Summary

इंसुलिन उत्पादक आइलेट समूहों में मानव प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल का भेदभाव

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

आइलेट कोशिकाओं में स्टेम कोशिकाओं का भेदभाव पारंपरिक मधुमेह उपचार और रोग मॉडलिंग के लिए एक वैकल्पिक समाधान प्रदान करता है। हम एक विस्तृत स्टेम सेल संस्कृति प्रोटोकॉल का वर्णन है कि इंसुलिन स्रावित उत्पादन में सहायता करने के लिए एक पहले से मान्य विधि के साथ एक वाणिज्यिक भेदभाव किट को जोड़ती है, एक डिश में स्टेम सेल व्युत्पन्न आइलेट.

Abstract

इंसुलिन-स्रावित बीटा कोशिकाओं में मानव प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (एचपीएससी) का भेदभाव बीटा सेल फ़ंक्शन और मधुमेह उपचार की जांच के लिए सामग्री प्रदान करता है। हालांकि, चुनौतियां स्टेम सेल-व्युत्पन्न बीटा कोशिकाओं को प्राप्त करने में बनी हुई हैं जो पर्याप्त रूप से देशी मानव बीटा कोशिकाओं की नकल करती हैं। पिछले अध्ययनों पर बिल्डिंग, एचपीएससी-व्युत्पन्न आइलेट कोशिकाओं को बेहतर भेदभाव परिणामों और स्थिरता के साथ एक प्रोटोकॉल बनाने के लिए उत्पन्न किया गया है। यहाँ वर्णित प्रोटोकॉल चरण 1-4 के दौरान एक अग्नाशयी पूर्वज किट का उपयोग करता है, एक प्रोटोकॉल पहले से प्रकाशित एक कागज से संशोधित द्वारा पीछा 2014 (इसके बाद “आर प्रोटोकॉल” कहा जाता है) चरण 5-7 के दौरान. अग्नाशयी पूर्वज किट और 400 माइक्रोन व्यास माइक्रोवेल प्लेटों का उपयोग करने के लिए विस्तृत प्रक्रियाओं अग्नाशयी पूर्वज समूहों उत्पन्न करने के लिए, एक 96 अच्छी तरह से स्थिर निलंबन प्रारूप में अंतःस्रावी भेदभाव के लिए आर प्रोटोकॉल, और इन विट्रो लक्षण वर्णन और एचपीएससी व्युत्पन्न आइलेट्स के कार्यात्मक मूल्यांकन में शामिल हैं. पूरा प्रोटोकॉल लेता है 1 प्रारंभिक एचपीएससी विस्तार के लिए सप्ताह के बाद ~ 5 सप्ताह इंसुलिन उत्पादक एचपीएससी आइलेट्स प्राप्त करने के लिए. बुनियादी स्टेम सेल संस्कृति तकनीक और जैविक assays में प्रशिक्षण के साथ कार्मिक इस प्रोटोकॉल पुन: पेश कर सकते हैं.

Introduction

अग्नाशयी बीटा कोशिकाएं रक्त शर्करा के स्तर में वृद्धि का जवाब देने वाले इंसुलिन का स्राव करती हैं। प्रकार में बीटा कोशिकाओं के autoimmune विनाश के कारण पर्याप्त इंसुलिन उत्पादन की कमी रोगियों 1 मधुमेह (T1D)1, या प्रकार में बीटा सेल की शिथिलता के कारण 2 मधुमेह (T2D)2, आमतौर पर exogenous इंसुलिन के प्रशासन के साथ इलाज कर रहे हैं. इस जीवन रक्षक चिकित्सा के बावजूद, यह रक्त शर्करा के उत्तम नियंत्रण से सटीक रूप से मेल नहीं खा सकता है जैसा कि बोना फाइड बीटा कोशिकाओं से गतिशील इंसुलिन स्राव द्वारा प्राप्त किया जाता है। जैसे, रोगियों को अक्सर जीवन-धमकाने वाले हाइपोग्लाइसेमिक एपिसोड और क्रोनिक हाइपरग्लाइसेमिक भ्रमण के परिणामस्वरूप अन्य जटिलताओं के परिणाम भुगतते हैं। मानव कैडेवरिक आइलेट्स का प्रत्यारोपण सफलतापूर्वक T1D रोगियों में तंग ग्लाइसेमिक नियंत्रण को पुनर्स्थापित करता है, लेकिन आइलेट दाताओं की उपलब्धता और प्रत्यारोपण 3,4 के लिए स्वस्थ आइलेट्स को शुद्ध करने में कठिनाइयों से सीमित है। यह चुनौती, सिद्धांत रूप में, वैकल्पिक प्रारंभिक सामग्री के रूप में एचपीएससी का उपयोग करके हल की जा सकती है।

