Summary

Sferoidi epatici umani da sangue periferico per studi sulle malattie del fegato

Published: January 27, 2023
doi:

Summary

Qui presentiamo un metodo non genetico per generare sferoidi epatici autologhi umani usando cellule mononucleate isolate dal sangue periferico allo stato stazionario.

Abstract

Le cellule epatiche umane possono formare una struttura tridimensionale (3D) in grado di crescere in coltura per alcune settimane, preservando la loro capacità funzionale. A causa della loro natura di raggrupparsi nei piatti di coltura con caratteristiche adesive basse o assenti, formano aggregati di più cellule epatiche che sono chiamate sferoidi epatici umani. La formazione di sferoidi epatici 3D si basa sulla naturale tendenza delle cellule epatiche ad aggregarsi in assenza di un substrato adesivo. Queste strutture 3D possiedono risposte fisiologiche migliori rispetto alle cellule, che sono più vicine a un ambiente in vivo . L’utilizzo di colture di epatociti 3D presenta numerosi vantaggi rispetto alle classiche colture bidimensionali (2D), tra cui un microambiente biologicamente più rilevante, una morfologia architettonica che riassembla gli organi naturali e una migliore previsione dello stato della malattia e delle risposte simili in vivo ai farmaci. Varie fonti possono essere utilizzate per generare sferoidi, come tessuto epatico primario o linee cellulari immortalizzate. Il tessuto epatico 3D può anche essere ingegnerizzato utilizzando cellule staminali embrionali umane (hESC) o cellule staminali pluripotenti indotte (hiPSC) per derivare gli epatociti. Abbiamo ottenuto sferoidi epatici umani utilizzando cellule staminali pluripotenti derivate dal sangue (BD-PSC) generate da sangue periferico non manipolato mediante attivazione di proteine GPI legate alla membrana umana e differenziate in epatociti umani. Le cellule epatiche umane derivate da BD-PSCs e gli sferoidi epatici umani sono stati analizzati mediante microscopia ottica e immunofenotipizzazione utilizzando marcatori di epatociti umani.

Introduction

Negli ultimi anni i sistemi di coltura sferoidale tridimensionale (3D) sono diventati uno strumento importante per studiare varie aree della ricerca sul cancro, della scoperta di farmaci e della tossicologia. Tali colture suscitano grande interesse perché colmano il divario tra monostrati di colture cellulari bidimensionali (2D) e organi complessi1.

In assenza di una superficie adesiva, rispetto alla coltura cellulare 2D, la formazione di sferoidi si basa sulla naturale affinità di queste cellule a raggrupparsi in forma 3D. Queste cellule si organizzano in gruppi costituiti da uno o più tipi di cellule mature. Prive di materiali estranei, queste cellule interagiscono tra loro come nel loro microambiente originale. Le cellule nella coltura 3D sono molto più vicine e hanno un corretto orientamento l’una verso l’altra, con una maggiore produzione di matrice extracellulare rispetto alle colture 2D, e costituiscono un ambiente vicino al naturale 2.

I modelli animali sono stati utilizzati per lungo tempo per studiare la biologia umana e le malattie3. A questo proposito, ci sono differenze intrinseche tra esseri umani e animali, il che rende questi modelli non del tutto adatti per studi estrapolativi. Gli sferoidi e gli organoidi di coltura 3D rappresentano uno strumento promettente per studiare l’architettura simile ai tessuti, l’interazione e la diafonia tra diversi tipi di cellule che si verificano in vivo e possono contribuire a ridurre o addirittura sostituire i modelli animali. Sono di particolare interesse per lo studio della patogenesi delle malattie del fegato e delle piattaforme di screening dei farmaci4.

La coltura sferoidale 3D è di particolare importanza per la ricerca sul cancro in quanto può eliminare la discontinuità tra le cellule e il loro ambiente riducendo la necessità di tripsinizzazione o trattamento con collagenasi necessario per preparare i monostrati delle cellule tumorali per colture 2D. Gli sferoidi tumorali consentono lo studio di come le cellule normali rispetto a quelle maligne ricevono e rispondono ai segnali provenienti dall’ambiente circostante5 e sono una parte importante degli studi di biologia tumorale.

