Het huidige protocol beschrijft de mogelijkheden en de essentiële kweekmodaliteiten van de Open-Top Organ-Chip voor de succesvolle vestiging en rijping van organ-on-chip culturen van volledige dikte van primaire weefsels (huid, alveolus, luchtwegen en darm), waardoor de mogelijkheid wordt geboden om verschillende functionele aspecten van de menselijke epitheliale / mesenchymale en vasculaire niche-interface in vitro te onderzoeken.
Bijna alle menselijke organen zijn bekleed met epitheelweefsels, bestaande uit een of meerdere lagen van nauw verbonden cellen georganiseerd in driedimensionale (3D) structuren. Een van de belangrijkste functies van epithelia is de vorming van barrières die de onderliggende weefsels beschermen tegen fysieke en chemische beledigingen en infectieuze agentia. Bovendien bemiddelen epithelia het transport van voedingsstoffen, hormonen en andere signaalmoleculen, waardoor vaak biochemische gradiënten ontstaan die de celpositionering en compartimentering in het orgaan sturen. Vanwege hun centrale rol bij het bepalen van de structuur en functie van het orgaan, zijn epithelia belangrijke therapeutische doelen voor veel menselijke ziekten die niet altijd worden vastgelegd door diermodellen. Naast de voor de hand liggende verschillen tussen soorten, wordt het uitvoeren van onderzoek naar barrièrefunctie en transporteigenschappen van epithelia bij dieren verder verergerd door de moeilijkheid om toegang te krijgen tot deze weefsels in een levend systeem. Hoewel tweedimensionale (2D) menselijke celculturen nuttig zijn voor het beantwoorden van fundamentele wetenschappelijke vragen, leveren ze vaak slechte in vivo voorspellingen op. Om deze beperkingen te overwinnen, is in het afgelopen decennium een overvloed aan micro-engineered biomimetische platforms, bekend als organen-op-een-chip, naar voren gekomen als een veelbelovend alternatief voor traditionele in vitro en dierproeven. Hier beschrijven we een Open-Top Organ-Chip (of Open-Top Chip), een platform dat is ontworpen voor het modelleren van orgaanspecifieke epitheelweefsels, waaronder huid, longen en de darmen. Deze chip biedt nieuwe mogelijkheden voor het reconstitueren van de meercellige architectuur en functie van epitheelweefsels, inclusief de mogelijkheid om een 3D-stromale component te recreëren door weefselspecifieke fibroblasten en endotheelcellen op te nemen in een mechanisch actief systeem. Deze Open-Top Chip biedt een ongekend hulpmiddel voor het bestuderen van epitheliale / mesenchymale en vasculaire interacties op meerdere resolutieschalen, van enkele cellen tot meerlaagse weefselconstructen, waardoor moleculaire dissectie van de intercellulaire overspraak van geëpitheliseerde organen in gezondheid en ziekte mogelijk wordt.
Historisch gezien hebben wetenschappers vertrouwd op preklinische dierproeven voor het ontdekken van geneesmiddelen, maar een groeiend aantal van deze methoden is in twijfel getrokken vanwege de slechte correlatie met menselijke uitkomst1. De implementatie van de “3V’s”-principes om dierproeven te vervangen, te verminderen en te verfijnen, spoort wetenschappers aan om nieuwe in vitro alternatieve methoden te vinden ter ondersteuning van de risicobeoordeling van preklinische geneesmiddelen en chemische toxicologie2. Veel in vitro modellen die tot nu toe zijn ontwikkeld, missen echter de biologische architectuur, cellulaire complexiteit en mechanische omgeving die nodig zijn om de dynamische aard van menselijke levende organen samen te vatten 3,4.
