Summary

Reconstitutie cytoarchitectuur en functie van menselijke epitheelweefsels op een open-top orgaanchip

Published: February 17, 2023
doi:

Summary

Het huidige protocol beschrijft de mogelijkheden en de essentiële kweekmodaliteiten van de Open-Top Organ-Chip voor de succesvolle vestiging en rijping van organ-on-chip culturen van volledige dikte van primaire weefsels (huid, alveolus, luchtwegen en darm), waardoor de mogelijkheid wordt geboden om verschillende functionele aspecten van de menselijke epitheliale / mesenchymale en vasculaire niche-interface in vitro te onderzoeken.

Abstract

Bijna alle menselijke organen zijn bekleed met epitheelweefsels, bestaande uit een of meerdere lagen van nauw verbonden cellen georganiseerd in driedimensionale (3D) structuren. Een van de belangrijkste functies van epithelia is de vorming van barrières die de onderliggende weefsels beschermen tegen fysieke en chemische beledigingen en infectieuze agentia. Bovendien bemiddelen epithelia het transport van voedingsstoffen, hormonen en andere signaalmoleculen, waardoor vaak biochemische gradiënten ontstaan die de celpositionering en compartimentering in het orgaan sturen. Vanwege hun centrale rol bij het bepalen van de structuur en functie van het orgaan, zijn epithelia belangrijke therapeutische doelen voor veel menselijke ziekten die niet altijd worden vastgelegd door diermodellen. Naast de voor de hand liggende verschillen tussen soorten, wordt het uitvoeren van onderzoek naar barrièrefunctie en transporteigenschappen van epithelia bij dieren verder verergerd door de moeilijkheid om toegang te krijgen tot deze weefsels in een levend systeem. Hoewel tweedimensionale (2D) menselijke celculturen nuttig zijn voor het beantwoorden van fundamentele wetenschappelijke vragen, leveren ze vaak slechte in vivo voorspellingen op. Om deze beperkingen te overwinnen, is in het afgelopen decennium een overvloed aan micro-engineered biomimetische platforms, bekend als organen-op-een-chip, naar voren gekomen als een veelbelovend alternatief voor traditionele in vitro en dierproeven. Hier beschrijven we een Open-Top Organ-Chip (of Open-Top Chip), een platform dat is ontworpen voor het modelleren van orgaanspecifieke epitheelweefsels, waaronder huid, longen en de darmen. Deze chip biedt nieuwe mogelijkheden voor het reconstitueren van de meercellige architectuur en functie van epitheelweefsels, inclusief de mogelijkheid om een 3D-stromale component te recreëren door weefselspecifieke fibroblasten en endotheelcellen op te nemen in een mechanisch actief systeem. Deze Open-Top Chip biedt een ongekend hulpmiddel voor het bestuderen van epitheliale / mesenchymale en vasculaire interacties op meerdere resolutieschalen, van enkele cellen tot meerlaagse weefselconstructen, waardoor moleculaire dissectie van de intercellulaire overspraak van geëpitheliseerde organen in gezondheid en ziekte mogelijk wordt.

Introduction

Historisch gezien hebben wetenschappers vertrouwd op preklinische dierproeven voor het ontdekken van geneesmiddelen, maar een groeiend aantal van deze methoden is in twijfel getrokken vanwege de slechte correlatie met menselijke uitkomst1. De implementatie van de “3V’s”-principes om dierproeven te vervangen, te verminderen en te verfijnen, spoort wetenschappers aan om nieuwe in vitro alternatieve methoden te vinden ter ondersteuning van de risicobeoordeling van preklinische geneesmiddelen en chemische toxicologie2. Veel in vitro modellen die tot nu toe zijn ontwikkeld, missen echter de biologische architectuur, cellulaire complexiteit en mechanische omgeving die nodig zijn om de dynamische aard van menselijke levende organen samen te vatten 3,4.

