Summary

Farelerde Diafiz Femur Kırığı Modelinin Kurulması

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Bu protokol, kırık iyileşme çalışmaları için intramedüller tel ile stabilize edilen farelerin uyluk kemiğinde diyafiz kırığı oluşturulması için cerrahi bir prosedürü açıklar.

Abstract

Kemikler önemli bir rejeneratif kapasiteye sahiptir. Bununla birlikte, kırık iyileşmesi karmaşık bir süreçtir ve lezyonların ciddiyetine ve hastanın yaşına ve genel sağlık durumuna bağlı olarak, gecikmiş kaynama veya kaynamama ile sonuçlanan başarısızlıklar meydana gelebilir. Yüksek enerjili travma ve yaşlanmadan kaynaklanan kırık sayısının artması nedeniyle, iskelet/mezenkimal kök/stromal hücreler ve biyomimetik biyomateryallerin kombinasyonuna dayalı kemik onarımını iyileştirmek için yenilikçi terapötik stratejilerin geliştirilmesine acilen ihtiyaç duyulmaktadır. Bu amaçla, güvenilir hayvan modellerinin kullanılması, iyileşme sonuçlarını belirleyen temel hücresel ve moleküler mekanizmaları daha iyi anlamak için esastır. Tüm modeller arasında fare, deneysel analiz için çok çeşitli transgenik suşlar ve reaktifler sunduğu için tercih edilen araştırma modelidir. Bununla birlikte, farelerde kırıkların oluşturulması, küçük boyutları nedeniyle teknik olarak zor olabilir. Bu nedenle, bu makale, farelerde intramedüller tel ile stabilize edilen ve en sık görülen kemik onarım sürecini andıran diyafiz femur kırığının kıkırdaklı kallus oluşumu yoluyla cerrahi olarak oluşturulmasına yönelik prosedürleri göstermeyi amaçlamaktadır.

Introduction

İskelet, hayati ve işlevsel olarak çok yönlü bir organdır. İskeletin kemikleri vücut duruşunu ve hareketini sağlar, iç organları korur, fizyolojik tepkileri bütünleştiren hormonlar üretir ve hematopoez ve mineral depolama alanıdır1. Kırılırsa, kemikler yaralanma öncesi form ve işlevlerini yenilemek ve tamamen eski haline getirmek için dikkate değer bir kapasiteye sahiptir. İyileşme süreci, periost, endosteum ve kemik iliğinden iskelet kökü/progenitör hücrelerinin aktivasyonunu ve yoğunlaşmasını ve ardından yumuşak kıkırdaklı kallusu oluşturmak üzere farklılaşmasını indükleyen bir hematom ve enflamatuar bir yanıt oluşumu ile başlar. Kırık uçların köprülenmesi daha sonra, kıkırdaklı iskelenin genişlediği ve daha sonra mineralleşerek sert kemikli nasırı oluşturduğu endokondral kemik oluşumuna benzeyen bir süreçle gerçekleşir. Son olarak, sert nasır, orijinal kemik yapısını eski haline getirmek için osteoklastlar ve osteoblastlar tarafından kademeli olarak yeniden şekillendirilir 2,3.

Kırık iyileşme süreci oldukça sağlam olmasına rağmen, olayların karmaşık bir özetini içerir ve hastanın genel sağlık durumu, yaşı ve cinsiyeti gibi çeşitli bireysel faktörlerin yanı sıra kırık kemiğin mekanik stabilizasyon modu, enfeksiyon oluşumu ve çevredeki yumuşak doku yaralanmasının ciddiyeti gibi yaralanma faktörlerinden önemli ölçüde etkilenir4, 5,6. Bu nedenle, başarısızlıklar yaygındır ve hasta rehabilitasyonunu ve yaşam kalitesini büyük ölçüde etkileyen kaynamama gelişimine yol açar 7,8. Yüksek enerjili travma ve yaşlanma sonucu artan kırık sayısı ve tedavi maliyetlerinin yüksek olması nedeniyle kaynamayan kırıklar dünya çapında sağlık sistemleri için bir yük haline gelmiştir 9,10. Bu artan yük, iskelet/mezenkimal kök/stromal hücreler ve biyomimetik biyomateryallerin 13,14 kombinasyonuna dayalı olarak kemik onarımını11,12 iyileştirmek için yenilikçi terapötik stratejilere olan acil ihtiyacı vurgulamaktadır.