Conventionele in vitro preklinische systemen maken meestal gebruik van 2D-monoculturen van menselijke cellen die op een stijf plastic oppervlak zijn gekweekt. Deze methoden bieden een hulpmiddel voor het uitvoeren van eenvoudige mechanistische studies en maken een snelle screening van kandidaat-geneesmiddelen mogelijk. Vanwege hun relatief lage kosten en hoge robuustheid worden 2D-modellen vaak gecombineerd met automatische high-throughput-systemen en gebruikt voor de snelle identificatie van potentiële kandidaat-geneesmiddelen in de vroege fase van het ontwikkelingsproces van geneesmiddelen 5,6. Dergelijke 2D-modellen bieden echter geen translationele benadering voor het modelleren van weefselniveau, orgaanniveau of systemische reacties op therapeutische kandidaten, wat nodig is voor nauwkeurige voorspellingen van de veiligheid en werkzaamheid van geneesmiddelen tijdens de preklinische fase van hun ontwikkeling. Platte celculturen recapituleren de inheemse weefselmicro-omgeving niet, inclusief het complexe meercellige samenspel, biomechanische eigenschappen en driedimensionale (3D) architectuur van menselijke weefsels7. Cellen die op een plat oppervlak groeien, krijgen vaak geen volwassen fenotype en kunnen daarom niet reageren op farmacologische stimuli zoals ze zouden doen in het inheemse weefsel. Primaire menselijke alveolaire epitheelcellen die in vitro zijn gekweekt, vertonen bijvoorbeeld een plaveiselfenotype en verliezen belangrijke fenotypische markers, waaronder oppervlakteactieve eiwitten C en B (SP-C en SP-B)8. Naast onvoldoende differentiatie worden primaire cellen vaak ongevoelig voor biologische stressoren in vitro, omdat bepaalde biochemische routes geassocieerd met weefselontsteking niet-functioneel worden9. Een dergelijk verlies van celfunctie lijkt voornamelijk geassocieerd te zijn met het gebruik van stijve substraten en het gebrek aan oplosbare factoren die van nature worden vrijgegeven door weefselspecifieke stromale cellen zoals longfibroblasten en gladde spiercellen10,11.
Het inzicht dat het gebrek aan chemo-fysieke en biologische complexiteit het fysiologische gedrag van cellen in vitro beperkt, heeft de ontwikkeling van meer geavanceerde meercellige modellen bevorderd, waarvan is bewezen dat ze de complexiteit van menselijke weefsels buiten het lichaam beter vastleggen12,13. Sinds de creatie van de eerste co-cultuurmodellen in de vroege jaren 197014, heeft de introductie van synthetische en natuurlijke hydrogels het vermogen om inheemse weefselmicro-omgevingen na te bootsen aanzienlijk verbeterd en is het een waardevol hulpmiddel geworden voor het stimuleren van cellulaire differentiatie, het begeleiden van de zelforganisatie van cellen in weefselachtige structuren en het herstel van inheemse weefselfuncties15,16. Wanneer menselijke cellen bijvoorbeeld in de juiste 3D-steiger worden gekweekt, kunnen ze zichzelf rangschikken in functionele structuren zoals sferoïden of organoïden, waardoor stamcelmarkers tot expressie komen en zijn ze in staat tot zelfvernieuwing17. Menselijke cellen (inclusief stamcellen) daarentegen, wanneer ze op traditionele 2D-substraten worden gekweekt, verouderen snel en ondergaan senescentie na een paar passages18. Bovendien kunnen hydrogels worden “aangepast” aan specifieke weefseleigenschappen zoals porositeit, poriegrootte, vezeldikte, visco-elasticiteit, topografie en stijfheid of verder worden ontwikkeld met weefselafgeleide cellulaire componenten en / of bioactieve moleculen die emulatie van de fysiologische of pathologische omstandigheden mogelijk maken19,20. Ondanks hun enorme potentieel voor het testen van geneesmiddelen, geven 3D-hydrogel-gebaseerde modellen die worden gebruikt in farmaceutisch onderzoek de complexe cytoarchitectuur van de in vivo weefsels niet volledig samen en missen ze belangrijke hemodynamische en mechanische stimuli die normaal aanwezig zijn in het menselijk lichaam, waaronder hydrostatische druk, cyclische rek en vloeistofafschuiving21.
Microfysiologische systemen (MPS’en) zoals Organs-on-chips (OOC’s) zijn onlangs naar voren gekomen als hulpmiddelen die in staat zijn om complexe fysiologische reacties in vitro vast te leggen 22,23. Deze modellen maken vaak gebruik van microfluïdische platforms, die het mogelijk maken om de dynamische micro-omgeving van levende organen te modelleren.
