Summary

Levedyktighetsanalyse av Trichoderma stromaticum Conidia i humant perifert blod mononukleære makrofager

Published: October 20, 2023
doi:

Summary

Teknikken som involverer fagocytose av soppkonidier av makrofager, er mye brukt til studier som evaluerer moduleringen av immunresponsene mot sopp. Formålet med dette manuskriptet er å presentere en metode for å evaluere fagocytose- og clearanceevnen til mononukleære makrofager fra humant perifert blod stimulert med Trichoderma stromaticum conidia.

Abstract

Makrofager representerer en avgjørende forsvarslinje og er ansvarlige for å forhindre vekst og kolonisering av patogener i forskjellige vev. Conidial fagocytose er en nøkkelprosess som muliggjør undersøkelse av cytoplasmatiske og molekylære hendelser involvert i makrofag-patogen-interaksjoner, samt for bestemmelse av dødstidspunktet for internaliserte konidier. Teknikken som involverer fagocytose av soppkonidier av makrofager, er mye brukt til studier som evaluerer moduleringen av immunresponsene mot sopp. Unnvikelsen av fagocytose og rømning av fagosomer er mekanismer for soppvirulens. Her rapporterer vi metodene som kan brukes til analyse av fagocytose, clearance og levedyktighet av T. stromaticum conidia, en sopp som brukes som biokontroll- og biogjødselmiddel og er i stand til å indusere menneskelige infeksjoner. Protokollen består av 1) Trichoderma-kultur , 2) vasking for å oppnå konidier, 3) isolering av mononukleære celler i perifert blod (PBMC) ved bruk av polysukroseløsningsmetoden og differensiering av PBMCene i makrofager, 4) en in vitro-fagocytosemetode ved bruk av runde glassdeksel og farging, og 5) en clearance-analyse for å vurdere konidiens levedyktighet etter konidiafagocytose. Oppsummert kan disse teknikkene brukes til å måle soppclearanceeffektiviteten til makrofager.

Introduction

Trichoderma-slekten (Orden: Hypocreales, Familie: Hypocreaceae) består av allestedsnærværende, saprofytiske sopp som er parasitter av andre sopparter og er i stand til å produsere en rekke kommersielt nyttige enzymer1. Disse soppartene brukes til produksjon av heterologe proteiner2, produksjon av cellulose3, etanol, øl, vin og papir4, i tekstilindustrien5, næringsmiddelindustrien6 og i landbruket som biologiske kontrollmidler 7,8. I tillegg til den industrielle interessen for disse soppartene, har det økende antallet infeksjoner hos mennesker gitt noen Trichoderma-arter status som opportunistiske patogener9.

Trichoderma spp. vokser raskt i kulturen, med i utgangspunktet hvite og bomullsaktige kolonier som blir grønngule til mørkegrønne10. De er tilpasset til å leve i et bredt spekter av pH- og temperaturforhold, og de opportunistiske artene er i stand til å overleve ved fysiologisk pH og temperaturer og dermed kolonisere forskjellige menneskelige vev 11,12,13. Det er viktig at økningen i infeksjonsraten av Trichoderma spp. kan være forbundet med virulensfaktorer, og disse er ikke godt studert. I tillegg er studier som fokuserer på å forstå immunresponsen mot opportunistiske Trichoderma-arter fortsatt sjeldne.

Under en infeksjon, sammen med nøytrofiler, representerer makrofager forsvarslinjen som er ansvarlig for fagocytose, og forhindrer dermed vekst og kolonisering av patogener i forskjellige vev. Ved hjelp av mønstergjenkjenningsreseptorer, som Toll-lignende reseptorer og C-type lektinreseptorer, makrofager fagocytose sopp og behandler dem i fagolysosomer, og fremmer dermed et respiratorisk utbrudd, frigjøring av proinflammatoriske cytokiner og ødeleggelsen av fagocytoserte mikroorganismer14. Mekanismen for fagocytose kan imidlertid påvirkes og unngås av forskjellige mikrobielle strategier, for eksempel størrelsen og formen på soppcellene; Tilstedeværelsen av kapsler som hindrer fagocytose; redusere antall fagocytose-induserende reseptorer; ombyggingen av strukturen av aktinfibre i cytoplasma; hindrer dannelsen av pseudopodi; og fagosom eller fagolysosom unnslipper etter fagocytoseprosessen14.