Bu amaç doğrultusunda, kırık iyileşme mekanizmalarının temel biyolojisini anlamayı amaçlayan çalışmalarda ve kemik onarımını desteklemek için yeni terapötik stratejiler geliştirmeyi amaçlayan kavram kanıtı klinik öncesi çalışmalarda hayvan modelleri yaygın olarak kullanılmaktadır 15,16,17. Fare gibi küçük hayvan modelleri, deneysel analizler için genetiği değiştirilmiş suşların ve reaktiflerin geniş mevcudiyeti ve düşük bakım maliyetleri nedeniyle kırık iyileştirme çalışmaları için mükemmeldir. Ek olarak, fareler, onarım sürecinin tüm aşamalarının zamansal analizine izin veren hızlı bir iyileşme süresi seyrine sahiptir15. Bununla birlikte, hayvanın küçük boyutu, insanlarda uygulananlara benzer fiksasyon modlarına sahip kırıkların cerrahi üretimi için zorluklar oluşturabilir. Bu protokol, kıkırdaklı kallus oluşumu yoluyla en yaygın kemik onarım sürecine benzeyen intramedüller tel ile stabilize edilmiş açık bir femoral osteotomi kullanan farelerde basit ve düşük maliyetli bir kırık iyileşmesi modelini tanımlar ve kırık bölgesine erişimin gerekli olduğu hem temel hem de translasyonel araştırmalarda kullanılabilir.

Protocol

Tüm deneyler, Rio de Janeiro Federal Üniversitesi Sağlık Bilimleri Merkezi’nin Hayvan Kullanımı ve Bakımı Komitesi tarafından onaylandı (Protokol Numarası 101/21). Bu çalışmada 10-12 haftalıkken (25-30 g vücut ağırlığı) erkek Balb/c fareler kullanıldı. Cerrahi işlem fare başına yaklaşık 15-20 dakika sürer. Her prosedürden önce, gerekli aletler ( Malzeme Tablosunda listelenmiştir) ameliyat masasını kaplayan steril bir cerrahi alan üzerinde düzenlenmelidir (<strong class…

Representative Results

Cerrahi prosedürün kırığı üretmedeki başarısını değerlendirmenin en basit ve hızlı yolu X-ışını görüntülemedir. Radyografiler ameliyattan hemen sonra, fare hala anestezi altındayken ve ardından nasır oluşumunu ve ilerlemesini değerlendirmek için kırıktan 7 gün, 14 gün ve 21 gün sonra yapılabilir. Kabul edilebilir kırık paternleri, kortekslerin tamamen yırtıldığı, tellerin medüller kanal içine doğru yerleştirildiği ve kırık hatlarının enine (kemiğin eksenine 90°’lik bir a…

Discussion

Dünya çapında kırık sayısıarttıkça 9,10,25, kaynamama için yenilikçi tedaviler giderek daha acil hale gelmektedir. Kırık iyileşmesi, uzun bir zaman ölçeğindemeydana gelen olayların karmaşık ve sıkı bir şekilde düzenlenmiş bir toplamını içerdiğinden3, geçerli hayvan modellerinin kullanılması, kemik onarımının başarısını belirleyen mekanizmaları anlamamızı ve etkili…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Rio de Janeiro Eyaleti Araştırma Desteği için Carlos Chagas Filho Vakfı (FAPERJ) tarafından finanse edilmiştir.