We hebben de principes van 3D-weefselbio-engineering en mechanobiologie gecombineerd om een Open-Top Chip-model van complex menselijk epitheelweefsel te creëren. Dit stelde ons in staat om de meercellige en dynamische micro-omgeving van epitheelweefsels nauwkeurig samen te vatten. Dit omvat weefselspecifieke biochemische en biomechanische signalen die van nature aanwezig zijn in levende organen, maar vaak worden verwaarloosd door traditionele in vitro modellen24. De Open-Top Chip bevat twee compartimenten: een vasculair compartiment (figuur 1A) en een stromaal compartiment (figuur 1B) gescheiden door een poreus membraan, waardoor de diffusie van voedingsstoffen tussen de twee kamers mogelijk is (figuur 1C). Het vasculaire compartiment wordt blootgesteld aan een continue vloeistofstroom om fysiologische schuifspanning te recapituleren, terwijl het rekbare ontwerp van de stromale kamer het mogelijk maakt om de mechanische belasting te modelleren die gepaard gaat met ademhalingsbewegingen of intestinale peristaltiek. Het stromale compartiment herbergt de afstembare 3D-hydrogelsteiger die is ontworpen om de fysiologische groei van weefselspecifieke fibroblasten te ondersteunen. Het bezit een verwijderbaar deksel dat de oprichting van een lucht-vloeistofinterface vergemakkelijkt, een aandoening die een grotere emulatie van de menselijke fysiologie van slijmvliesweefsels mogelijk maakt, evenals directe toegang tot het weefsel voor het rechtstreeks toedienen van geneesmiddelen op de epitheellaag. Aanvullende figuur 1 toont enkele van de belangrijkste componenten van het open-top chipontwerp, waaronder afmetingen en biologische compartimenten (aanvullende figuur 1A-D), evenals de belangrijkste technische stappen die in dit protocol worden beschreven (aanvullende figuur 1E).
Perfusie van de Open-Top Chip wordt bereikt met een programmeerbare peristaltische pomp (Figuur 1D). De peristaltische pompopstelling maakt het mogelijk om 12 Open-Top Chips tegelijkertijd te perfuseren. De meeste incubators kunnen twee opstellingen huisvesten die de kweek van maximaal 24 chips per incubator mogelijk maken. Mechanisch rekken wordt bereikt met behulp van een op maat gemaakte programmeerbare vacuümdrukregelaar (figuur 1E). Het bestaat uit een elektro-pneumatische vacuümregelaar die elektronisch wordt bestuurd door een digitaal-naar-analoog converter. Met andere woorden, de elektro-pneumatische vacuümregelaar genereert een sinusoïdaal vacuümprofiel met een amplitude en frequentie die door de gebruiker wordt bepaald. Cyclische spanning variërend van 0% tot 15% wordt gegenereerd door negatieve druk toe te passen op het vacuümkanaal van de Open-Top Chip met een amplitude variërend van 0 tot -90 kPa en een frequentie van 0,2 Hz. Het is een op maat gemaakt systeem dat gelijkwaardig is aan de in de handel verkrijgbare Flexcell Strain Unit die eerder is aangenomen en beschreven in andere papers25. Om de mechanische weefselvervorming na te bootsen die bijvoorbeeld gepaard gaat met de ademhalingsbeweging van de long of de peristaltiek van de darm, past de pneumatische actuator sinusoïdale vacuüm / rekgolven toe waarvan de grootte en amplitude kunnen worden aangepast aan het fysiologische niveau van spanning en frequentie dat menselijke cellen ervaren in hun oorspronkelijke weefsel.
Hier beschrijven we een efficiënte en reproduceerbare methode voor het engineeren en kweken van organotypische epitheelequivalenten op een prototype Open-Top Chip-platform. Het maakt het genereren van complexe orgaanmodellen zoals huid, alveolus, luchtwegen en dikke darm mogelijk, terwijl een vasculaire vloeistofstroom en mechanische stretching worden geïntegreerd. We zullen de belangrijkste technische aspecten schetsen waarmee rekening moet worden gehouden bij het implementeren van principes van tissue engineering voor het genereren van complexe epitheliale modellen. We bespreken de voordelen en mogelijke beperkingen van het huidige ontwerp.
Een overzicht van de belangrijkste stappen die worden gebruikt om weefsel- en orgaanrijping te bereiken, inclusief stromings- en rekparameters, wordt weergegeven in: Figuur 2 voor de huid, Figuur 3 voor de alveolus, Figuur 4 voor de luchtwegen en Figuur 5 voor de darm. Aanvullende informatie over de samenstelling van de media en de reagentia die worden gebruikt voor het kweken van de verschillende orgaanmodellen is opgenomen in de aanvullende tabellen (aanvullende tabel 1 voor de huid; aanvullende tabel 2 voor de alveolus; Aanvullende tabel 3 voor de luchtwegen en aanvullende tabel 4 voor de darm).