इन विट्रो में एचपीएससी से इंसुलिन-स्रावित आइलेट्स पैदा करने के लिए वर्तमान रणनीतियों का उद्देश्य अक्सर विवो 5,6 में भ्रूण अग्न्याशय के विकास की प्रक्रिया की नकल करना होता है। इसके लिए जिम्मेदार सिग्नलिंग मार्गों के ज्ञान और विकासशील भ्रूण अग्न्याशय के महत्वपूर्ण चरणों की नकल करने के लिए संबंधित घुलनशील कारकों के समयबद्ध जोड़ की आवश्यकता होती है। अग्नाशयी कार्यक्रम निश्चित एंडोडर्म में प्रतिबद्धता के साथ शुरू होता है, जिसे प्रतिलेखन कारक फोर्कहेड बॉक्स A2 (FOXA2) और लिंग-निर्धारण क्षेत्र Y-box 17 (SOX17)7 द्वारा चिह्नित किया जाता है। निश्चित एंडोडर्म के क्रमिक भेदभाव में एक आदिम आंत ट्यूब का गठन शामिल होता है, जो एक पीछे के अग्रभाग में पैटर्न करता है जो अग्नाशयी और ग्रहणी संबंधी होमोबॉक्स 1 (पीडीएक्स 1) 7,8,9 को व्यक्त करता है, और अग्नाशयी पूर्वजों में उपकला विस्तार जो पीडीएक्स 1 और एनके 6 होमोबॉक्स 1 (एनकेएक्स 6.1) 10,11 को सह-व्यक्त करता है।

अंतःस्रावी आइलेट कोशिकाओं के लिए आगे की प्रतिबद्धता प्रो-अंतःस्रावी मास्टर नियामक न्यूरोजेनिन -3 (एनजीएन 3) 12 की क्षणिक अभिव्यक्ति और प्रमुख प्रतिलेखन कारकों न्यूरोनल भेदभाव 1 (NEUROD1) और एनके 2 होमोबॉक्स 2 (एनकेएक्स 2.2) 13 के स्थिर प्रेरण के साथ है। प्रमुख हार्मोन-व्यक्त करने वाली कोशिकाएं, जैसे इंसुलिन-उत्पादक बीटा कोशिकाएं, ग्लूकागन-उत्पादक अल्फा कोशिकाएं, सोमाटोस्टैटिन-उत्पादक डेल्टा कोशिकाएं, और अग्नाशयी पॉलीपेप्टाइड-उत्पादक पीपीवाई कोशिकाएं, बाद में प्रोग्राम की जाती हैं। इस ज्ञान के साथ-साथ व्यापक, उच्च-थ्रूपुट दवा स्क्रीनिंग अध्ययनों से खोजों के साथ, हाल की प्रगति ने एचपीएससी-आइलेट्स की पीढ़ी को इंसुलिन स्राव 14,15,16,17,18,19 में सक्षम बीटा कोशिकाओं के समान कोशिकाओं के साथ सक्षम किया है।