Mange patogener, inkludert Cryptococcus neoformans, bruker makrofager som en nisje for å overleve i verten, spre og indusere infeksjon15. Fagocytose- og clearanceanalysen brukes til å evaluere immunresponsen mot patogener og for å identifisere de mikrobielle strategiene som brukes for å unngå det medfødte immunsystemet 15,16,17. Denne typen teknikk kan også brukes til å undersøke differensialkinetikken til fagocytose, forsinket fagosomforsuring og oksidativt utbrudd som resulterer i redusert soppdrap18.

Ulike metoder kan brukes til å evaluere fagocytose, soppoverlevelse og unnvikelse av fagosommodningsprosessen. Disse inkluderer fluorescensmikroskopi, som brukes til å observere fagocytose, den cellulære plasseringen og molekylene produsert under fagocytose19; flowcytometri, som gir kvantitative data om fagocytose og brukes til å evaluere de forskjellige markørene som er involvert i prosessen20,21; intravital mikroskopi, som brukes til å vurdere mikrobiell fangst og fagosommodning22; antistoffmediert fagocytose, som brukes til å vurdere spesifisiteten av fagocytoseprosessen for et patogen23; og andre 24,25,26,27.

Protokollen som presenteres her benytter en vanlig, billig og direkte metode ved hjelp av et optisk mikroskop og platevekstanalyse for å vurdere fagocytose og drap av soppkonidier. Denne protokollen vil gi leserne trinnvise instruksjoner for å utføre fagocytose og clearance-analysen ved bruk av humane perifere blodmononukleære makrofager utsatt for T. stromaticum. PBMC ble brukt fordi Trichoderma conidia brukes som biokontroll mot fytopatogener og biogjødsel for planteavlinger over hele verden og har forårsaket flere menneskelige infeksjoner, kalt Trichodermosis. Dessuten er det bare to tidligere arbeider som fokuserer på samspillet mellom Trichoderma conidia og det menneskelige immunsystemet, der vi undersøkte nøytrofiler28 og autofagi i makrofager29. Denne artikkelen viser først hvordan fagocytose av konidiene til T. stromaticum av PBMC-avledede makrofager kan studeres, og deretter hvordan levedyktigheten til de oppslukte konidiene kan vurderes ved hjelp av enkle mikroskopibaserte teknikker. Denne protokollen kan ytterligere lette undersøkelser av makrofagassosiert immunrespons eller immunsystemmodulasjonsrelaterte mekanismer.

Protocol

Etiske overveielser og menneskerAlle eksperimenter med mennesker beskrevet i denne studien ble utført i henhold til Helsinkideklarasjonen og brasilianske føderale lover og godkjent av State University of Santa Cruz etiske komité (prosjektidentifikasjonskode: 550.382 / 2014). Humant perifert blod ble samlet fra friske frivillige fra Ilhéus city, Bahia, Brasil, ikke utsatt for yrkesaktiviteter relatert til den studerte soppen. Personer med rapporterte helsemedisinske til…

Representative Results

Teknikken som involverer fagocytose av soppkonidier av makrofager, er mye brukt til studier som evaluerer moduleringen av immunresponsene mot sopp. Vi brukte fagocytose av T. stromaticum conidia for å vurdere levedyktigheten til konidiene etter fagocytose, siden unnvikelsen av fagocytose og rømningen av fagosomer er mekanismer for soppvirulens. Forskere bør utføre disse teknikkene som en av de første analysene når de undersøker en art av klinisk interesse. <p class="jove_content biglegend" fo:keep-tog…

Discussion

For flere sopppatogener, inkludert Aspergillus fumigatus, Cryptococcus, Candida albicans og andre, er conidial eller gjærfagocytose en nøkkelprosess som muliggjør undersøkelse av cytoplasmatiske og molekylære hendelser i makrofag-patogen-interaksjoner, samt for bestemmelse av dødstidspunktet for den internaliserte konidien 14,39,40. Fagocytose er nøkkelprosessen i Trichoderma-vert-interaksjo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av følgende brasilianske finansieringsinstitusjoner: Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado da Bahia (FAPESB) med tilskudd RED0011/2012 og RED008/2014. U.R.S., J.O.C. og M.E.S.M. anerkjenner stipendet gitt av henholdsvis Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) og FAPESB.