Rispetto al monostrato, le colture 3D costituite da vari tipi di cellule assomigliano ai tessuti tumorali nelle loro proprietà strutturali e funzionali e quindi sono adatte per studiare le metastasi e l’invasione delle cellule tumorali. Ecco perché tali modelli sferoidi stanno contribuendo ad accelerare la ricerca sul cancro6.

Gli sferoidi stanno anche aiutando a sviluppare la tecnologia per creare organoidi umani perché la biologia dei tessuti e degli organi è molto difficile da studiare, in particolare negli esseri umani. I progressi nella coltura di cellule staminali consentono di sviluppare colture 3D come organoidi costituiti da cellule staminali e progenitori tissutali, nonché diversi tipi di cellule mature (tissutali) da un organo con alcune caratteristiche funzionali come un organo reale che può essere utilizzato per modellare lo sviluppo di organi, malattie, ma possono anche essere considerati utili nella medicina rigenerativa7.

Gli epatociti umani primari sono solitamente utilizzati per studiare la biologia in vitro degli epatociti umani, la funzionalità epatica e la tossicità indotta da farmaci. Le colture di epatociti umani presentano due principali inconvenienti, in primo luogo, la limitata disponibilità di tessuto primario come gli epatociti umani e, in secondo luogo, la tendenza degli epatociti a dedifferenziarsi rapidamente nella coltura 2D, perdendo così la loro funzione specifica degli epatociti8. Le colture epatiche 3D sono superiori in questo senso e sono state recentemente prodotte da cellule staminali embrionali umane differenziate (hESC) o cellule staminali pluripotenti indotte (hiPSCs)9. Gli sferoidi 3D epatici bioingegnerizzati sono di particolare interesse per lo studio dello sviluppo, della tossicità, delle malattie genetiche e infettive del fegato, nonché nella scoperta di farmaci per il trattamento delle malattie del fegato10. Infine, hanno anche il potenziale per essere utilizzati clinicamente, sapendo che le malattie epatiche acute hanno un tasso di mortalità di quasi l’80%, il fegato bio-artificiale e / o gli sferoidi epatici potrebbero potenzialmente salvare questi pazienti fornendo una funzionalità epatica parziale fino a quando non si trova un donatore adatto11.

Abbiamo stabilito un protocollo per la generazione di sferoidi epatici umani utilizzando cellule staminali pluripotenti derivate dal sangue (BD-PSCs) per preparare sferoidi di dimensioni diverse contenenti da 4000 a 1 x 106 cellule e analizzarli mediante microscopia ottica e immunofluorescenza. Abbiamo anche testato la capacità della funzione specifica degli epatociti, valutando l’espressione degli enzimi del citocromo P450 3A4 (CYP3A4) e 2E1 (CYP2E1) che appartengono alla famiglia del citocromo P450 che hanno ruoli importanti nel metabolismo cellulare e dei farmaci attraverso il processo di disintossicazione12.

Protocol

È stata ottenuta l’approvazione etica (ACA CELL Biotech GmbH/25b-5482.2-64-1) per l’esecuzione di questi esperimenti e il consenso informato è stato firmato da tutti i donatori prima dell’estrazione del sangue in conformità con le linee guida istituzionali. 1. Preparazione di cellule mononucleate (MNC) dal sangue periferico umano (PB) Estrarre 30 ml di sangue da donatori sani con l’aiuto di personale medico addestrato secondo il protocollo standard. Isol…

Representative Results

Abbiamo differenziato con successo le BD-PSC umane in cellule progenitrici endodermiche/epatiche ed epatociti applicando un protocollo in due fasi. I cambiamenti morfologici durante il processo di differenziazione epatica sono mostrati nella Figura 1. Le BD-PSC si differenziano in epatociti che attraversano tre diverse fasi. Il primo stadio rappresenta la differenziazione in cellule endodermiche L4, il secondo, la differenziazione in cellule progenitrici epatiche (epatoblasto) L8, che mostra…

Discussion

Il fegato è un organo importante nel corpo umano con molte funzioni biologiche essenziali, come la disintossicazione dei metaboliti. A causa di gravi insufficienza epatica come la cirrosi e / o l’epatite virale, ci sono quasi 2 milioni di morti all’anno in tutto il mondo. I trapianti di fegato sono al secondo posto nei trapianti di organi solidi in tutto il mondo, ma solo circa il 10% del fabbisogno attuale è soddisfatto22.