De Open-Top Chip vertegenwoordigt een faciliterend platform voor het onderzoeken van het complexe cellulaire samenspel tussen endotheel, stroma en epitheel in een gecontroleerde micro-omgeving, in realtime. Deze technologie biedt cruciale voordelen ten opzichte van conventionele organotypische en organoïde culturen, zoals de integratie van fysieke en biochemische signalen die relevant zijn voor het reconstitueren van de micro-omgeving van menselijk weefsel, inclusief fluidic shear (flow), cyclisch stretchen en reconstru…
The authors have nothing to disclose.
Geen
10x EMEM | Lonza | 12-684F | Medium; Stroma |
18 Gauge needle | MicroGroup | 316H18RW | Tube stainless steel 316 welded, 18RW Full Hard |
19 Gauge needle | MicroGroup | 316H19RW | Tube stainless steel 316 welded, 19RW Full Hard |
2-Stop PharMed BPT | Cole-Palmer | EW-95723-12 | Tube, 0.25 mm, 12/pack |
70% ethanol and wipes | - | - | For surface sterilization |
8-Bromoadenosine 3′,5′-cyclic monophosphate sodium salt (8-Br-cAMP) | Sigma | B7880 | Medium supplement |
A-83-01 | Tocris | 2939 | |
Adenine | Sigma | A9795 | |
Advanced DMEM/F12 | Thermo | 12634010 | |
Airway Epithelial Cells | Lifeline Cell Technology | FC-0016 | |
Aluminum foil | - | - | - |
Alveolar cells | Cell Biologics | H6621 | |
Anti-ABCA3 | ABCAM | ab24751 | Mouse monoclonal antibody [3C9] |
Anti-Aquaporin5 Alexa Fluor 647 | ABCAM | ab215225 | Rabbit monoclonal antibody [EPR3747] |
Anti-Aquaporin5 | ABCAM | ab92320 | Rabbit monoclonal antibody [EPR3747] |
Anti-beta IV Tubulin | ABCAM | ab11315 | Mouse monoclonal antibody [ONS.1A6] |
Anti-CD31 (PECAM-1) | ABCAM | ab9498 | Mouse monoclonal [JC/70A] antibody |
Anti-CK5 | ABCAM | ab75869 | Rabbit recombinant monoclonal [AY1E6] |
Anti-Cytokeratin 10 | ThermoFisher | MA5-13705 | Mouse monoclonal antibody (DE-K10) |
Anti-Cytokeratin 14 | ABCAM | ab7800 | Mouse monoclonal antibody |
Anti-E-Cadherin | ABCAM | ab1416 | Mouse monoclonal antibody |
Anti-Filaggrin | ThermoFisher | PA5-79267 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-HTI-56 | Terrace Biotech | TB-29AHT1-56 | Mouse monoclonal antibody (IgG1) |
Anti-HTII-280 | Terrace Biotech | TB-27AHT2-280 | Mouse monoclonal antibody (IgM) |
Anti-Involucrin | ThermoFisher | MA5-11803 | Mouse monoclonal antibody (SY5) |
Anti-Isoforms TA p63-α, -β, -γ | Biolengend | 618902 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Ki67 | ABCAM | ab8191 | Mouse monoclonal antibody [B126.1] |
Anti-LAMP3 | ABCAM | ab111090 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Mature SP-B | Seven Hill | WRAB-48604 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-MUC5AC | ThermoFisher | PA5-34612 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Mucin-2 | SantaCruz Biotechnology | sc-7314 | Mouse monoclonal antibody (IgG1) |
Anti-p63 | Dako | GA662 | Mouse monoclonal antibody p63 Protein (Dako Omnis) Clone DAK-p63 |
Anti-PCNA | ThermoFisher | PA5-32541 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Podoplanin (AT-1α) | ABCAM | ab128994 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Pro + Mature Surfactant Protein B | ABCAM | ab40876 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Surfactant C | Seven Hill | WRAB-9337 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-Uteroglobin/SCGB1A1 | Hycult Biotech | HM2178 | Mouse monoclonal antibody [AY1E6] |
Anti-VE-cadherin | ABCAM | ab33168 | Rabbit polyclonal antibody |
Anti-ZO-1 | ThermoFisher | 33-9100 | Mouse monoclonal antibody [1A12] |