Materials

15 mL centrifuge tubes Corning CLS431470 15 mL centrifuge tubes, polypropylene, conical bottom with lid, individually sterile
24-Well Flat Bottom Cell Culture Plate Kasvi K12-024 Made of polystyrene with alphanumeric identification; The Cell Culture Plate is DNase, RNase and pyrogen-free and free of cytotoxic substances; Sterilized by gamma radiation;
Cell culture CO2 incubator Sanyo 303082 A CO2 incubator serves to create and control conditions similar to a human body, thus allowing the in vitro growth and proliferation of different cell types.
Centrifuge Microtube (eppendorf type) 1.5 mL Capp 5101500 Made from polypropylene, with a cap attached to the tube for opening and closing with just one hand. It has a polished interior against protein adhesion and for sample visibility, being free of DNase, RNase and Pyrogens
Circular coverslip 15 mm Olen K5-0015 Circular coverslips are used for microscopy techniques in cell culture. Made of super transparent translucent glass; with thickness of 0.13 mm
Class II Type B2 (Total Exhaust) Biosafety Cabinets Esco Lifesciences group 2010274 Airstream Class II Type B2 Biosafety Cabinets (AB2) provide product, operator and environmental protection and are suitable for work with trace amounts of toxic chemicals and agents assigned to biological safety levels I, II or III. In a Class II Type B2 cabinet, all inflow and downflow air is exhausted after HEPA/ULPA filtration to the external environment without recirculation across the work surface.
Dextrose Potato Agar medium Merck 145 Potato Dextrose Agar is used in the cultivation and enumeration of yeasts and fungi
EDTA vacuum blood collection tube FirstLab FL5-1109L EDTA is the recommended anticoagulant for hematology routines as it is the best anticoagulant for preserving cell morphology.
Entellan Merck 1.07961  Fixative agent; Entellan is a waterless mounting medium for permanent mounting for microscopy.
Fetal Bovine Serum Gibco A2720801 Fetal bovine serum (FBS) is a universal growth supplement of cell and tissue culture media. FBS is a natural cocktail of most of the factors required for cell attachment, growth, and proliferation, effective for most types of human and animal (including insect) cells.
Flaticon  database of images
Glycerol Merck 24900988 The cryoprotectant agent glycerol is used for freezing cells and spores
Histopaque-1077 polysucrose solution
Image J  Image analysis software
Microscopy slides Precision 7105 Slide for Microscopy 26 x 76 mm Matte Lapped Thickness 1.0 to 1.2 mm. Made of special optical glass and packaged with silk paper divider with high quality transparency free of imperfections
Mini centrifuge Prism C1801 The Prism Mini Centrifuge was designed to be extremely compact with an exceptionally small footprint. Includes 2 interchangeable quick-release rotors that spin up to 6000 rpm. An electronic brake provides quick deceleration and the self-opening lid allows easy access to the sample, reducing handling time.
Neubauer chamber Kasvi K5-0011 The Neubauer Counting Chamber is used for counting cells or other suspended particles.
Panoptic fast  Laborclin 620529 Laborclin's  panoptic fast c is a kit for quick staining in hematology
Penicillin/Streptomycin Solution – 10,000U LGC- Biotechnology  BR3011001 antibiotic is used in order to avoid possible contamination by manipulation external to the laminar flow.
Petri dish 90 x 15 mm Smooth Cralplast 18248 Disposable Petri dish; Made of highly transparent polystyrene (PS); flat bottom; Smooth;Size: 90 x 15 mm.
Phosphate buffered saline (PBS) thermo fisher Scientific 10010001 PBS is a water-based saline solution with a simple formulation. It is isotonic and non-toxic to most cells. It includes sodium chloride and phosphate buffer and is formulated to prevent osmotic shock while maintaining the water balance of living cells.
Pipette Pasteur 3 mL Sterile Accumax AP-3-B-S STERILE ACCUMAX PASTEUR 3 ML PIPETTE with 3 mL capacity, made of transparent low-density polyethylene (LDPE) and individually sterile
Refrigerated Centrifuge Thermo Scientific TS-HM16R The Thermo Scientific Heraeus Megafuge 16R Refrigerated Centrifuge is a refrigerated centrifuge with the user-friendly control panel makes it easy to pre-set the speed, RCF value, running time, temperature, and running profile. The Megafuge 16R can reach maximum speeds of 15,200 RPM and maximum RCF of 25,830 x g.
RPMI-1640 Medium Merck MFCD00217820 HEPES Modification, with L-glutamine and 25 mM HEPES, without sodium bicarbonate, powder, suitable for cell culture
The single channel micropipettes Eppendorf Z683809 Single-channel micropipettes are used to accurately transfer and measure very small amounts of liquids.
Tip for Micropipettor Corning 4894 Capacity of 10 µL and 1,000 µL Autoclavable
Triocular inverted microscope LABOMED VU-7125500 It allows you to observe cells inside tubes and bottles, without having to open them, thus avoiding contamination problems.