Materials

Alcohol 70º Merck 109-56-8 Or any general available supplier
Canada balsam (mounting medium) Merck C1795 Or any general available supplier
Cefazoline ABL Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Coverslip Merck CSL284525 Or any general available supplier
Dental X-Ray Generator Focus Sold by Instrumentarium Dental Inc. 
DEPC water Merck W4502 Or any general available supplier
Dissecting Scissor ABC Instrumentos 0327 Similar brands of the item may be used according to local availability
EDTA Vetec 60REAVET014340 Similar brands of the item may be used according to local availability
Eosin solution Laborclin EA-65 Similar brands of the item may be used according to local availability
Ethanol P.A Vetec 60REAVET012053 Similar brands of the item may be used according to local availability
Gauze pads Cremer Not applicable Or any general available supplier
Harris Hematoxylin Solution Laborclin 620503 Similar brands of the item may be used according to local availability
Heating pad Tonkey Electrical Technology E114273 Similar brands of the item may be used according to local availability
Histological slides Merck CSL294875X25 Or any general available supplier
Histology cassettes Merck H0542-1CS Or any general available supplier
Hydrochloric acid – 37% Merck 258148 Similar brands of the item may be used according to local availability
Insulin syringe BD 324918 Or any general available supplier
Iodopovidone sponge Rioquímica 372106 Or any general available supplier
Ketamine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Lacribel collyrium Cristalia Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Microtome Leica 149AUTO00C1
Mouse Tooth Forceps Tweezer ABC Instrumentos 0164 Similar brands of the item may be used according to local availability
Needle 26 G BD 2239 Or any general available supplier
Needle Holder  Golgran 135-18 Similar brands of the item may be used according to local availability
Nonresorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1546-NT Or any general available supplier
Paraffin Exodo 8002 – 74 – 2 Similar brands of the item may be used according to local availability
Paraformaldehyde Sigma 30525-89-4 Similar brands of the item may be used according to local availability
PBS 1x  Lonza  BE17-516F Similar brands of the item may be used according to local availability
Resorbable Nylon Suture thread nº 6 Atramat C1596-45B Or any general available supplier
Rod Wire SS CrNi 0.016" Orthometric 56.50.2016
Scalpel nº 11 Descarpak 15782 Or any general available supplier
Serrated Tip Tweezer Quinelato QC.404.12 Similar brands of the item may be used according to local availability
Shaver Phillips Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Surgical tape 3M 2734 Or any general available supplier
Surgical tnt field Polarfix 6153 Or any general available supplier
Tramadol hydrochloride Teuto  Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Water bath for histology Leica HI1210
Xylazine hydrochloride Ceva Not applicable Similar brands of the item may be used according to local availability
Xylene Dinamica 60READIN001105 Similar brands of the item may be used according to local availability