Ascorbic acid | Sigma | A4544 | |
Aspirating pipettes | Corning / Falcon | 357558 | 2 mL, polystyrene, individually wrapped |
Aspirating tips | - | - | Sterile (autoclaved) |
B27 | Thermo | 17504044 | |
Blocker BSA (10X) in PBS solution | ThermoFisher | 37525 | Blocker agent |
Calcium Chloride | Sigma | C7902 | |
CHIR 99021 | Tocris | 4423 | |
Collagen I | Advanced Biomatrix | 5133 | 10 mg/mL (Stroma) |
Collagen I | Advanced BioMatrix | 5005 | 3 mg/mL (Vascular ECM) |
Collagen IV | Sigma | C5533 | |
Collagen-IV | Sigma | C5533-5MG | Collagen from human placenta, 5 mg powder, reconstitute to 1 mg/mL |
Colonic Fibroblasts | Cell Biologics | H6231 | |
Colonic microvascular endothelial cells | Cell Biologics | H6203 | |
Conical tubes | - | - | 15 mL and 50 mL polypropylene, sterile |
Crosslinker (ER-1) | Emulate | 10461 | 5 mg powder |
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate) | ThermoFisher | D3571 | DNA probe |
Dermal fibroblasts | ATCC | PCS-201-010 | |
Dermal microvascular endothelial cells | ATCC | CRL-3243 | |
Dexamethasone | Sigma | D4902 | |
DMEM | ThermoFisher | 11054020 | |
DMEM/F-12 | GIBCO | 11320082 | |
DMEM/F-12, GlutaMAX | GIBCO | 10565-018 | Basal medium for ALI medium |
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 488) | ABCAM | ab150105 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 568) | ABCAM | ab175472 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 647) | ABCAM | ab150107 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 488) | ABCAM | ab150073 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 568) | ABCAM | ab175470 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 647) | ABCAM | ab150075 | Donkey Anti-Mouse secondary antibody |
Dulbecco’s PBS (DPBS-/-) (without Ca2+, Mg2+) | Corning | 21-031-CV | 1x |
Epidermal Growth Factor (EGF) human, recombinant in E. coli | PromoCell | C-60170 | Medium supplement |
F-12 Ham’s | Invitrogen | 21700-108 | For vascular ECM |
FibriCol | Advanced BioMatrix | 5133-20ML | Collagen-I solution (10 mg/mL) |
Fibronectin | Corning | 356008 | |
Fibronectin, Human, Natural, | Corning | 47743-654 | human plasma fibronectin |
Fine-tip precision tweezers | Aven | 18056USA | Technik Style 5B-SA Precision Stainless Steel Tweezers |
Glutamax | Invitrogen | 21700-108 | |
Glutamax | Invitrogen | 35050061 | |
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 594) | ABCAM | ab150080 | Goat Anti-Mouse secondary antibody |
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 647) | ABCAM | ab150115 | Goat Anti-Mouse secondary antibody |
Goat Anti-Mouse IgG H&L (FITC) | ABCAM | ab6785 | Goat Anti-Mouse secondary antibody |
Goat Anti-Mouse IgG1 Alexa Fluor 568 | ThermoFisher | A-21124 | Goat Anti-Mouse IgG1 secondary antibody |
Goat Anti-Mouse IgM Alexa Fluor 488 | ThermoFisher | A-21042 | Goat Anti-Mouse IgM secondary antibody |
Handheld vacuum aspirator | Corning | 4930 | - |
Heat Inactivated HyClone FetalClone II Serum (FCS) | GE Healthcare Life Sciences | SH30066.03 | |
Hemocytometer | - | - | - |
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa | Sigma | H3149 | |
HEPES | Thermo | 15630080 | |
Human [Leu15] – Gastrin | Sigma | G9145 | |
Human colonoids | Obtained from clinical resections | Obtained from clinical resections | |
Human EGF Recombinant Protein | Thermo | PHG0311L | |
human epithelial growth factor | Thermo | PHG0311 | |
HyClone FetalClone II Serum (U.S.) | GE Healthcare | SH30066.02HI | Sterile FBS heat-inactivated |