Referências

  1. Samuels, G. J. Trichoderma: A review of biology and systematics of the genus. Mycological Research. 100 (8), 923-935 (1996).
  2. Nevalainen, H., Peterson, R., Gupta, V. K., Schmoll, M., Herrera-Estrella, A., Upadhyay, R. S., Druzhinina, I., Tuohy, M. G. Chapter 7 – Heterologous expression of proteins in Trichoderma. Biotechnology and Biology of Trichoderma. , (2014).
  3. Do Vale, L. H. F., Filho, E. X. F., Miller, R. N. G., Ricart, C. A. O., de Sousa, M. V., Gupta, V. K., Schmoll, M., Herrera-Estrella, A., Upadhyay, R. S., Druzhinina, I., Tuohy, M. G. Chapter 16 – Cellulase systems in Trichoderma: An overview. Biotechnology and Biology of Trichoderma. , (2014).
  4. Ferreira, N. L., Margeot, A., Blanquet, S., Berrin, J. G., Gupta, V. K., Schmoll, M., Herrera-Estrella, A., Upadhyay, R. S., Druzhinina, I., Tuohy, M. G. Chapter 17 – Use of cellulases from Trichoderma reesei in the twenty-first century part I: Current industrial uses and future applications in the production of second ethanol generation. Biotechnology and Biology of Trichoderma. , (2014).
  5. Puranen, T., Alapuranen, M., Vehmaanperä, J., Gupta, V. K., Schmoll, M., Herrera-Estrella, A., Upadhyay, R. S., Druzhinina, I., Tuohy, M. G. Chapter 26 – Trichoderma enzymes for textile industries. Biotechnology and Biology of Trichoderma. , (2014).
  6. Kunamneni, A., Plou, F. J., Alcalde, M., Ballesteros, A., Gupta, V. K., Schmoll, M., Herrera-Estrella, A., Upadhyay, R. S., Druzhinina, I., Tuohy, M. G. Chapter 24 – Trichoderma enzymes for food industries. Biotechnology and Biology of Trichoderma. , (2014).
  7. Mukherjee, P. K., Horwitz, B. A., Herrera-Estrella, A., Schmoll, M., Kenerley, C. M. Trichoderma research in the genome era. Annual Review of Phytopathology. 51 (1), 105-129 (2013).
  8. Mukherjee, M., et al. Trichoderma-plant-pathogen interactions: Advances in genetics of biological control. Indian Journal of Microbiology. 52 (4), 522-529 (2012).
  9. dos Santos, U. R., dos Santos, J. L. Trichoderma after crossing kingdoms: Infections in human populations. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part B. 26 (2), 97-126 (2023).
  10. Asis, A., et al. Identification patterns of Trichoderma strains using morphological characteristics, phylogenetic analyses and lignocellulolytic activities. Molecular Biology Reports. 48 (4), 3285-3301 (2021).
  11. Antal, Z., et al. Comparative study of potential virulence factors in human pathogenic and saprophytic Trichoderma longibrachiatum strains. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica. 52 (3-4), 341-350 (2005).
  12. Hatvani, L., Manczinger, L., Vágvölgyi, C., Kredics, L., Mukherjee, P. K., Horwitz, B. A., Singh, U. S., Mukherjee, M., Schmoll, M. Trichoderma as a human pathogen. Trichoderma: Biology and Applications. , (2013).
  13. Kredics, L., et al. Clinical importance of the genus Trichoderma: A review. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica. 50 (2-3), 105-117 (2003).
  14. Erwig, L. P., Gow, N. A. R. Interactions of fungal pathogens with phagocytes. Nature Reviews Microbiology. 14 (3), 163-176 (2016).
  15. Nicola, A. M., Casadevall, A. In vitro measurement of phagocytosis and killing of Cryptococcus neoformans by macrophages. Methods in Molecular Biology. 844, 189-197 (2012).