Conventionele in vitro preklinische systemen maken meestal gebruik van 2D-monoculturen van menselijke cellen die op een stijf plastic oppervlak zijn gekweekt. Deze methoden bieden een hulpmiddel voor het uitvoeren van eenvoudige mechanistische studies en maken een snelle screening van kandidaat-geneesmiddelen mogelijk. Vanwege hun relatief lage kosten en hoge robuustheid worden 2D-modellen vaak gecombineerd met automatische high-throughput-systemen en gebruikt voor de snelle identificatie van potentiële kandidaat-geneesmiddelen in de vroege fase van het ontwikkelingsproces van geneesmiddelen 5,6. Dergelijke 2D-modellen bieden echter geen translationele benadering voor het modelleren van weefselniveau, orgaanniveau of systemische reacties op therapeutische kandidaten, wat nodig is voor nauwkeurige voorspellingen van de veiligheid en werkzaamheid van geneesmiddelen tijdens de preklinische fase van hun ontwikkeling. Platte celculturen recapituleren de inheemse weefselmicro-omgeving niet, inclusief het complexe meercellige samenspel, biomechanische eigenschappen en driedimensionale (3D) architectuur van menselijke weefsels7. Cellen die op een plat oppervlak groeien, krijgen vaak geen volwassen fenotype en kunnen daarom niet reageren op farmacologische stimuli zoals ze zouden doen in het inheemse weefsel. Primaire menselijke alveolaire epitheelcellen die in vitro zijn gekweekt, vertonen bijvoorbeeld een plaveiselfenotype en verliezen belangrijke fenotypische markers, waaronder oppervlakteactieve eiwitten C en B (SP-C en SP-B)8. Naast onvoldoende differentiatie worden primaire cellen vaak ongevoelig voor biologische stressoren in vitro, omdat bepaalde biochemische routes geassocieerd met weefselontsteking niet-functioneel worden9. Een dergelijk verlies van celfunctie lijkt voornamelijk geassocieerd te zijn met het gebruik van stijve substraten en het gebrek aan oplosbare factoren die van nature worden vrijgegeven door weefselspecifieke stromale cellen zoals longfibroblasten en gladde spiercellen10,11.

Het inzicht dat het gebrek aan chemo-fysieke en biologische complexiteit het fysiologische gedrag van cellen in vitro beperkt, heeft de ontwikkeling van meer geavanceerde meercellige modellen bevorderd, waarvan is bewezen dat ze de complexiteit van menselijke weefsels buiten het lichaam beter vastleggen12,13. Sinds de creatie van de eerste co-cultuurmodellen in de vroege jaren 197014, heeft de introductie van synthetische en natuurlijke hydrogels het vermogen om inheemse weefselmicro-omgevingen na te bootsen aanzienlijk verbeterd en is het een waardevol hulpmiddel geworden voor het stimuleren van cellulaire differentiatie, het begeleiden van de zelforganisatie van cellen in weefselachtige structuren en het herstel van inheemse weefselfuncties15,16. Wanneer menselijke cellen bijvoorbeeld in de juiste 3D-steiger worden gekweekt, kunnen ze zichzelf rangschikken in functionele structuren zoals sferoïden of organoïden, waardoor stamcelmarkers tot expressie komen en zijn ze in staat tot zelfvernieuwing17. Menselijke cellen (inclusief stamcellen) daarentegen, wanneer ze op traditionele 2D-substraten worden gekweekt, verouderen snel en ondergaan senescentie na een paar passages18. Bovendien kunnen hydrogels worden “aangepast” aan specifieke weefseleigenschappen zoals porositeit, poriegrootte, vezeldikte, visco-elasticiteit, topografie en stijfheid of verder worden ontwikkeld met weefselafgeleide cellulaire componenten en / of bioactieve moleculen die emulatie van de fysiologische of pathologische omstandigheden mogelijk maken19,20. Ondanks hun enorme potentieel voor het testen van geneesmiddelen, geven 3D-hydrogel-gebaseerde modellen die worden gebruikt in farmaceutisch onderzoek de complexe cytoarchitectuur van de in vivo weefsels niet volledig samen en missen ze belangrijke hemodynamische en mechanische stimuli die normaal aanwezig zijn in het menselijk lichaam, waaronder hydrostatische druk, cyclische rek en vloeistofafschuiving21.

Microfysiologische systemen (MPS’en) zoals Organs-on-chips (OOC’s) zijn onlangs naar voren gekomen als hulpmiddelen die in staat zijn om complexe fysiologische reacties in vitro vast te leggen 22,23. Deze modellen maken vaak gebruik van microfluïdische platforms, die het mogelijk maken om de dynamische micro-omgeving van levende organen te modelleren.

