigo
Naser, A. N., Lu, Q., Chen, Y. Three-Dimensional Culture of Murine Colonic Crypts to Study Intestinal Stem Cell Function Ex Vivo. J. Vis. Exp. (188), e64534, doi:10.3791/64534 (2022).

View Video