Summary

Opstellen van een diafysair femurfractuurmodel bij muizen

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een chirurgische ingreep voor het vaststellen van een diafysaire fractuur in het dijbeen van muizen, die wordt gestabiliseerd met een intramedullaire draad, voor onderzoeken naar fractuurgenezing.

Abstract

Botten hebben een aanzienlijk regeneratief vermogen. Fractuurgenezing is echter een complex proces en afhankelijk van de ernst van de laesies en de leeftijd en algehele gezondheidstoestand van de patiënt, kunnen storingen optreden, wat leidt tot vertraagde vereniging of non-union. Vanwege het toenemende aantal fracturen als gevolg van hoogenergetisch trauma en veroudering, is de ontwikkeling van innovatieve therapeutische strategieën om botherstel te verbeteren op basis van de combinatie van skelet-/mesenchymale stam-/stromale cellen en biomimetische biomaterialen dringend nodig. Daartoe is het gebruik van betrouwbare diermodellen van fundamenteel belang voor een beter begrip van de belangrijkste cellulaire en moleculaire mechanismen die de genezingsresultaten bepalen. Van alle modellen is de muis het geprefereerde onderzoeksmodel omdat het een breed scala aan transgene stammen en reagentia biedt voor experimentele analyse. Het vaststellen van fracturen bij muizen kan echter technisch uitdagend zijn vanwege hun kleine formaat. Daarom heeft dit artikel tot doel de procedures te demonstreren voor de chirurgische vaststelling van een diafysaire dijbeenfractuur bij muizen, die wordt gestabiliseerd met een intramedullaire draad en lijkt op het meest voorkomende botherstelproces, door middel van kraakbeenachtige eeltvorming.

Introduction

Het skelet is een vitaal en functioneel veelzijdig orgaan. De botten van het skelet maken lichaamshouding en beweging mogelijk, beschermen de inwendige organen, produceren hormonen die fysiologische reacties integreren en zijn de plaats van hematopoëse en opslag vanmineralen1. Als botten worden gebroken, hebben ze een opmerkelijk vermogen om te regenereren en hun vorm en functie van vóór de verwonding volledig te herstellen. Het genezingsproces begint met de vorming van een hematoom en een ontstekingsreactie, die de activering en condensatie van skeletstam-/voorlopercellen uit het periosteum, endosteum en beenmerg induceert en hun daaropvolgende differentiatie om de zachte kraakbeenachtige callus te vormen. Het overbruggen van de gebroken uiteinden vindt dan plaats door een proces dat lijkt op endochondrale botvorming, waarbij de kraakbeensteiger uitzet en vervolgens mineraliseert, waardoor de harde botachtige callus wordt gevormd. Ten slotte wordt het harde eelt geleidelijk gemodelleerd door osteoclasten en osteoblasten om de oorspronkelijke botstructuur te herstellen 2,3.

Hoewel het genezingsproces van de fractuur redelijk robuust is, omvat het een ingewikkelde optelling van gebeurtenissen en wordt het aanzienlijk beïnvloed door verschillende individuele factoren, waaronder de algemene gezondheidstoestand, leeftijd en geslacht van de patiënt, evenals letselfactoren, zoals de wijze van mechanische stabilisatie van het gebroken bot, het optreden van infectie en de ernst van het omringende letsel aan zacht weefsel4, 5,6. Daarom komen mislukkingen vaak voor, wat leidt tot de ontwikkeling van non-union, wat grote gevolgen heeft voor de revalidatie van de patiënt en de kwaliteit van leven7,8. Door het toenemende aantal fracturen als gevolg van hoogenergetisch trauma en veroudering, evenals de hoge kosten van behandelingen, zijn non-unionfracturen een last geworden voor gezondheidsstelsels wereldwijd 9,10. Deze toenemende belasting benadrukt de dringende behoefte aan innovatieve therapeutische strategieën om botherstel te verbeteren11,12 op basis van de combinatie van skelet-/mesenchymale stam-/stromale cellen en biomimetische biomaterialen13,14.

Bij het nastreven van dit doel zijn diermodellen op grote schaal gebruikt in studies die gericht zijn op het begrijpen van de fundamentele biologie van fractuurgenezingsmechanismen en in proof-of-concept preklinische studies die gericht zijn op het bedenken van nieuwe therapeutische strategieën om botherstel te bevorderen 15,16,17. Modellen van kleine dieren, zoals de muis, zijn uitstekend geschikt voor onderzoek naar de genezing van breuken vanwege de brede beschikbaarheid van genetisch gemodificeerde stammen en reagentia voor experimentele analyses en hun lage onderhoudskosten. Bovendien hebben muizen een snel genezingsverloop, waardoor alle stadia van het herstelproces in de tijd kunnen worden geanalyseerd15. De kleine omvang van het dier kan echter een uitdaging vormen voor de chirurgische productie van fracturen met fixatiemodi die vergelijkbaar zijn met die bij mensen. Dit protocol beschrijft een eenvoudig en goedkoop model van fractuurgenezing bij muizen met behulp van een open femorale osteotomie gestabiliseerd met een intramedullaire draad, die lijkt op het meest voorkomende botherstelproces, door kraakbeenachtige callusvorming, en kan worden gebruikt in zowel basis- als translationeel onderzoek waarbij toegang tot de fractuurplaats vereist is.