We hebben de principes van 3D-weefselbio-engineering en mechanobiologie gecombineerd om een Open-Top Chip-model van complex menselijk epitheelweefsel te creëren. Dit stelde ons in staat om de meercellige en dynamische micro-omgeving van epitheelweefsels nauwkeurig samen te vatten. Dit omvat weefselspecifieke biochemische en biomechanische signalen die van nature aanwezig zijn in levende organen, maar vaak worden verwaarloosd door traditionele in vitro modellen24. De Open-Top Chip bevat twee compartimenten: een vasculair compartiment (figuur 1A) en een stromaal compartiment (figuur 1B) gescheiden door een poreus membraan, waardoor de diffusie van voedingsstoffen tussen de twee kamers mogelijk is (figuur 1C). Het vasculaire compartiment wordt blootgesteld aan een continue vloeistofstroom om fysiologische schuifspanning te recapituleren, terwijl het rekbare ontwerp van de stromale kamer het mogelijk maakt om de mechanische belasting te modelleren die gepaard gaat met ademhalingsbewegingen of intestinale peristaltiek. Het stromale compartiment herbergt de afstembare 3D-hydrogelsteiger die is ontworpen om de fysiologische groei van weefselspecifieke fibroblasten te ondersteunen. Het bezit een verwijderbaar deksel dat de oprichting van een lucht-vloeistofinterface vergemakkelijkt, een aandoening die een grotere emulatie van de menselijke fysiologie van slijmvliesweefsels mogelijk maakt, evenals directe toegang tot het weefsel voor het rechtstreeks toedienen van geneesmiddelen op de epitheellaag. Aanvullende figuur 1 toont enkele van de belangrijkste componenten van het open-top chipontwerp, waaronder afmetingen en biologische compartimenten (aanvullende figuur 1A-D), evenals de belangrijkste technische stappen die in dit protocol worden beschreven (aanvullende figuur 1E).

Perfusie van de Open-Top Chip wordt bereikt met een programmeerbare peristaltische pomp (Figuur 1D). De peristaltische pompopstelling maakt het mogelijk om 12 Open-Top Chips tegelijkertijd te perfuseren. De meeste incubators kunnen twee opstellingen huisvesten die de kweek van maximaal 24 chips per incubator mogelijk maken. Mechanisch rekken wordt bereikt met behulp van een op maat gemaakte programmeerbare vacuümdrukregelaar (figuur 1E). Het bestaat uit een elektro-pneumatische vacuümregelaar die elektronisch wordt bestuurd door een digitaal-naar-analoog converter. Met andere woorden, de elektro-pneumatische vacuümregelaar genereert een sinusoïdaal vacuümprofiel met een amplitude en frequentie die door de gebruiker wordt bepaald. Cyclische spanning variërend van 0% tot 15% wordt gegenereerd door negatieve druk toe te passen op het vacuümkanaal van de Open-Top Chip met een amplitude variërend van 0 tot -90 kPa en een frequentie van 0,2 Hz. Het is een op maat gemaakt systeem dat gelijkwaardig is aan de in de handel verkrijgbare Flexcell Strain Unit die eerder is aangenomen en beschreven in andere papers25. Om de mechanische weefselvervorming na te bootsen die bijvoorbeeld gepaard gaat met de ademhalingsbeweging van de long of de peristaltiek van de darm, past de pneumatische actuator sinusoïdale vacuüm / rekgolven toe waarvan de grootte en amplitude kunnen worden aangepast aan het fysiologische niveau van spanning en frequentie dat menselijke cellen ervaren in hun oorspronkelijke weefsel.

Hier beschrijven we een efficiënte en reproduceerbare methode voor het engineeren en kweken van organotypische epitheelequivalenten op een prototype Open-Top Chip-platform. Het maakt het genereren van complexe orgaanmodellen zoals huid, alveolus, luchtwegen en dikke darm mogelijk, terwijl een vasculaire vloeistofstroom en mechanische stretching worden geïntegreerd. We zullen de belangrijkste technische aspecten schetsen waarmee rekening moet worden gehouden bij het implementeren van principes van tissue engineering voor het genereren van complexe epitheliale modellen. We bespreken de voordelen en mogelijke beperkingen van het huidige ontwerp.