Referências

  1. Florencio-Silva, R., Sasso, G. R., Sasso-Cerri, E., Simoes, M. J., Cerri, P. S. Biology of bone tissue: Structure, function, and factors that influence bone cells. BioMed Research International. 2015, 421746 (2015).
  2. Bahney, C. S., et al. Cellular biology of fracture healing. Journal of Orthopedic Research. 37 (1), 35-50 (2019).
  3. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11 (1), 45-54 (2015).
  4. Perren, S. M. Fracture healing: Fracture healing understood as the result of a fascinating cascade of physical and biological interactions. Part II. Acta Chirurgiae Orthopaedicae et Traumatologiae Cechoslovaca. 82 (1), 13-21 (2015).
  5. Giannoudis, P. V., Krettek, C., Lowenberg, D. W., Tosounidis, T., Borrelli, J. Fracture healing adjuncts-The world’s perspective on what works. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 43-47 (2018).
  6. Kates, S. L., et al. Outside the bone: What is happening systemically to influence fracture healing. Journal of Orthopaedic Trauma. 32, 33-36 (2018).
  7. Ding, Z. C., Lin, Y. K., Gan, Y. K., Tang, T. T. Molecular pathogenesis of fracture nonunion. Journal of Orthopaedic Translation. (14), 45-56 (2018).
  8. Calori, G. M., et al. Non-unions. Clinical Cases in Mineral Bone Metabolism. 14 (2), 186-188 (2017).
  9. Ekegren, C. L., Edwards, E. R., de Steiger, R., Gabbe, B. J. Incidence, costs and predictors of non-union, delayed union and mal-union following long bone fracture. Internation Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (12), 2845 (2018).
  10. Aziziyeh, R., et al. The burden of osteoporosis in four Latin American countries: Brazil, Mexico, Colombia, and Argentina. Journal of Medical Economics. 22 (7), 638-644 (2019).
  11. Kostenuik, P., Mirza, F. M. Fracture healing physiology and the quest for therapies for delayed healing and nonunion. Journal of Orthopaedic Research. 35 (2), 213-223 (2017).
  12. Gomez-Barrena, E., et al. fracture healing: cell therapy in delayed unions and nonunions. Bone. 70, 93-101 (2015).
  13. Schlundt, C., et al. Clinical and research approaches to treat non-union fracture. Current Osteoporosis Reports. 16 (2), 155-168 (2018).
  14. Gomez-Barrena, E., et al. Feasibility and safety of treating non-unions in tibia, femur and humerus with autologous, expanded, bone marrow-derived mesenchymal stromal cells associated with biphasic calcium phosphate biomaterials in a multicentric, non-comparative trial. Biomaterials. 196, 100-108 (2018).
  15. Ryan, G., et al. Systemically impaired fracture healing in small animal research: A review of fracture repair models. Journal of Orthopedic Research. 39 (7), 1359-1367 (2021).
  16. Marmor, M. T., Dailey, H., Marcucio, R., Hunt, A. C. Biomedical research models in the science of fracture healing – Pitfalls & promises. Injury. 51 (10), 2118-2128 (2020).
  17. Schindeler, A., Mills, R. J., Bobyn, J. D., Little, D. G. Preclinical models for orthopedic research and bone tissue engineering. Journal of Orthopedic Research. 36 (3), 832-840 (2018).
  18. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (2), 5563 (2011).
  19. Stollings, L. M., et al. Immune modulation by volatile anesthetics. Anesthesiology. 125 (2), 399-411 (2016).
  20. Sedghi, S., Kutscher, H. L., Davidson, B. A., Knight, P. R. Volatile anesthetics and immunity. Immunological Investigations. 46 (8), 793-804 (2017).
  21. Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).
  22. Komárek, V., Hedrich, H. J. Chapter 2.2. Gross anatomy. The Laboratory Mouse (Second Edition). , 145-159 (2012).
  23. Amend, S. R., Valkenburg, K. C., Pienta, K. J. Murine hind limb long bone dissection and bone marrow isolation. Journal of Visualized Experiments. (110), e53936 (2016).
  24. An, Y. H., Moreira, P. L., Kang, Q. K., Gruber, H. E., An, Y. H., Martin, K. L. Principles of embedding and common protocols. Handbook of Histology Methods for Bone and Cartilage. , 185-197 (2003).
  25. Enninghorst, N., McDougall, D., Evans, J. A., Sisak, K., Balogh, Z. J. Population-based epidemiology of femur shaft fractures. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 74 (6), 1516-1520 (2013).
  26. Gunderson, Z. J., Campbell, Z. R., McKinley, T. O., Natoli, R. M., Kacena, M. A. A comprehensive review of mouse diaphyseal femur fracture models. Injury. 51 (7), 1439-1447 (2020).
  27. Haffner-Luntzer, M., Fischer, V., Ignatius, A. Differences in fracture healing between female and male C57BL/6J mice. Frontiers in Physiology. 12, 712494 (2021).
  28. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2 (1), 97-101 (1984).
  29. Streubel, P. N., Desai, P., Suk, M. Comparison of RIA and conventional reamed nailing for treatment of femur shaft fractures. Injury. 41, 51-56 (2010).
check_url/pt/64766?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Braga Frade, B., Dias da Cunha Muller, L., Bonfim, D. C. Establishing a Diaphyseal Femur Fracture Model in Mice. J. Vis. Exp. (190), e64766, doi:10.3791/64766 (2022).

View Video