ग्लूकोज-उत्तरदायी बीटा कोशिकाओंको 6,14,18,19 उत्पन्न करने के लिए चरण-वार प्रोटोकॉल की सूचना दी गई है। इन अध्ययनों पर निर्मित, वर्तमान प्रोटोकॉल में एक प्लानर संस्कृति में PDX1+/NKX6.1+ अग्नाशयी पूर्वज कोशिकाओं को उत्पन्न करने के लिए एक अग्नाशयी पूर्वज किट का उपयोग शामिल है, इसके बाद एक समान आकार के समूहों में माइक्रोवेल प्लेट एकत्रीकरण और एक स्थिर 3D निलंबन संस्कृति में आर-प्रोटोकॉल के साथ इंसुलिन-स्रावित एचपीएससी-आइलेट्स की ओर और भेदभाव होता है। प्रवाह साइटोमेट्री, इम्यूनोस्टेनिंग और कार्यात्मक मूल्यांकन सहित गुणवत्ता नियंत्रण विश्लेषण, विभेदक कोशिकाओं के कठोर लक्षण वर्णन के लिए किया जाता है। यह पत्र निर्देशित भेदभाव के प्रत्येक चरण का विस्तृत विवरण प्रदान करता है और इन विट्रो लक्षण वर्णन दृष्टिकोणों की रूपरेखा तैयार करता है।

Protocol

यह प्रोटोकॉल hPSC लाइनों के साथ काम पर आधारित है, जिसमें H1, HUES4 PDXeG, और Mel1 INSGFP/W शामिल हैं, फीडर-मुक्त स्थितियों में। इस खंड में एक चरण-दर-चरण प्रक्रिया विस्तृत है, प्रतिनिधि परिणाम अनुभाग में Mel1 INSGFP/W के भेदभ?…

Representative Results

हम सात चरणों में इंसुलिन-स्रावित एचपीएससी-आइलेट्स में स्टेम कोशिकाओं को अलग करने के लिए एक संकर रणनीति विकसित की, जो प्लानर संस्कृति में पहले चार चरणों के लिए एक अग्नाशयी पूर्वज किट का उपयोग करता है, इस…

Discussion

यह पत्र एक सात चरण हाइब्रिड प्रोटोकॉल का वर्णन करता है जो एचपीएससी आइलेट्स की पीढ़ी के लिए अनुमति देता है जो इन विट्रो में संस्कृति के 40 दिनों के भीतर ग्लूकोज चुनौती पर इंसुलिन को स्रावित करने में स?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम कृतज्ञतापूर्वक STEMCELL टेक्नोलॉजीज, माइकल स्मिथ हेल्थ रिसर्च बीसी, स्टेम सेल नेटवर्क, JDRF, और कनाडा के स्वास्थ्य अनुसंधान संस्थान से समर्थन स्वीकार करते हैं। जिया झाओ और शेंघुई लियांग माइकल स्मिथ हेल्थ रिसर्च बीसी ट्रेनी अवार्ड के प्राप्तकर्ता हैं। मिशेल जेएस ब्राम मितक्स एक्सीलरेट फैलोशिप के प्राप्तकर्ता हैं। Diepiriye G. Iworima अलेक्जेंडर ग्राहम बेल कनाडा ग्रेजुएट स्कॉलरशिप और CFUW 1989 इकोले पॉलिटेक्निक स्मारक पुरस्कार के प्राप्तकर्ता हैं। हम ईमानदारी से एमसीआरआई और मोनाश विश्वविद्यालय से डॉ. एडौर्ड जी स्टेनली को Mel1 INS GFP/W लाइन और अल्बर्टा डायबिटीज इंस्टीट्यूट आइलेट कोर को मानव आइलेट्स को अलग करने और वितरित करने के लिए धन्यवाद देते हैं। हम ब्रिटिश कोलंबिया विश्वविद्यालय में लाइफ साइंसेज इंस्टीट्यूट इमेजिंग और फ्लो साइटोमेट्री सुविधाओं से समर्थन को भी स्वीकार करते हैं। चित्रा 1 BioRender.com के साथ बनाया गया था।