Een overzicht van de belangrijkste stappen die worden gebruikt om weefsel- en orgaanrijping te bereiken, inclusief stromings- en rekparameters, wordt weergegeven in: Figuur 2 voor de huid, Figuur 3 voor de alveolus, Figuur 4 voor de luchtwegen en Figuur 5 voor de darm. Aanvullende informatie over de samenstelling van de media en de reagentia die worden gebruikt voor het kweken van de verschillende orgaanmodellen is opgenomen in de aanvullende tabellen (aanvullende tabel 1 voor de huid; aanvullende tabel 2 voor de alveolus; Aanvullende tabel 3 voor de luchtwegen en aanvullende tabel 4 voor de darm).

Protocol

Menselijke colonoïden werden verkregen uit darmresecties in overeenstemming met de richtlijnen van het Institutional Biosafety Committee van het Cincinnati Children’s hospital (IBC 2017-2011). 1. Surface-activering Voorbereiding van activeringsbufferPlaats de crosslinker- en oplosmiddelbufferreagentia onder de bioveiligheidskast (BSC) en laat ze gedurende 10 minuten voor gebruik bij kamertemperatuur (RT) balanceren. Reconstitueer 5 mg crosslinker …

Representative Results

Micropatterning van het oppervlakMicropatterning van de extracellulaire matrix (ECM) kan worden gebruikt om de ruimtelijke configuratie van de intestinale crypte-interface te repliceren. De Open-Top Chip-configuratie kan worden aangepast om microgepatterde stempels te integreren die speciaal zijn ontworpen om de natuurlijke topografie van de colonepitheel-stroma-interface (figuur 6A, B) en de darmcrypten op micrometerschaal na te bootsen (<strong class="…

Discussion

De Open-Top Chip vertegenwoordigt een faciliterend platform voor het onderzoeken van het complexe cellulaire samenspel tussen endotheel, stroma en epitheel in een gecontroleerde micro-omgeving, in realtime. Deze technologie biedt cruciale voordelen ten opzichte van conventionele organotypische en organoïde culturen, zoals de integratie van fysieke en biochemische signalen die relevant zijn voor het reconstitueren van de micro-omgeving van menselijk weefsel, inclusief fluidic shear (flow), cyclisch stretchen en reconstru…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Geen

