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Artigo de método

Uso de microscopia Time-Lapse e Depleção Nuclear Específica de Estágio de Proteínas para Estudo da Meiose em S. cerevisiae

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DOI:

10.3791/64580

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11 de outubro de 2022

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* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

A microscopia de lapso de tempo é uma ferramenta valiosa para estudar a meiose em leveduras em brotamento. Este protocolo descreve um método que combina sincronização do ciclo celular, microscopia de lapso de tempo e depleção condicional de uma proteína-alvo para demonstrar como estudar a função de uma proteína específica durante a segregação cromossômica meiótica.

Resumo

A microscopia de fluorescência de lapso de tempo revolucionou a compreensão dos eventos do ciclo celular meiótico, fornecendo dados temporais e espaciais que muitas vezes não são vistos por imagens de células fixas. A levedura em brotamento provou ser um importante organismo modelo para estudar a segregação cromossômica meiótica, porque muitos genes meióticos são altamente conservados. A microscopia de lapso de tempo da meiose em levedura em brotamento permite o monitoramento de diferentes mutantes meióticos para mostrar como a mutação interrompe os processos meióticos. No entanto, muitas proteínas funcionam em vários pontos da meiose. O uso de mutantes nulos meióticos ou meióticos pode, portanto, interromper um processo precoce, bloqueando ou perturbando o processo posterior e dificultando a determinação dos fenótipos associados a cada papel individual. Para contornar esse desafio, este protocolo descreve como as proteínas podem ser condicionalmente esgotadas do núcleo em estágios específicos da meiose enquanto monitoram eventos meióticos usando microscopia de lapso de tempo. Especificamente, este protocolo descreve como as células são sincronizadas na prófase I, como a técnica de ancoragem é usada para esgotar proteínas do núcleo em estágios meióticos específicos e como a imagem de lapso de tempo é usada para monitorar a segregação cromossômica meiótica. Como exemplo da utilidade da técnica, a proteína cinetócora Ctf19 foi esgotada do núcleo em diferentes momentos durante a meiose, e o número de massas de cromatina foi analisado no final da meiose II. No geral, este protocolo pode ser adaptado para esgotar diferentes proteínas nucleares do núcleo enquanto monitora as divisões meióticas.

Introdução

A microscopia de fluorescência time-lapse é uma ferramenta valiosa para o estudo da dinâmica da segregação cromossômica meiótica em leveduras em brotamento 1,2. As células de levedura em brotamento podem ser induzidas a sofrer meiose através da fome de nutrientes essenciais3. Durante a meiose, as células passam por uma rodada de segregação cromossômica seguida de duas divisões para criar quatro produtos meióticos que são embalados em esporos (Figura 1). Células individuais podem ser visualizadas ao longo de cada estágio da meiose, o que gera dados espaciais....

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Protocolo

1. Preparação dos materiais necessários

  1. Preparar reagentes para o crescimento e esporulação de células de levedura.
    NOTA: Se as cepas de levedura em brotamento forem ade2 - e trp1-, complemente todos os meios nas etapas 1.1.1-1.1.3 com uma concentração final de 0,01% de adenina e 0,01% de triptofano de 1% de estoques. Se o meio esterilizante por autoclave, adicione estes aminoácidos somente depois que os reagentes tiverem sido autoclavados e deixados esfriar até a temperatura ambiente.
    1. Para o crescimento vegetativo, prepare 2x meio sintético completo + dextrose (2XSC) dissolvendo 6,7 g de levedura nitrogenada base....

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Resultados

Para monitorar a segregação da cromatina, a proteína histona Htb2 foi marcada com mCherry. Na prófase I, a cromatina aparece como uma única massa de Htb2. Após os cromossomos homólogos se segregarem na primeira divisão meiótica, a cromatina aparece como duas massas distintas (Figura 3A). Depois que as cromátides irmãs se segregam, a cromatina aparece como quatro massas. Se alguns cromossomos não se ligarem aos microtúbulos fusiformes, massas adicionais podem ser vistas após a meiose I ou mei.......

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Discussão

Este protocolo combina o sistema NDT80-in para sincronizar células, a técnica de ancoragem para esgotar proteínas do núcleo e a microscopia de lapso de tempo de fluorescência para visualizar células de levedura em brotamento durante a meiose. O sistema NDT80-in é um método de sincronização do ciclo celular meiótico que utiliza uma prófase I de parada e liberação 4,8. Embora as células individuais variem ligeiramente na quantidade de tempo gasto .......

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Divulgações

Os autores declaram não haver interesses financeiros concorrentes.

Agradecimentos

Agradecemos ao Centro de Imagem de Microscopia de Luz da Universidade de Indiana. Este trabalho foi apoiado por uma bolsa dos Institutos Nacionais de Saúde (GM105755).

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
β-estradiolMillipore SigmaE8875Faça estoques de 1mM em 95% EtOH
0,22 uM Filtro de tampa de garrafa rosqueadaMillipore SigmaS2GPT02RE
100% EtOHFisher Scientific22-032-601
10X PBSFisher ScientificBP399500Diluir 1:10 para usar como solvente para
24 mm x 50 mm lamínula No. 1.5VWR Lâminas de microscópio North American48393241
25 mm x 75 mmVWR North American48300-026
Sal de hemissulfato de adeninaMillipore SigmaA9126Para complementar SC, SCA, e 1% Kac
Bacto AgarBD214030
Concanavialin AMllipore SigmaC2010Faça como 1mg/mL em 1X câmera CCD PBS
CoolSNAP HQ2Fotometriausada na seção 4.3
D-glicoseFisher ScientificD16-10
Difco Yeast Nitrogen Base sem aminoácidosBD291920
Dimetilsulfóxido (DMSO)Millipore SigmaD5879
Eclipse Ti2 microscópio de objetiva invertidaNikonUsado na seção 4.4
FijiNIHFaça o download da https://fiji.sc/
GE Personal DeltaVision MicroscopeApplied PrecisionUsed in Section 4.3
L-Triptofano Millipore SigmaT0254Para complementar SC, SCA, e 1% Kac
Massa de ModelarCrayola  2302880000Para fixar a lamínula no suporte de lâminas
NIS-Elements AR 5.30.04 Software de ImagemNikonUsado na Seção 4.4
ORCA-Fustion BT CameraHamamatsuC15440-20UPUsado na Seção 4.4
Suporte de ponta de pipeta de plásticoDot ScientificLTS1000-HRCorte uma seção quadrada de 4 x 4 quadradas da parte do rack deste produto. 
Acetato de PottassiumFisher ScientificBP264
RapamicinaFisher ScientificBP29631Faça estoques de 1mg / mL em DMSO
Selante de SiliconeAqueon100165001Também conhecido como cola de aquário.
SoftWorx7.0.0  Software de imagemPrecisãousada na Seção 4.3
Mistura Completa Sintética (Kaiser) Para óleo de imersão médioDSCK2500
tipo N NikonMXA22166
aplicada

Referências

  1. Tsuchiya, D., Gonzalez, C., Lacefield, S. The spindle checkpoint protein Mad2 regulates APC/C activity during prometaphase and metaphase of meiosis I in Saccharomyces cerevisiae. Molecular Biology of the Cell. 22 (16), 2848-2861 (2011).
  2. Cairo, G., MacKenzie, A. M., Lacefield, S.

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Reimpressões e permissões

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