Protocol

Alle experimenten werden goedgekeurd door het Animal Use and Care Committee van het Centrum voor Gezondheidswetenschappen van de Federale Universiteit van Rio de Janeiro (protocolnummer 101/21). Mannelijke Balb/c-muizen op een leeftijd van 10-12 weken (25-30 g lichaamsgewicht) werden in dit onderzoek gebruikt. De chirurgische ingreep duurt ongeveer 15-20 minuten per muis. Vóór elke ingreep moeten de vereiste instrumenten (vermeld in de materiaaltabel) worden opgesteld over een steriel operatieveld dat …

Representative Results

De meest eenvoudige en directe manier om het succes van de chirurgische ingreep bij het produceren van de fractuur te evalueren, is röntgenbeeldvorming. Röntgenfoto’s kunnen onmiddellijk na de operatie worden uitgevoerd, terwijl de muis nog steeds onder narcose is, en vervolgens 7 dagen, 14 dagen en 21 dagen na de fractuur om de eeltvorming en progressie te evalueren. Aanvaardbare breukpatronen zijn die waarbij de cortex volledig is gescheurd, de draden correct in het medullaire kanaal zijn geplaatst en de breuklijnen …

Discussion

Naarmate het aantal fracturen wereldwijd toeneemt 9,10,25, worden innovatieve behandelingen voor non-union steeds urgenter. Aangezien fractuurgenezing een complexe en strak georkestreerde opsomming is van gebeurtenissen die zich over een lange tijdschaal voordoen3, is het gebruik van geldige diermodellen van cruciaal belang voor het verbeteren van ons begrip van de mechanismen die het succes van botherste…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door de Carlos Chagas Filho Foundation for Research Support van de staat Rio de Janeiro (FAPERJ).

Materials

Alcohol 70º Merck 109-56-8 Or any general available supplier
Canada balsam (mounting medium) Merck C1795 Or any general available supplier
Cefazoline ABL Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Coverslip Merck CSL284525 Or any general available supplier
Dental X-Ray Generator Focus Sold by Instrumentarium Dental Inc. 
DEPC water Merck W4502 Or any general available supplier
Dissecting Scissor ABC Instrumentos 0327 Similar brands of the item may be used according to local availability
EDTA Vetec 60REAVET014340 Similar brands of the item may be used according to local availability
Eosin solution Laborclin EA-65 Similar brands of the item may be used according to local availability
Ethanol P.A Vetec 60REAVET012053 Similar brands of the item may be used according to local availability
Gauze pads Cremer Not applicable Or any general available supplier
Harris Hematoxylin Solution Laborclin 620503 Similar brands of the item may be used according to local availability
Heating pad Tonkey Electrical Technology E114273 Similar brands of the item may be used according to local availability
Histological slides Merck CSL294875X25 Or any general available supplier
Histology cassettes Merck H0542-1CS Or any general available supplier
Hydrochloric acid – 37% Merck 258148 Similar brands of the item may be used according to local availability
Insulin syringe BD 324918 Or any general available supplier
Iodopovidone sponge Rioquímica 372106 Or any general available supplier
Ketamine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Lacribel collyrium Cristalia Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Microtome Leica 149AUTO00C1
Mouse Tooth Forceps Tweezer ABC Instrumentos 0164 Similar brands of the item may be used according to local availability
Needle 26 G BD 2239 Or any general available supplier
Needle Holder  Golgran 135-18 Similar brands of the item may be used according to local availability
Nonresorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1546-NT Or any general available supplier
Paraffin Exodo 8002 – 74 – 2 Similar brands of the item may be used according to local availability
Paraformaldehyde Sigma 30525-89-4 Similar brands of the item may be used according to local availability
PBS 1x  Lonza  BE17-516F Similar brands of the item may be used according to local availability
Resorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1596-45B Or any general available supplier
Rod Wire SS CrNi 0.016" Orthometric 56.50.2016
Scalpel nº 11 Descarpak 15782 Or any general available supplier
Serrated Tip Tweezer Quinelato QC.404.12 Similar brands of the item may be used according to local availability
Shaver Phillips Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Surgical tape 3M 2734 Or any general available supplier
Surgical tnt field Polarfix 6153 Or any general available supplier
Tramadol hydrochloride Teuto  Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Water bath for histology Leica HI1210
Xylazine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Xylene Dinamica 60READIN001105 Similar brands of the item may be used according to local availability