Materials

10x EMEM  Lonza 12-684F Medium; Stroma
18 Gauge needle MicroGroup 316H18RW Tube stainless steel 316 welded, 18RW Full Hard 
19 Gauge needle MicroGroup 316H19RW Tube stainless steel 316 welded, 19RW Full Hard
2-Stop PharMed BPT  Cole-Palmer  EW-95723-12 Tube, 0.25 mm, 12/pack
70% ethanol and wipes   -   -  For surface sterilization 
8-Bromoadenosine 3′,5′-cyclic monophosphate sodium salt (8-Br-cAMP) Sigma B7880 Medium supplement 
A-83-01  Tocris  2939
Adenine Sigma A9795
Advanced DMEM/F12  Thermo 12634010
Airway Epithelial Cells Lifeline Cell Technology FC-0016
Aluminum foil   -   -   -
Alveolar cells Cell Biologics H6621
Anti-ABCA3   ABCAM  ab24751  Mouse monoclonal antibody [3C9] 
Anti-Aquaporin5 Alexa Fluor 647  ABCAM  ab215225   Rabbit monoclonal antibody [EPR3747]  
Anti-Aquaporin5  ABCAM  ab92320  Rabbit monoclonal antibody [EPR3747] 
Anti-beta IV Tubulin   ABCAM  ab11315  Mouse monoclonal antibody [ONS.1A6] 
Anti-CD31 (PECAM-1)  ABCAM  ab9498  Mouse monoclonal [JC/70A] antibody  
Anti-CK5   ABCAM  ab75869  Rabbit recombinant monoclonal [AY1E6] 
Anti-Cytokeratin 10   ThermoFisher  MA5-13705  Mouse monoclonal antibody (DE-K10) 
Anti-Cytokeratin 14   ABCAM  ab7800  Mouse monoclonal antibody 
Anti-E-Cadherin   ABCAM  ab1416   Mouse monoclonal antibody 
Anti-Filaggrin   ThermoFisher  PA5-79267  Rabbit polyclonal antibody  
Anti-HTI-56  Terrace Biotech  TB-29AHT1-56   Mouse monoclonal antibody (IgG1) 
Anti-HTII-280  Terrace Biotech  TB-27AHT2-280  Mouse monoclonal antibody (IgM) 
Anti-Involucrin   ThermoFisher  MA5-11803  Mouse monoclonal antibody (SY5) 
Anti-Isoforms TA p63-α, -β, -γ   Biolengend  618902  Rabbit polyclonal antibody  
Anti-Ki67   ABCAM  ab8191  Mouse monoclonal antibody [B126.1] 
Anti-LAMP3   ABCAM  ab111090  Rabbit polyclonal antibody 
Anti-Mature SP-B  Seven Hill  WRAB-48604  Rabbit polyclonal antibody 
Anti-MUC5AC   ThermoFisher  PA5-34612  Rabbit polyclonal antibody  
Anti-Mucin-2  SantaCruz Biotechnology sc-7314 Mouse monoclonal antibody (IgG1) 
Anti-p63   Dako  GA662  Mouse monoclonal antibody p63 Protein (Dako Omnis) Clone DAK-p63 
Anti-PCNA   ThermoFisher  PA5-32541  Rabbit polyclonal antibody  
Anti-Podoplanin (AT-1α)   ABCAM  ab128994  Rabbit polyclonal antibody 
Anti-Pro + Mature Surfactant Protein B  ABCAM  ab40876  Rabbit polyclonal antibody 
Anti-Surfactant C    Seven Hill   WRAB-9337   Rabbit polyclonal antibody 
Anti-Uteroglobin/SCGB1A1  Hycult Biotech  HM2178  Mouse monoclonal antibody [AY1E6] 
Anti-VE-cadherin   ABCAM  ab33168  Rabbit polyclonal antibody  
Anti-ZO-1   ThermoFisher  33-9100  Mouse monoclonal antibody [1A12] 
Ascorbic acid Sigma A4544
Aspirating pipettes  Corning / Falcon  357558  2 mL, polystyrene, individually wrapped 
Aspirating tips   -   -  Sterile (autoclaved) 
B27 Thermo 17504044
Blocker BSA (10X) in PBS solution   ThermoFisher  37525  Blocker agent 
Calcium Chloride Sigma C7902
CHIR 99021 Tocris 4423
Collagen I Advanced Biomatrix 5133 10 mg/mL (Stroma)
Collagen I  Advanced BioMatrix 5005 3 mg/mL (Vascular ECM)
Collagen IV Sigma  C5533