Materials

3,3’,5-Triiodo-L-thyronine (T3) Sigma T6397 Thyroid hormone
4% PFA solution Santa Cruz Biotechnology sc-281692 Should be handled in fume hood
96-Well, Ultralow Attachment, flat bottom Corning Costar (VWR) CLS3474 Flat bottom; for static suspension culture in the last three stages
Accutase STEMCELL Technologies 07920 Dissociation reagent for Stage 4 cells
Aggrewell400 plates STEMCELL Technologies 34415 400 µm diameter microwell plates
Aggrewell800 plates STEMCELL Technologies 34815 800 µm diameter microwell plates
Alexa Fluor 488 Goat anti-Human FOXA2 (goat IgG) R&D Systems IC2400G 1:100 in flow cytometry; used for assaying Stage 1 cells
Alexa Fluor 488 Goat IgG Isotype Control R&D Systems IC108G 1:100 in flow cytometry
Alexa Fluor 488 Mouse anti-Human SST (mouse IgG2B) BD Sciences 566032 1:250 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
Alexa Fluor 488 Mouse IgG2B Isotype Control R&D Systems IC0041G 1:500 in flow cytometry
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human C-peptide (mouse IgG1κ) BD Pharmingen 565831 1:2,000 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human INS (mouse IgG1κ) BD Sciences 565689 1:2,000 in flow cytometry
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human NKX6.1 (mouse IgG1κ) BD Sciences 563338 1:33 in flow cytometry; used for assaying Stage 4 cells
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human SOX17 (mouse IgG1κ) BD Sciences 562594 1:50 in flow cytometry; used for assaying Stage 1 cells
Alexa Fluor 647 Mouse IgG1κ Isotype Control BD Sciences 557714 1:50 in flow cytometry
ALK5i II Cayman Chemicals 14794 TGF-beta signaling inhibitor
Anti-Adherence Rinsing Solution  STEMCELL Technologies 7010 Microwell Rinsing Solution
Assay chamber Cellvis D35-10-1-N For static GSIS and confocal imaging purposes
Bovine serum albumin (BSA) Thermo Fisher Scientific BP1600-100 For immunostaining procedure
CK19 antibody DAKO M0888 1:50 in whole mount immunofluorescence
D-glucose Sigma G8769 Medium supplement
DAPI Sigma D9542 For nuclear counterstaining
DMEM/F12, HEPES Thermo Fisher Scientific 11330032 Matrix diluting solution
Donkey anti-goat Alexa Fluor 555 Life technologies A21432 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-goat Alexa Fluor 647 Life technologies A21447 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-mouse Alexa Fluor 555 Life technologies A31570 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-mouse Alexa Fluor 647 Life technologies A31571 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 555 Life technologies A31572 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 647 Life technologies A31573 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-sheep Alexa Fluor 647 Life technologies A21448 1:500 in whole mount immunofluorescence
DPBS Sigma D8537 Without Ca2+ and Mg2+
ELISA, insulin, human Alpco 80-INSHU-E01.1 For human insulin measurement
Fatty acid-free BSA Proliant 68700 Medium supplement