Referências

  1. Florencio-Silva, R., Sasso, G. R., Sasso-Cerri, E., Simoes, M. J., Cerri, P. S. Biology of bone tissue: Structure, function, and factors that influence bone cells. BioMed Research International. 2015, 421746 (2015).
  2. Bahney, C. S., et al. Cellular biology of fracture healing. Journal of Orthopedic Research. 37 (1), 35-50 (2019).
  3. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11 (1), 45-54 (2015).
  4. Perren, S. M. Fracture healing: Fracture healing understood as the result of a fascinating cascade of physical and biological interactions. Part II. Acta Chirurgiae Orthopaedicae et Traumatologiae Cechoslovaca. 82 (1), 13-21 (2015).
  5. Giannoudis, P. V., Krettek, C., Lowenberg, D. W., Tosounidis, T., Borrelli, J. Fracture healing adjuncts-The world’s perspective on what works. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 43-47 (2018).
  6. Kates, S. L., et al. Outside the bone: What is happening systemically to influence fracture healing. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 33-36 (2018).
  7. Ding, Z. C., Lin, Y. K., Gan, Y. K., Tang, T. T. Molecular pathogenesis of fracture nonunion. Journal of Orthopaedic Translation. (14), 45-56 (2018).
  8. Calori, G. M., et al. Non-unions. Clinical Cases in Mineral Bone Metabolism. 14 (2), 186-188 (2017).
  9. Ekegren, C. L., Edwards, E. R., de Steiger, R., Gabbe, B. J. Incidence, costs and predictors of non-union, delayed union and mal-union following long bone fracture. Internation Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (12), 2845 (2018).
  10. Aziziyeh, R., et al. The burden of osteoporosis in four Latin American countries: Brazil, Mexico, Colombia, and Argentina. Journal of Medical Economics. 22 (7), 638-644 (2019).
  11. Kostenuik, P., Mirza, F. M. Fracture healing physiology and the quest for therapies for delayed healing and nonunion. Journal of Orthopaedic Research. 35 (2), 213-223 (2017).
  12. Gomez-Barrena, E., et al. fracture healing: cell therapy in delayed unions and nonunions. Bone. 70, 93-101 (2015).
  13. Schlundt, C., et al. Clinical and research approaches to treat non-union fracture. Current Osteoporosis Reports. 16 (2), 155-168 (2018).
  14. Gomez-Barrena, E., et al. Feasibility and safety of treating non-unions in tibia, femur and humerus with autologous, expanded, bone marrow-derived mesenchymal stromal cells associated with biphasic calcium phosphate biomaterials in a multicentric, non-comparative trial. Biomaterials. 196, 100-108 (2018).
  15. Ryan, G., et al. Systemically impaired fracture healing in small animal research: A review of fracture repair models. Journal of Orthopedic Research. 39 (7), 1359-1367 (2021).
  16. Marmor, M. T., Dailey, H., Marcucio, R., Hunt, A. C. Biomedical research models in the science of fracture healing – Pitfalls & promises. Injury. 51 (10), 2118-2128 (2020).
  17. Schindeler, A., Mills, R. J., Bobyn, J. D., Little, D. G. Preclinical models for orthopedic research and bone tissue engineering. Journal of Orthopedic Research. 36 (3), 832-840 (2018).
  18. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (2), 5563 (2011).
  19. Stollings, L. M., et al. Immune modulation by volatile anesthetics. Anesthesiology. 125 (2), 399-411 (2016).
  20. Sedghi, S., Kutscher, H. L., Davidson, B. A., Knight, P. R. Volatile anesthetics and immunity. Immunological Investigations. 46 (8), 793-804 (2017).
  21. Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).
  22. Komárek, V., Hedrich, H. J. Chapter 2.2. Gross anatomy. The Laboratory Mouse (Second Edition). , 145-159 (2012).
  23. Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation. Journal of Visualized Experiments. (110), e53936 (2016).
  24. An, Y. H., Moreira, P. L., Kang, Q. K., Gruber, H. E., An, Y. H., Martin, K. L. Principles of embedding and common protocols. Handbook of Histology Methods for Bone and Cartilage. , 185-197 (2003).
  25. Enninghorst, N., McDougall, D., Evans, J. A., Sisak, K., Balogh, Z. J. Population-based epidemiology of femur shaft fractures. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 74 (6), 1516-1520 (2013).
  26. Gunderson, Z. J., Campbell, Z. R., McKinley, T. O., Natoli, R. M., Kacena, M. A. A comprehensive review of mouse diaphyseal femur fracture models. Injury. 51 (7), 1439-1447 (2020).
  27. Haffner-Luntzer, M., Fischer, V., Ignatius, A. Differences in fracture healing between female and male C57BL/6J mice. Frontiers in Physiology. 12, 712494 (2021).
  28. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  29. Streubel, P. N., Desai, P., Suk, M. Comparison of RIA and conventional reamed nailing for treatment of femur shaft fractures. Injury. 41, 51-56 (2010).
check_url/pt/64766?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Braga Frade, B., Dias da Cunha Muller, L., Bonfim, D. C. Establishing a Diaphyseal Femur Fracture Model in Mice. J. Vis. Exp. (190), e64766, doi:10.3791/64766 (2022).

View Video