Collagen-IV Sigma  C5533-5MG  Collagen from human placenta, 5 mg powder, reconstitute to 1 mg/mL 
Colonic Fibroblasts  Cell Biologics  H6231
Colonic microvascular endothelial cells  Cell Biologics H6203 
Conical tubes    -   -  15 mL and 50 mL polypropylene, sterile 
Crosslinker (ER-1)  Emulate  10461 5 mg powder 
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dilactate)   ThermoFisher  D3571  DNA probe 
Dermal fibroblasts ATCC PCS-201-010
Dermal microvascular endothelial cells ATCC CRL-3243
Dexamethasone Sigma D4902
DMEM ThermoFisher 11054020
DMEM/F-12  GIBCO  11320082
DMEM/F-12, GlutaMAX   GIBCO  10565-018  Basal medium for ALI medium 
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 488)   ABCAM  ab150105  Donkey Anti-Mouse secondary antibody  
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 568)   ABCAM  ab175472  Donkey Anti-Mouse secondary antibody 
Donkey Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 647)   ABCAM  ab150107  Donkey Anti-Mouse secondary antibody 
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 488)   ABCAM   ab150073  Donkey Anti-Mouse secondary antibody 
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 568)   ABCAM  ab175470  Donkey Anti-Mouse secondary antibody 
Donkey Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 647)   ABCAM  ab150075  Donkey Anti-Mouse secondary antibody 
Dulbecco’s PBS (DPBS-/-) (without Ca2+, Mg2+)  Corning  21-031-CV  1x 
Epidermal Growth Factor (EGF) human, recombinant in E. coli PromoCell C-60170 Medium supplement 
F-12 Ham’s Invitrogen  21700-108 For vascular ECM
FibriCol  Advanced BioMatrix  5133-20ML  Collagen-I solution (10 mg/mL)
Fibronectin Corning 356008
Fibronectin, Human, Natural,   Corning  47743-654  human plasma fibronectin 
Fine-tip precision tweezers  Aven 18056USA  Technik Style 5B-SA Precision Stainless Steel Tweezers
Glutamax Invitrogen  21700-108
Glutamax  Invitrogen  35050061
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 594)   ABCAM  ab150080  Goat Anti-Mouse secondary antibody  
Goat Anti-Mouse IgG H&L (Alexa Fluor 647)   ABCAM  ab150115  Goat Anti-Mouse secondary antibody  
Goat Anti-Mouse IgG H&L (FITC)   ABCAM  ab6785  Goat Anti-Mouse secondary antibody  
Goat Anti-Mouse IgG1 Alexa Fluor 568   ThermoFisher  A-21124  Goat Anti-Mouse IgG1 secondary antibody 
Goat Anti-Mouse IgM Alexa Fluor 488   ThermoFisher  A-21042  Goat Anti-Mouse IgM secondary antibody 
Handheld vacuum aspirator  Corning  4930   - 
Heat Inactivated HyClone FetalClone II Serum (FCS)  GE Healthcare Life Sciences SH30066.03
Hemocytometer   -   -  - 
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa Sigma H3149
HEPES Thermo 15630080
Human [Leu15] – Gastrin  Sigma G9145
Human colonoids Obtained from clinical resections Obtained from clinical resections
Human EGF Recombinant Protein  Thermo PHG0311L
human epithelial growth factor  Thermo  PHG0311
HyClone FetalClone II Serum (U.S.)   GE Healthcare  SH30066.02HI   Sterile FBS heat-inactivated 
Hydrocortisone 21-hemisuccinate sodium salt Sigma H4881
Hydrocortisone  PromoCell   C-64420  Medium supplement  