  16. Medina, E., Goldmann, O. In vivo and ex vivo protocols for measuring the killing of extracellular pathogens by macrophages. Current Protocols in Immunology. , 1-17 (2011).
  17. Drevets, D. A., Canono, B. P., Campbell, P. A. Measurement of bacterial ingestion and killing by macrophages. Current Protocols in Immunology. 109, 1-17 (2015).
  18. Gresnigt, M. S., et al. Differential kinetics of Aspergillus nidulans and Aspergillus fumigatus phagocytosis. Journal of Innate Immunity. 10 (2), 145-160 (2018).
  19. Steinberg, B. E., Grinstein, S. Analysis of macrophage phagocytosis: Quantitative assays of phagosome formation and maturation using high-throughput fluorescence microscopy. Methods in Molecular Biology. 531, 45-56 (2009).
  20. Yan, Q., Ahn, S. H., Fowler, V. G. Macrophage phagocytosis assay of Staphylococcus aureus by flow cytometry. Bio-Protocol. 5 (4), 1406 (2015).
  21. Marr, K. A., Koudadoust, M., Black, M. Early events in macrophage killing of Aspergillus fumigatus conidia New flow cytometric viability assay. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 8 (6), 1240-1247 (2001).
  22. Surewaard, B. G. J., Kubes, P. Measurement of bacterial capture and phagosome maturation of Kupffer cells by intravital microscopy. Methods. 128, 12-19 (2017).
  23. Siggins, M. K., et al. Differential timing of antibody-mediated phagocytosis and cell-free killing of invasive African Salmonella allows immune evasion. European Journal of Immunology. 44 (4), 1093-1098 (2014).
  24. Cannon, G. J., Swanson, J. A. The macrophage capacity for phagocytosis. Journal of Cell Science. 101 (4), 907-913 (1992).
  25. Harvath, L., Terle, D. A. Assay for phagocytosis. Methods in Molecular Biology. 115, 281-290 (1999).
  26. dos Santos, A. G., et al. Trichoderma asperelloides spores downregulate dectin1/2 and TLR2 receptors of mice macrophages and decrease Candida parapsilosis phagocytosis independent of the M1/M2 polarization. Frontiers in Microbiology. 8, 1681 (2017).
  27. Souza, J. A. M., et al. Characterization of Aspergillus fumigatus extracellular vesicles and their effects on macrophages and neutrophils functions. Frontiers in Microbiology. 10, 2008 (2019).
  28. Oliveira-Mendonça, L. S., et al. Inhibition of extracellular traps by spores of Trichoderma stromaticum on neutrophils obtained from human peripheral blood. Molecular Immunology. 141, 43-52 (2022).
  29. Oliveira-Mendonça, L. S., et al. Trichoderma stromaticum spores induce autophagy and downregulate inflammatory mediators in human peripheral blood-derived macrophages. Current Research in Microbial Sciences. 3, 100145 (2022).
  30. Johnston, L., Harding, S. A., La Flamme, A. C. Comparing methods for ex vivo characterization of human monocyte phenotypes and in vitro responses. Immunobiology. 220 (12), 1305-1310 (2015).
  31. Abedon, S. T., Bartom, E., Maloy, S., Hughes, K. Multiplicity of infection. Brenner’s Encyclopedia of Genetics. Second Edition. , (2013).
  32. Rios, F. J., Touyz, R. M., Montezano, A. C. Isolation and differentiation of human macrophages. Methods in Molecular Biology. 1527, 311-320 (2017).