Hydrocortisone 21-hemisuccinate sodium salt | Sigma | H4881 | |
Hydrocortisone | PromoCell | C-64420 | Medium supplement |
Ice bucket | - | - | - |
Ismatec IPC-N | Cole-Palmer | EW-78000-41 | Low-Speed Digital Peristaltic Pump; q24-Channel (1 per 12 Chips) |
ITES | BioWhittaker | 17-839Z | |
Keratinocyte Growth Factor (KGF), also known as Basic Fibroblast Growth Factor 7 (FGF-7), human, recombinant in HEK | PromoCell | C-63821 | |
Keratinocytes | ATCC | PCS-200-010 | |
Laminin | Biolamina | CT521-0501 | |
Laminin, 521 CTG (CT521) | Biolamina | CT521-0501 | human recombinant laminin 521 |
Lung Fibroblast | Cell Biologics | H6013 | |
Lung Fibroblast | Lifeline Cell Technology | FC-0049 | |
Lung microvascular endothelial cells | Lonza | CC-2527 | |
Lung smooth muscle cells | Lifeline Cell Technology | FC-0046 | |
Manual counter | - | - | - |
Masterflex (TPE) Transfer Tubing | Cole-Palmer | FV-96880-02 | PharMed BPT, 1/32" ID x 5/32" OD |
Medium 199, no phenol red | Thermo | 11043023 | |
Microcentrifuge tube | - | - | 1.5 mL, sterile |
Microscope (with camera) | - | - | For bright-field imaging |
N2 | Sigma | 17502001 | |
N-acetyl cysteine | Sigma | A5099 | |
Noggin (HEK293T conditioned medium) | Sigma | N17001 | |
Normal Goat Serum | ThermoFisher | 50062Z | Blocking solution |
O-phosphosrylethanolamine | Sigma | P0503 | |
Paraformaldehyde (4% wt/vol) | EMS | 15710 | Fixing agent |
Penicillin Streptomycin | GIBCO | 15140122 | |
Penicillin-streptomycin | Sigma | P4333 | 10,000 U/mL; 10 mg/mL |
Pipette tips | - | - | P20, P200, and P1000 sterile, low adhesion |
Pipette | Gilson | F167380 | P20, P200, and P1000 |
PluriQ Serum Replacement (or alternatively KO Serum replacement) | AMSBIO (or Thermo) | N/A (or C1910828010) | |
Poly-L-Lysine coated microscope glass slides | Sigma | P0425 | Glass slides |
Primocin | InvivoGen | ant-pm-1 | |
Progesterone | Sigma | P8783 | |
ProLong Gold | ThermoFisher | P36931 | Antifade Mountant with DAPI |
Retinoic Acid | Sigma | R2625 | |
ROCK inhibitor (Y27632) | Tocris | TB1254-GMP/10 | |
R-spondin (HEK293T conditioned medium) | Sigma | SCC111 | |
SAGM SingleQuots supplements | Lonza | CC-4124 | |
SAGMTM Small Airway Epithelial Cell Growth medium BulletKitTM | Lonza | CC-4124 | Medium supplements |
SB2001190 | Tocris | 1264/10 | |
Serological pipettes | - | - | 2 mL, 5 mL, 10 mL, and 25 mL low endotoxin, sterile |
Small Airway Epithelial Cell Growth medium (SAGM) | Lonza | CC-4124 | |
Solvent Buffer (ER-2) | Emulate | 10462 | 25 mL bottle |
Steriflip-HV | Millipore | SE1M003M00 | Sterile filtering conical tube |
Sterilin 100 mm Square Petri Dishes | Thermo | 103 | Sterile, 1 per 6 chips |
T25 flasks | - | - | - |
T75 flasks | - | - | - |
Tri-iodothyronine | Sigma | T5516 | |
Triton X-100 (0.3% (vol/vol) | Sigma | T8787 | Permeabilization agent |
Trypan blue | Sigma | 93595 | 0.4% solution |
TrypEE solution | Sigma | 12604013 | Cell detaching solution |
TWEEN-20 | Sigma | P2287 | Permeabilization agent |
UV Light Oven (peak frequency 365nm, intensity of 100 µJ/cm2) | VWR | 21474-598 | UVP, Long Range UV, 365 nm 60Hz Model CL-1000L |
Vacuum set-up | - | - | Minimum pressure: -70 kPa |
Vascular Endothelial Growth Factor 165 (VEGF-165) human, recombinant in E. coli | PromoCell | C-64420 | |
VEGF-165 | PromoCell | C-64420 | Medium supplement |
Von Willebrand Factor conjugated FITC | ABCAM | ab8822 | Sheep polyclonal antibody |
Water bath (or beads) | - | - | Set to 37 °C |
Wnt3A (L-Wnt3A conditioned medium) | ATCC | CRL-2647 |