Ice bucket   -   -   - 
Ismatec IPC-N  Cole-Palmer EW-78000-41 Low-Speed Digital Peristaltic Pump; q24-Channel (1 per 12 Chips)
ITES BioWhittaker 17-839Z
Keratinocyte Growth Factor (KGF), also known as Basic Fibroblast Growth Factor 7 (FGF-7), human, recombinant in HEK PromoCell C-63821
Keratinocytes ATCC PCS-200-010
Laminin  Biolamina CT521-0501 
Laminin, 521 CTG (CT521)  Biolamina   CT521-0501  human recombinant laminin 521    
Lung Fibroblast Cell Biologics H6013
Lung Fibroblast Lifeline Cell Technology FC-0049
Lung microvascular endothelial cells Lonza CC-2527
Lung smooth muscle cells Lifeline Cell Technology FC-0046
Manual counter   -   -   -
Masterflex (TPE) Transfer Tubing  Cole-Palmer FV-96880-02 PharMed BPT, 1/32" ID x 5/32" OD
Medium 199, no phenol red Thermo  11043023
Microcentrifuge tube   -    -   1.5 mL, sterile 
Microscope (with camera)   -   -  For bright-field imaging 
N2 Sigma 17502001
N-acetyl cysteine Sigma A5099
Noggin (HEK293T conditioned medium) Sigma N17001
Normal Goat Serum   ThermoFisher  50062Z  Blocking solution  
O-phosphosrylethanolamine  Sigma P0503
Paraformaldehyde (4% wt/vol)   EMS  15710  Fixing agent 
Penicillin Streptomycin GIBCO 15140122
Penicillin-streptomycin  Sigma  P4333  10,000 U/mL; 10 mg/mL 
Pipette tips    -   -  P20, P200, and P1000 sterile, low adhesion
Pipette  Gilson   F167380  P20, P200, and P1000 
PluriQ Serum Replacement (or alternatively KO Serum replacement) AMSBIO (or Thermo) N/A (or C1910828010)
Poly-L-Lysine coated microscope glass slides   Sigma  P0425  Glass slides 
Primocin InvivoGen ant-pm-1
Progesterone Sigma P8783
ProLong Gold   ThermoFisher  P36931  Antifade Mountant with DAPI 
Retinoic Acid  Sigma R2625
ROCK inhibitor (Y27632) Tocris TB1254-GMP/10
R-spondin (HEK293T conditioned medium) Sigma SCC111
SAGM SingleQuots supplements  Lonza CC-4124
SAGMTM Small Airway Epithelial Cell Growth medium BulletKitTM  Lonza  CC-4124  Medium supplements 
SB2001190  Tocris  1264/10
Serological pipettes   -   -  2 mL, 5 mL, 10 mL, and 25 mL low endotoxin, sterile 
Small Airway Epithelial Cell Growth medium (SAGM) Lonza  CC-4124 
Solvent Buffer (ER-2)  Emulate  10462 25 mL bottle 
Steriflip-HV  Millipore SE1M003M00 Sterile filtering conical tube
Sterilin 100 mm Square Petri Dishes Thermo 103 Sterile, 1 per 6 chips 
T25 flasks   -   -   -
T75 flasks   -   -   - 
Tri-iodothyronine Sigma T5516
Triton X-100 (0.3% (vol/vol)   Sigma  T8787  Permeabilization agent 
Trypan blue  Sigma  93595  0.4% solution 
TrypEE solution  Sigma  12604013  Cell detaching solution 
TWEEN-20  Sigma  P2287  Permeabilization agent 
UV Light Oven (peak frequency 365nm, intensity of 100 µJ/cm2) VWR 21474-598 UVP, Long Range UV, 365 nm 60Hz Model CL-1000L
Vacuum set-up   -   -  Minimum pressure: -70 kPa 
Vascular Endothelial Growth Factor 165 (VEGF-165) human, recombinant in E. coli PromoCell C-64420
VEGF-165   PromoCell   C-64420  Medium supplement 
Von Willebrand Factor conjugated FITC   ABCAM  ab8822  Sheep polyclonal antibody 
Water bath (or beads)   -   -  Set to 37 °C 
Wnt3A (L-Wnt3A conditioned medium) ATCC CRL-2647