Gli epatociti umani primari (PHH) sono spess…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori sono particolarmente grati per l’assistenza tecnica fornita da Oksana e John Greenacre. Questo lavoro è stato sostenuto da ACA CELL Biotech GmbH Heidelberg, Germania.

Materials

Albumin antibody Sigma-Aldrich SAB3500217 produced in chicken
Albumin Fraction V Carl Roth GmbH+Co. KG T8444.4
Alpha-1 Fetoprotein Proteintech Germany GmbH 14550-1-AP rabbit polyclonal IgG
Biolaminin 111 LN BioLamina  LN111-02 human recombinant
CD45 MicroBeads Miltenyi 130-045-801 nano-sized magnetic beads
Cell Strainer pluriSelect 43-10040-40
CellSens  Olympus imaging software
Centrifuge tubes 50 mL  Greiner Bio-One 210270
CEROplate 96 well OLS OMNI Life Science 2800-109-96
CKX53  Olympus
Commercially available detergent Procter & Gamble nonionic detergent
CYP2E1-specific antibody Proteintech Germany GmbH 19937-1-AP rabbit polyclonal antibody IgG
CYP3A4  Proteintech Germany GmbH 67110-1-lg mouse monoclonal antibody IgG1
Cytokeratin 18 DakoCytomation M7010 mouse monoclonal antibody IgG1
DMSO Sigma-Aldrich D8418-50ML
DPBS Thermo Fisher Scientific 14040091
FBS Merck Millipore S0115/1030B Discontinued. Available under: TMS-013-B
Glass cover slips 14 mm R. Langenbrinck 01-0014/1
GlutaMax 100x Gibco Thermo Fisher Scientific 35050038 L-glutamine
Glutaraldehyde 25% Sigma-Aldrich G588.2-50ML
Goat anti-mouse IgG Cy3 Antibodies online ABIN1673767 polyclonal
Goat anti-mouse IgG DyLight 488 Antibodies online ABIN1889284 polyclonal
Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 488 Life Technologies A-11008
HCl Sigma-Aldrich 30721-1LGL
HepatoZYME-SFM  Thermo Fisher Scientific 17705021 hepatocyte maturation medium
HGF Thermo Fisher Scientific PHG0324 human recombinant
HNF4α antibody Sigma-Aldrich ZRB1457-25UL clone 4C19 ZooMAb Rbmono
Hydrocortisone 21-hemisuccinate (sodium salt) Biomol Cay18226-100
Knock out Serum Replacement – Multi Species Gibco Fisher Scientific A3181501 KSR
KnockOut DMEM/F-12 Thermo Fisher Scientific 12660012 Discontinued. Available under Catalog No. 10-828-010
MACS Buffer Miltenyi 130-091-221
MACS MultiStand Miltenyi 130-042-303 magnetic stand
MEM NEAA 100x Gibco Thermo Fisher Scientific 11140035
Mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 31350010 50mM
MiniMACS columns Miltenyi 130-042-201
Nunclon Multidishes Sigma-Aldrich D6789 4 well plates
Oncostatin M Thermo Fisher Scientific PHC5015 human recombinant
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127
PBS sterile Carl Roth GmbH+Co. KG 9143.2
Penicillin/Streptomycin Biochrom GmbH A2213 10000 U/ml
PS 15ml tubes sterile Greiner Bio-One 188171
Rabbit anti-chicken IgG Texas red Antibodies online ABIN637943
Roti Cell Iscoves MDM Carl Roth GmbH+Co. KG 9033.1
Roti Mount FluorCare DAPI Carl Roth GmbH+Co. KG HP20.1
Roti Sep 1077 human Carl Roth GmbH+Co. KG 0642.2
Transthyretin antibody  Sigma-Aldrich SAB3500378 produced in chicken
Triton X-100 Thermo Fisher Scientific HFH10 1%