Fixation and Permeabilization Solution Kit BD Sciences 554714 Fix/Perm and 10x Perm/Wash solutions included
Gentle Cell Dissociation Reagent STEMCELL Technologies 7174 For clump passaging hPSCs during maintenance culture
Glucagon antibody Sigma G2654 1:400 in whole mount immunofluorescence
GLUT1 antibody Thermo Fisher Scientific PA1-37782 1:200 in whole mount immunofluorescence
GlutaMAX-I (100x) Gibco 35050061 L-glutamine supplement
Glycerol Thermo Fisher Scientific G33-4 For tissue clearing and mounting
GSi XX Sigma Millipore 565789 Notch inhibitor
Heparin Sigma H3149 Medium supplement
ITS-X (100x) Thermo Fisher Scientific 51500056 Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine; medium supplement
LDN193189  STEMCELL Technologies 72147 BMP antagonist
MAFA antibody Abcam ab26405 1:200 in whole mount immunofluorescence
Matrigel, hESC-qualified Thermo Fisher Scientific 08-774-552 Extracellular matrix for vessel surface coating
MCDB131 medium Life technologies 10372019 Base medium
mTeSR1 Complete Kit STEMCELL Technologies 85850 stem cell medium and 5x supplement included
N-Cys (N-acetyl cysteine) Sigma A9165 Antioxidant
NaHCO3 Sigma S6297 Medium supplement
NEUROD1 antibody R&D Systems AF2746 1:20 in whole mount immunofluorescence
NKX6.1 antibody DSHB F55A12-c 1:50 in whole mount immunofluorescence
Pancreatic polypeptide antibody R&D Systems AF6297 1:200 in whole mount immunofluorescence
PBS Sigma D8662 With Ca2+ and Mg2+
PDX1 antibody Abcam ab47267 1:200 in whole mount immunofluorescence
PE Mouse anti-Human GCG (mouse IgG1κ) BD Sciences 565860 1:2,000 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
PE Mouse anti-Human NKX6.1 (mouse IgG1k) BD Sciences 563023 1:250 in flow cytometry
PE Mouse anti-Human PDX1 (mouse IgG1k) BD Sciences 562161 1:200 in flow cytometry; used for assaying Stage 4 cells
PE Mouse IgG1κ Isotype Control BD Sciences 554680 1:2,000 in flow cytometry
PE Mouse-Human Chromogranin A (CHGA, mouse IgG1k) BD Sciences 564563 1:200 in flow cytometry
R428  Cayman Chemicals 21523 AXL tyrosine kinase inhibitor
Retinoid acid, all-trans Sigma R2625 Light-sensitive
RIPA lysis buffer, 10x Sigma 20-188 For hormone extraction
SANT-1 Sigma S4572 SHH inhibitor
SLC18A1 antibody Sigma HPA063797 1:200 in whole mount immunofluorescence
Somatostatin antibody Sigma HPA019472 1:100 in whole mount immunofluorescence
STEMdiff Pancreatic Progenitor Kit STEMCELL Technologies 05120 Basal media and supplements included
Synaptophysin antibody Novus NB120-16659 1:25 in whole mount immunofluorescence
Triton X-100 Sigma X100 For permeabilization
Trolox  Sigma Millipore 648471 Vitamin E analog
TrypLE Enzyme Express Life technologies 12604-021 cell dissociation enzyme reagent for single cell passaging hPSCs
Trypsin1/2/3 antibody R&D Systems AF3586 1:25 in whole mount immunofluorescence
Y-27632 STEMCELL Technologies 72304 ROCK inhibitor
Zinc sulfate Sigma Z0251 Medium supplement