Referências

  1. Van Norman, G. A. Limitations of animal studies for predicting toxicity in clinical trials: Is it time to rethink our current approach. JACC: Basic to Translational Science. 4 (7), 845-854 (2019).
  2. Wange, R. L., Brown, P. C., Davis-Bruno, K. L. Implementation of the principles of the 3Rs of animal testing at CDER: Past, present and future. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 123, 104953 (2021).
  3. Mosig, A. S. Organ-on-chip models: New opportunities for biomedical research. Future Science OA. 3 (2), (2017).
  4. Alépée, N., et al. State-of-the-art of 3D cultures (organs-on-a-chip) in safety testing and pathophysiology. Altex. 31 (4), 441-477 (2014).
  5. MacArron, R., et al. Impact of high-throughput screening in biomedical research. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (3), 188-195 (2011).
  6. Hughes, J. P., Rees, S. S., Kalindjian, S. B., Philpott, K. L. Principles of early drug discovery. British Journal of Pharmacology. 162 (6), 1239-1249 (2011).
  7. Kitaeva, K. V., Rutland, C. S., Rizvanov, A. A., Solovyeva, V. V. Cell culture based in vitro test systems for anticancer drug screening. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 322 (2020).
  8. Mao, P., et al. Human alveolar epithelial type II cells in primary culture. Physiological Reports. 3 (2), 12288 (2015).
  9. Zaitseva, M., Vollenhoven, B. J., Rogers, P. A. W. In vitro culture significantly alters gene expression profiles and reduces differences between myometrial and fibroid smooth muscle cells. Molecular Human Reproduction. 12 (3), 187-207 (2006).
  10. Singh, A., Brito, I., Lammerding, J. Beyond tissue stiffness and bioadhesivity: Advanced biomaterials to model tumor microenvironments and drug resistance. Trends in Cancer. 4 (4), 281-291 (2018).
  11. Nawroth, J. C., et al. Stem cell-based Lung-on-Chips: The best of both worlds. Advanced Drug Delivery Reviews. 140, 12-32 (2019).
  12. Jensen, C., Teng, Y. Is it time to start transitioning from 2d to 3d cell culture. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 33 (2020).
  13. Kapałczyńska, M., et al. 2D and 3D cell cultures – a comparison of different types of cancer cell cultures. Archives of Medical Science. 14 (4), 910-919 (2018).
  14. Sutherland, R. M., Inch, W. R., McCredie, J. A., Kruuv, J. A multi-component radiation survival curve using an in vitro tumour model. International Journal of Radiation Biology. 18 (5), 491-495 (1970).
  15. Chandra, P., Lee, S. J. Synthetic extracellular microenvironment for modulating stem cell behaviors. Biomarker Insights. 10, 105-116 (2015).
  16. Nicolas, J., et al. 3D extracellular matrix mimics: Fundamental concepts and role of materials chemistry to influence stem cell fate. Biomacromolecules. 21 (6), 1968-1994 (2020).
  17. Brassard, J. A., Lutolf, M. P. Engineering stem cell self-organization to build better organoids. Cell Stem Cell. 24 (6), 860-876 (2019).
  18. Lutolf, M. P., Gilbert, P. M., Blau, H. M. Designing materials to direct stem-cell fate. Nature. 462 (7272), 433-441 (2009).
  19. Mantha, S., et al. Smart hydrogels in tissue engineering and regenerative medicine. Materials. 12 (20), 3323 (2019).
  20. Langhans, S. A. Three-dimensional in vitro cell culture models in drug discovery and drug repositioning. Frontiers in Pharmacology. 9, 6 (2018).
  21. Li, H., et al. Biomechanical cues as master regulators of hematopoietic stem cell fate. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (16), 5881-5902 (2021).
  22. Donoghue, L., Nguyen, K. T., Graham, C., Sethu, P. Tissue chips and microphysiological systems for disease modeling and drug testing. Micromachines. 12 (2), 139 (2021).
  23. Ma, C., Peng, Y., Li, H., Chen, W. Organ-on-a-chip: A new paradigm for drug development. Trends in Pharmacological Sciences. 42 (2), 119-133 (2021).
  24. Varone, A., et al. A novel organ-chip system emulates three-dimensional architecture of the human epithelia and the mechanical forces acting on it. Biomaterials. 275, 120957 (2021).
  25. Hassell, B. A., et al. Human organ chip models recapitulate orthotopic lung cancer growth, therapeutic responses, and tumor dormancy in vitro. Cell Reports. 21 (2), 508-516 (2017).
  26. Sadeghipour, A., Babaheidarian, P. Making formalin-fixed, paraffin embedded blocks. Biobanking. 1897, 253-268 (2019).
  27. Grant, J., et al. Simulating drug concentrations in PDMS microfluidic organ chips. Lab on a Chip. 21 (18), 3509-3519 (2021).
  28. Barrile, R., et al. Organ-on-chip recapitulates thrombosis Induced by an anti-CD154 monoclonal antibody: Translational potential of advanced microengineered systems. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 104 (6), 1240-1248 (2018).
  29. Jain, A., et al. Primary human lung alveolus-on-a-chip model of intravascular thrombosis for assessment of therapeutics. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 103 (2), 332-340 (2018).
  30. Campbell, S. B., Wu, Q., Yazbeck, J., Liu, C., Okhovatian, S., Radisic, M. Beyond polydimethylsiloxane: Alternative materials for fabrication of organ-on-a-chip devices and microphysiological systems. ACS Biomaterials Science and Engineering. 7 (7), 2880-2899 (2021).
  31. Pun, S., Haney, L. C., Barrile, R. Modelling human physiology on-chip: Historical perspectives and future directions. Micromachines. 12 (10), 1250 (2021).

Play Video

Citar este artigo
Antonio, V., Panchal, A., Kasendra, M., Riccardo, B. Reconstituting Cytoarchitecture and Function of Human Epithelial Tissues on an Open-Top Organ-Chip. J. Vis. Exp. (192), e64633, doi:10.3791/64633 (2023).

View Video