  33. Lombard, Y., Giaimis, J., Makaya-Kumba, M., Fonteneau, P., Poindron, P. A new method for studying the binding and ingestion of zymosan particles by macrophages. Journal of Immunological Methods. 174 (1-2), 155-165 (1994).
  34. Ghoneum, M., Gollapudi, S. Phagocytosis of Candida albicans by metastatic and non metastatic human breast cancer cell lines in vitro. Cancer Detection and Prevention. 28 (1), 17-26 (2004).
  35. Nunes, J. P. S., Dias, A. A. M. ImageJ macros for the user-friendly analysis of soft-agar and wound-healing assays. BioTechniques. 62 (4), 175-179 (2017).
  36. Alves-Filho, E. R., et al. The biocontrol fungus Trichoderma stromaticum downregulates respiratory burst and nitric oxide in phagocytes and IFN-gamma and IL-10. Journal of Toxicology and Environmental Health – Part A: Current Issues. 74 (14), 943-958 (2011).
  37. Slesiona, S., et al. Persistence versus escape: Aspergillus terreus and Aspergillus fumigatus employ different strategies during interactions with macrophages. PLoS One. 7 (2), 31223 (2012).
  38. Johnston, S. A., May, R. C. Cryptococcus interactions with macrophages: Evasion and manipulation of the phagosome by a fungal pathogen. Cellular Microbiology. 15 (3), 403-411 (2013).
  39. Alonso, M. F., et al. The nature of the fungal cargo induces significantly different temporal programmes of macrophage phagocytosis. The Cell Surface. 8, 100082 (2022).
  40. Brakhage, A. A., Bruns, S., Thywissen, A., Zipfel, P. F., Behnsen, J. Interaction of phagocytes with filamentous fungi. Current Opinion in Microbiology. 13 (4), 409-415 (2010).
  41. Dos Santos, U. R., et al. Exposition to biological control agent Trichoderma stromaticum increases the development of cancer in mice injected with murine melanoma. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 252 (2020).
  42. Wang, G., et al. Exopolysaccharide from Trichoderma pseudokoningii induces macrophage activation. Carbohydrate Polymers. 149, 112-120 (2016).
  43. Xu, Y., et al. Exopolysaccharide from Trichoderma pseudokoningii promotes maturation of murine dendritic cells. International Journal of Biological Macromolecules. 92, 1155-1161 (2016).
  44. Schmoll, M., Esquivel-Naranjo, E. U., Herrera-Estrella, A. Trichoderma in the light of day – Physiology and development. Fungal Genetics and Biology. 47 (11), 909-916 (2010).
  45. Zhang, G., Li, D. Trichoderma longibrachiatum-associated skin inflammation and atypical hyperplasia in mouse. Frontiers in Medicine. 9, 865722 (2022).
  46. Paredes, K., Capilla, J., Mayayo, E., Guarro, J. Virulence and experimental treatment of Trichoderma longibrachiatum, a fungus refractory to treatment. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 60 (8), 5029-5032 (2016).
  47. Perkhofer, S., Speth, C., Dierich, M. P., Lass-Flörl, C. In vitro determination of phagocytosis and intracellular killing of Aspergillus species by mononuclear phagocytes. Mycopathologia. 163 (6), 303-307 (2007).
check_url/pt/65231?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
dos Santos, U. R., de Castro, J. O., Santos Matos, M. E., De Bonis, G., dos Santos, J. L. Viability Assay of Trichoderma stromaticum Conidia Inside Human Peripheral Blood Mononuclear-Derived Macrophages. J. Vis. Exp. (200), e65231, doi:10.3791/65231 (2023).

View Video