Referências

  1. Atkinson, M. A., Eisenbarth, G. S., Michels, A. W. Type 1 diabetes. Lancet. 383 (9911), 69-82 (2014).
  2. Petersen, M. C., Shulman, G. I. Mechanisms of insulin action and insulin resistance. Physiological Reviews. 98 (4), 2133-2223 (2018).
  3. Shapiro, A. M., et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. The New England Journal of Medicine. 343 (4), 230-238 (2000).
  4. Gamble, A., Pepper, A. R., Bruni, A., Shapiro, A. M. J. The journey of islet cell transplantation and future development. Islets. 10 (2), 80-94 (2018).
  5. Pagliuca, F. W., et al. Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  6. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 32 (11), 1121-1133 (2014).
  7. Jennings, R. E., et al. Development of the human pancreas from foregut to endocrine commitment. Diabetes. 62 (10), 3514-3522 (2013).
  8. Jorgensen, M. C., et al. An illustrated review of early pancreas development in the mouse. Endocrine Reviews. 28 (6), 685-705 (2007).
  9. Jensen, J. Gene regulatory factors in pancreatic development. Developmental Dynamics. 229 (1), 176-200 (2004).
  10. Hald, J., et al. Generation and characterization of Ptf1a antiserum and localization of Ptf1a in relation to Nkx6.1 and Pdx1 during the earliest stages of mouse pancreas development. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 56 (6), 587-595 (2008).
  11. Villasenor, A., Chong, D. C., Henkemeyer, M., Cleaver, O. Epithelial dynamics of pancreatic branching morphogenesis. Development. 137 (24), 4295-4305 (2010).
  12. Rukstalis, J. M., Habener, J. F. Neurogenin3: a master regulator of pancreatic islet differentiation and regeneration. Islets. 1 (3), 177-184 (2009).
  13. Mastracci, T. L., Anderson, K. R., Papizan, J. B., Sussel, L. Regulation of Neurod1 contributes to the lineage potential of Neurogenin3+ endocrine precursor cells in the pancreas. PLoS Genetics. 9 (2), e1003278 (2013).
  14. Balboa, D., et al. Functional, metabolic and transcriptional maturation of human pancreatic islets derived from stem cells. Nature Biotechnology. 40 (7), 1042-1055 (2022).
  15. Du, Y., et al. Human pluripotent stem-cell-derived islets ameliorate diabetes in non-human primates. Nature Medicine. 28 (2), 272-282 (2022).
  16. Hogrebe, N. J., Augsornworawat, P., Maxwell, K. G., Velazco-Cruz, L., Millman, J. R. Targeting the cytoskeleton to direct pancreatic differentiation of human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 38 (4), 460-470 (2020).
  17. Yoshihara, E., et al. Immune-evasive human islet-like organoids ameliorate diabetes. Nature. 586 (7830), 606-611 (2020).
  18. Mahaddalkar, P. U., et al. Generation of pancreatic beta cells from CD177(+) anterior definitive endoderm. Nature Biotechnology. 38 (9), 1061-1072 (2020).
  19. Liang, S., et al. Differentiation of stem cell-derived pancreatic progenitors into insulin-secreting islet clusters in a multiwell-based static 3D culture system. Cell Reports Methods. 3, 10046 (2023).
  20. Zhao, J., et al. In vivo imaging of beta-cell function reveals glucose-mediated heterogeneity of beta-cell functional development. Elife. 8, e41540 (2019).
  21. Zhao, J., et al. In vivo imaging of calcium activities from pancreatic beta-cells in zebrafish embryos using spinning-disc confocal and two-photon light-sheet microscopy. Bio-protocol. 11 (23), e4245 (2021).
  22. Liang, S., et al. Carbon monoxide enhances calcium transients and glucose-stimulated insulin secretion from pancreatic beta-cells by activating phospholipase C signal pathway in diabetic mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 582, 1-7 (2021).
  23. Bruin, J. E., et al. Maturation and function of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors in macroencapsulation devices following transplant into mice. Diabetologia. 56 (9), 1987-1998 (2013).
  24. Toyoda, T., et al. Cell aggregation optimizes the differentiation of human ESCs and iPSCs into pancreatic bud-like progenitor cells. Stem Cell Research. 14 (2), 185-197 (2015).
  25. Russ, H. A., et al. Controlled induction of human pancreatic progenitors produces functional beta-like cells in vitro. EMBO Journal. 34 (13), 1759-1772 (2015).
  26. Veres, A., et al. Charting cellular identity during human in vitro beta-cell differentiation. Nature. 569 (7756), 368-373 (2019).
  27. D’Amour, K. A., et al. Efficient differentiation of human embryonic stem cells to definitive endoderm. Nature Biotechnology. 23 (12), 1534-1541 (2005).
  28. Jiang, Y., et al. Generation of pancreatic progenitors from human pluripotent stem cells by small molecules. Stem Cell Reports. 16 (9), 2395-2409 (2021).
  29. Tran, R., Moraes, C., Hoesli, C. A. Controlled clustering enhances PDX1 and NKX6.1 expression in pancreatic endoderm cells derived from pluripotent stem cells. Scientific Reports. 10 (1), 1190 (2020).
  30. Mamidi, A., et al. Mechanosignalling via integrins directs fate decisions of pancreatic progenitors. Nature. 564 (7734), 114-118 (2018).
  31. Rezania, A., et al. Enrichment of human embryonic stem cell-derived NKX6.1-expressing pancreatic progenitor cells accelerates the maturation of insulin-secreting cells in vivo. Stem Cells. 31 (11), 2432-2442 (2013).
  32. Sander, M., et al. Homeobox gene Nkx6.1 lies downstream of Nkx2.2 in the major pathway of beta-cell formation in the pancreas. Development. 127 (24), 5533-5540 (2000).
check_url/pt/64840?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhao, J., Liang, S., Braam, M. J. S., Baker, R. K., Iworima, D. G., Quiskamp, N., Kieffer, T. J. Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Insulin-Producing Islet Clusters. J. Vis. Exp. (196), e64840, doi:10.3791/64840 (2023).

View Video