Referências

  1. Fennema, E., Rivron, N., Rouwkema, J., van Blitterswijk, C., de Boer, J. Spheroid culture as a tool for creating 3D complex tissues. Trends in Biotechnology. 31 (2), 108-115 (2013).
  2. Ryu, N. E., Lee, S. H., Park, H. Spheroid culture system methods and applications for mesenchymal stem cells. Cells. 8 (12), 1620 (2019).
  3. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  4. Ingelman-Sundberg, M., Lauschke, V. M. 3D human liver spheroids for translational pharmacology and toxicology. Basic and Clinical Pharmacology and Toxicology. 130, 5-15 (2022).
  5. Nelson, C. M., Bissell, M. J. Of extracellular matrix, scaffolds, and signalling: tissue architecture regulates development, homeostasis, and cancer. Annual review of cell and developmental biology. 22, 287-309 (2006).
  6. Khanna, S., Chauhan, A., Bhatt, A. N., Dwarakanath, B. S. R. Multicellular tumor spheroids as in vitro models for studying tumor responses to anticancer therapies. Animal Biotechnology (Second Edition). , 251-268 (2020).
  7. Rossi, G., Manfrin, A., Lutolf, M. P. Progress and potential in organoid research. Nature Reviews Genetics. 19 (11), 671-687 (2018).
  8. Riede, J., Wollmann, B. M., Molden, E., Ingelman-Sundberg, M. Primary human hepatocyte spheroids as an in vitro tool for investigating drug compounds with low clearance. Drug metabolism and disposition: The Biological Fate of Chemicals. 49 (7), 501-508 (2021).
  9. Soto-Gutierrez, A., et al. Differentiating stem cells into liver. Biotechnology & Genetic Engineering Reviews. 25, 149-163 (2008).
  10. Hurrell, T., et al. Human liver spheroids as a model to study aetiology and treatment of hepatic fibrosis. Cells. 9 (4), 964 (2020).
  11. Chen, S., et al. Hepatic spheroids derived from human induced pluripotent stem cells in bio-artificial liver rescue porcine acute liver failure. Cell Research. 30 (1), 95-97 (2020).
  12. Zhao, M., et al. Cytochrome P450 enzymes and drug metabolism in humans. International Journal of Molecular Sciences. 22 (23), 12808 (2021).
  13. Becker-Kojić, Z. A., Schott, A. K., Zipančić, I., Hernández-Rabaza, V. GM-Free generation of blood-derived neuronal cells. Journal of Visualized Experiments. (168), e61634 (2021).
  14. Marchenko, S., Flanagan, L. Immunocytochemistry: Human neural stem cells. Journal of Visualized Experiments. (7), e267 (2007).
  15. Crandall, B. F. Alpha-fetoprotein: a review. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences. 15 (2), 127-185 (1981).
  16. Magalhães, J., Eira, J., Liz, M. A. The role of transthyretin in cell biology: impact on human pathophysiology. Cellular and Molecular Life Sciences 2021. 78 (17-18), 6105-6117 (2021).
  17. Huck, I., Gunewardena, S., Espanol-Suner, R., Willenbring, H., Apte, U. Hepatocyte nuclear factor 4 alpha activation is essential for termination of liver regeneration in mice. Hepatology. 70 (2), 666-681 (2019).
  18. Korver, S., et al. The application of cytokeratin-18 as a biomarker for drug-induced liver injury. Archives of Toxicology. 95 (11), 3435-3448 (2021).
  19. Klyushova, L. S., Perepechaeva, M. L., Grishanova, A. Y. The role of CYP3A in health and disease. Biomedicines. 10 (11), 2686 (2022).
  20. Fujino, C., Sanoh, S., Katsura, T. Variation in expression of cytochrome P450 3A isoforms and toxicological effects: endo- and exogenous substances as regulatory factors and substrates. Biological & Pharmaceutical Bulletin. 44 (11), 1617-1634 (2021).
  21. Hutchinson, M. R., Menelaou, A., Foster, D. J., Coller, J. K., Somogyi, A. A. CYP2D6 and CYP3A4 involvement in the primary oxidative metabolism of hydrocodone by human liver microsomes. British Journal of Clinical Pharmacology. 57 (3), 287-297 (2004).
  22. Asrani, S. K., Devarbhavi, H., Eaton, J., Kamath, P. S. Burden of liver diseases in the world. Journal of Hepatology. 70 (1), 151-171 (2019).
  23. Kammerer, S. Three-dimensional liver culture systems to maintain primary hepatic properties for toxicological analysis in vitro. International Journal of Molecular Sciences. 22 (19), 10214 (2021).
check_url/pt/64703?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Schott, A., Zipančić, I., Hernández-Rabaza, V., Becker-Kojić, Z. A. Human Liver Spheroids from Peripheral Blood for Liver Disease Studies. J. Vis. Exp. (191), e64703, doi:10.3791/64703 (2023).

View Video